MANEJO INTEGRADO DE PALGAS
EN EL CULTIVO DE LA MORA Rubus glaucus Benth
Bucaramanga, abril de 2018
Por: Jesus Zuleta Ospina I. A., M. Sc en Ciencias Agrarias. Línea en Protección de Cultivos
[email protected], tecnologí[email protected]
celular 3127579297, 3174366082
MATERIAL DE SIEMBRA
CRITERIOS DE SELECCIÓN DE MATERIALES DE MORA MEDIANTE INVESTIGACIÓN PARTICIPATIVA
Criterio Categoría Razón
Producción Mayor de 25 toneladas Incidencia sobre los costos
unitarios
Grados Brix 7.5 – 8.0 Procesamiento agroindustrial
Perecibilidad Baja Vida util del producto
Tamaño del fruto Grande Requerimiento para mercado
fresco
Rendimiento de la pulpa Mayor del 60% Procesamiento agroindustrial
Emisión de ramas basales Alto Mantenimiento de la producción a
través del tiempo
Resistencia y/o tolerancia a
enfermedades (mildeos, moho
gris y antracnosis)
Buena Incide sobre los rendimientos y
costos de producción
Tipos de ramas Productivas Incide sobre los rendimientos y
costos de producción
MATERIAL DE SIEMBRA
QUÉ SE ENTIENDE POR MANEJO
INTEGRADO?
RESIST. VARIETAL
CONTROLQUÍMICO
CONTROL CULTURAL
CONTROL BIOLÓGICO
MIP
MANEJO INTEGRADO DE ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA MORA
TRIANGULO DE LA ENFERMEDAD
Patógeno
Condiciones favorables Hospedero
Virulencia del patógeno
Los nutrientes de las
plantas y su relación con
enfermedades y/o
desordenes fisiológicos,
de tipo bióticas y abióticas
Mora (Rubus glaucus)
• Moho gris (Botrytis cinerea)
• Antracnosis ( Colletotrichum gloeosporioides)
• Mildeo polvoso (Oidium sp)
• Mildeo velloso (Peronospora spp.)
• Cercospora sp
• Verticillium sp y Fusarium sp
• Moho gris (Botrytis cinerea Pers. Ex. Fr.)
Telomorfo
Botryotinia fuckeliana
Kingdom:FungiPhylum:AscomycotaSubphylum:PezizomycotinaClass:LeotiomycetesOrder:HelotialesFamily:SclerotiniaceaeGenus:BotryotiniaSpecies:B. cinerea
Sintomas
En mora el hongo frecuentemente penetra por el cáliz floral y recubre la superficie con una especie defelpa de 1 mm – 2 mm de espesor, cuyos numerosos conidióforos arbóreos se ramifican formandonumerosas conidias de color gris a pardo grisáceas. Las frutas afectadas en estados jóvenes se colorean depardo, se momifican y necrosan, frutos en procesos de maduración presentan aspecto húmedo,posteriormente se cubre de esporas de color gris. El moho gris origina muchos daños, sobre todo entiempo húmedo. Con frecuencia se producen esclerocios irregulares, planos, duros y de color negro.
Epidemiología
Botrytis iverna en el suelo en forma de esclerocios o de micelio, el cual se desarrolla sobre restos deplantas en proceso de descomposición. Se propaga con semillas contaminadas mediante esclerocios.
MOHO GRIS Botrytis cinerea
Hacer cosecha oportuna y recoger frutos maduros y sobre maduros tanto de la planta como del suelo.
Aplicación de Trichoderma harzianum Referencia ATCC 52443 (Biofungo) en dosis de 1 g/l cada 15 días.
Aplicación de Sulfato de cobre penta hidratado en dosis de 1.5 cc/l, Captan (Coraza) en dosis de 2.5 cc/l.
Aplicación de Procloraz (Sportak, Mirage) en dosis de 0.7 cc/l, Fenhexamid (Cabo) en dosis de 1.5 cc/l, Iprodione + Pyrimethanil (Anker) en dosis de 1.5 cc/l, Pyrimethanil (Bucanero) 1 – 1.5 cc/l, Kresoxin melil (Efix 500 SC ) en dosis de 0.3 cc/l; Iprodione (Rovral) en dosis de 1 cc/l.
MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA MORA
0% 10% 20% 50%
Escala de severidad de Moho gris en frutos
Escala de severidad de Moho gris en Botones florales
0% 10% 20% 50%
Periodos de lluvia.
Humedad relativa mayor del 85%
Temperaturas entre 10°C a 14°C
Alta densidad de arvenses.
Residuos de cosecha y de podas
Antracnosis
Colletotrichum acutatum Simmonds ex. Simmonds,
Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. & Sacc. in Penz
Kingdom:FungiPhylum:AscomycotaClass:SordariomycetesSubclass:SordariomycetidaeOrder:Incertae sedisFamily:Genus:GlomerellaSpecies:G. cingulata
Glomerella cingulata (Stonem.) Spauld & Schrenk
ANTRACNOSIS (Colletotrichum gloeosporioides, C.
acutatum)
Selección de plantas madre vigorosas, aplicación de fosfitos
potásicos desde el almácigo, aplicación en drench de Myclobutanil
(Rally) en dosis de 0.2 g/l, a la planta madre, hacer buen balance
nutricional.
b. Distancia de siembras amplias, realizar podas de aclareo a 60 cm
de altura, realizar podas de selección de ramas, realizar podas
sanitarias, descomponer los residuos de podas al interior del cultivo
y transformar mediante la aplicación de Azospirillum brasilense,
Azotobacter Chroococcum, Lactobacillus acidophillus y
Saccharomyces serevisae (Bacthon) y Trichoderma sp y
Paecilomyces lilacinus (Safrsoil) en dosis de 1 g / l, desinfectar la
herramienta de planta a planta, cicatrizar los cortes de las podas y
hacer lechadas al cuello de la planta cada tres meses, esta última
con una mezcla de sulfato de Cu y sulfato de Ca o Antrasin.
c. Aplicación de Trichoderma sp mas Paecilomyces lilacinus y
organismos endófitos fertilizantes inorgánicos líquidos con
microorganismos eficientes (Oasis) cada 30 o 45 días, en dosis de
1g y 5cc/l utilizando coadyuvantes tipo aceite.
d. Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos, Myclobulanit (Rally)
en dosis de 0.2 g/l Epoxicanazole + Pyraclortrobin (Opera) en dosis
de 0.5 cc/l, Azoxystrobin + Difenoconazole (Amistar Top),Kasuqamicina (Kasumin) 2 cc/l, Cobre penta hidratado (S - Kuper)
en dosis de 1.5 cc/L y Procloraz (Sportak) en dosis de 0.7 cc/l,
Difenoconazol (Score) en dosis de 0,6 cc’l.
CEPARIOCámara húmeda
Conservación Papel filtro Monospórico
ConidiasEsporulación
Figura 1. Síntomas y signos típicos de antracnosis en tallos de mora de Castilla. A: lesión oval típica color púrpura en tallo, B: acérvulos y masas de esporas color salmón sobre la espina, C: Acérvulos y masas de esporas color salmón en tallo.
La especie C. gloeosporioides, es un hongo de
distribución cosmopolita predominante en los
trópicos y subtrópicos (Sutton 1992), que muestra
el mayor grado de diversidad morfológica, biológica
y el más amplio rango de hospederos de todas las
especies de Colletotrichum (Gaztambide 2005),
afectando frutos como el de la manzana, aguacate,
higo, cítricos, ají, tomate, calabaza, tomate de
árbol, fresa (Johnston et al. 1997), mango, banano,
papaya, guayaba y uva (Dodd et al. 1992).
C. acutatum Simmonds (1965 ) puede
también causar una amplia gama de
enfermedades de antracnosis sobre
importantes cultivos económicos, como la
fresa, manzana, aguacate, arándano,
cítricos, uva, kiwi, papaya, melocotón,
pimienta, y tomate (Guerber et al. 2001).
Sintomatología de antracnosis en hoja de mora uva
Síntomas de antracnosis en mora de castilla
Figura 46. Características morfológicas de aislamientos de Colletotrichum spp. de mora. A:
colonias monoconidiales de C. gloeosporioides (parte superior) y C. acutatum (parte inferior); B:
peritecios inmersos en medio de cultivo, C y D: peritecios, ascas y ascosporas de Glomerella
cingulata.
Figura 47. Características morfológicas de esporas de
Colletotrichum spp. de mora de Castilla (100X). cepa
C005: elíptica- fusiforme, cepa Q003 (1): oblonga –
elíptica y cepa H030: elíptica.
C. acutatum se caracteriza por presentar conidias
rectas, fusiformes y con extremos agudos (8.0-16.5 x
2.5-4.0μm). Los apresorios formados por esta
especie son oscuros, clavados, ovalados, obovados
o irregulares, con márgenes enteras o
estrechamente lobuladas (8.5-10 x 4.5-6μm) (Bailey
& Jeger 1992, Arx 1970).
Por su parte, C. boninense se caracteriza por
presentar apresorios oscuros, con bordes irregulares
(6.0-17.0 x 4.0-15.0 μm). Las conidias se forman en
masas naranjas, son rectas, cilíndricas y obtusas en
los extremos (13-15.5 x 5-6μm) (Moriwaki et al.
2003).
De acuerdo con lo reportado en la literatura acerca
de la forma de las conidias de las especies de
Colletotrichum, el 69.58% de los aislamientos
evaluados presentó conidias características de C.
gloeosporioides y/o C. boninense. Las cepas
restantes presentaron conidias con uno o los dos
ápices agudos, lo cual es considerado como un
carácter importante en la descripción morfológica de
C. acutatum.
Evaluación de patogenicidad
El área bajo la curva del progreso de la enfermedad (ABCPE) mostró
diferencias significativas entre localidades (Tabla 13). Se identificaron dos
grupos de patogenicidad: uno conformado por los aislamientos
provenientes de Caldas y Risaralda (25%) y un segundo conformado por
los aislamientos de Antioquia, Cundinamarca, Huila, Quindío, Santander
y Valle del Cauca (75%) (Figura 48).
Agrupamiento de aislamientos de Colletotrichum spp. de mora de Castilla
inoculados en tallos de mora con base en ANOVA y Duncan 5%.
1=área bajo la curva de progreso de la enfermedad (%/días); 2=
Agrupamiento de localidades según patogenicidad de los aislamientos de
acuerdo a su origen.
Los aislamientos provenientes de cultivos de
Caldas y Risaralda fueron los más
patogénicos, mientras que aquellos de
Antioquia, Cundinamarca, Huila, Quindío,
Santander y Valle del Cauca presentan
niveles de patogenicidad intermedia, baja o
muy baja.
C. gloeosporioides tiende a tener una tasa de
crecimiento mayor y una patogenicidad de
alta a intermedia, mientras que los
pertenecientes a la especie C. acutatum, en
general presentan una tasa menor de
crecimiento y niveles bajos de patogenicidad
en tallo. La especie C. acutatum es un
patógeno altamente especializado en el
tejido que ataca en cada hospedero, y se la
encuentra asociada especialmente con
síntomas en flores y frutos.
Conclusiones
Las poblaciones colombianas de Colletotrichum spp. agente causante de la antracnosis en mora de Castilla, están
conformadas en su mayoría por las especies C. gloeosporioides y C.acutatum y en un grado no significativo por la
especie C. boninense.
Los aislamientos provenientes de zonas productoras de mora en Caldas y Risaralda presentan mayor
patogenicidad.
Se identificó una mayor diversidad genética para la especie C. acutatum y moderada a baja para C.
gloeosporioides.
Se identificó dentro del germoplasma colombiano de Rubus spp. cinco genotipos resistentes a la antracnosis y 53
susceptibles a aislamientos representativos de C. gloesporioides, la especie más importante causante de esta
enfermedad en Colombia.
Recomendación
Evaluar germoplasma de Rubus spp. perteneciente a especies diferentes a R. glaucus, en particular especies
silvestres, las cuales pueden representar una fuente importante de genes de resistencia a la antracnosis y otras
enfermedades de este cultivo en Colombia.
ESCALA DE SEVERIDAD PARA ANTRACNOSIS PROPUESTA
POR Afanador, 2011
Grado 1: Desarrollo de callo en el sitio de la inoculación (0%).
Grado 2: Desarrollo de lesión necrótica alrededor del sitio de la
inoculación (3%).
Grado 3: Lesión necrótica más marchitamiento (15%).
Grado 4: Lesión necrótica más amarillamiento y muerte de hojas
comprometidas con la zona de inoculación o por encima de ésta
(25%).
Grado 5: Muerte de hojas comprometidas con la zona de
inoculación o por encima de ésta. Muerte del ápice de la planta
(45%).
Grado 6: Muerte completa de la planta o rama (75%).
MORFOLOGÍA
Collectotríchum spp presenta acérvulos en forma de disco o almohadilla, cerosos,subepidermales, típicamente color salmón, setas en el borde del acérvulo y entre losconidióforos conidias hialinas, unicelulares, ovoides u oblongas. C. gloeosporioides, secaracteriza por presentar conidias hialinas (7-20 x 2.5-5 µm), ubicadas en una estructurareproductiva llamada acérvulo (500 um de diámetro). Colletotrichum también puedepresentar microesclerocios y tanto estos como la forma de los apresorios ayuda a laidentificación. Las conidias pueden ser cilíndricas o elípticas, estas conidias presentan unavacuola cerca del centro
Hospederos primarios:
Acacia sp, Allium spp , Anacardium occidentale, Annona muricata, Annona squamosa ,Anthurium andreanum , Camellia sinensis , Capsicum annuum , Carica papaya, Citrusaurantifolia, Citrus grandis, Citrus limon, Citrus reticulata, Solanum quitoense, Citrus sinensis,Coffea arabiga, Dioscorea sp, Gossypium sp, Hevea brasiliensis, Solanum lycopersici, Malusdomestica, Mangifera indica, Manihot esculenta, Morus alba,Rubus glaucus, Perseaamericana, Piper nigrum, Psidium guajava, Pyrus sp, Solanum melongena, Spondias purpurea,Theobroma cacao, Solanum betacea.
Hospederos secundarios:
Arachis hypogaea, Artocarpus altilis, Averrhoa carambola, Cajanus cajan, Ceiba pentandra,Centrosema sp, Cicer arietinum, Citrullus sp, Cocos nucifera, Colocasia esculenta, Cucumismelo, Cucurbita pepo, Chrysanthemum sp, Daucus carota, Elaeis guineensis, Elettariacardamomum, Eucalyptus sp, Ficus carica, Garcinia mangostana, Glycine max, Lens culinaris,Leucaena leucocephala, Lupinus arboreus, Malva sp, Momordica charantia, Musa sp, Myristicafragrans, Olea europaea, Passiflora edulis, Phaseolus vulgaris, Pisum sativum, Prunus avium,Ricinus communis, Rosa sp, Vicia faba, Vigna unguiculata, Xanthosoma sp.
Biología y ecología: (Continuaciaón).
Factores que favorecen el patógeno
Alta humedad relativa (> 82%) (> 95%)
T°C entre 18 y27°C (< 15°C)
Senescencianatural
Nutricióninadecuada
Estrésambiental
CICLO DE VIDA
Forma un estromamicelial, debajode la cutícula de laplanta
Rompimiento de lacutícula debido a lamasa deconidióforos que seencuentran en elacérvulo.
Acérvulohúmedo
dis
emin
ació
n
lluvia Viento Insectos
apresorio
Co
nid
ios
germ
inan
en
pre
sen
cia
de
agu
a
Clavija de penetración
Crecimiento hifas rápido
Herramientas
Inicialmente no hay síntomas
18 horas
5 dias
4 días
5 días
Colletotrichum sp.
1%
50%25%
10%5%
0 1 10 25 505
Fuente: Botero, 2007
<1% 10% 20% 50%
Correlación entre los promedios de rendimiento e índice de severidad de antracnosis en los genotipos susceptibles (UTP-4 y UTP-2)López, et al., 2013
Simbiosis con otros microorganismos:
Bacterias procedentes del filoplano como las cepas 14 y UV3 de
Pseudomonas spp., estimulan la formación de apresorios de Colletotríchum
acutatum aislado de fresas en Australia, dicho estímulo se relaciona con un
estrés por nutrientes (Blakeman, 1977).
Mc Cracken y Swinburne (1999), encontraron que Bacillus sp. aislado de
hojas de cítricos promueve la formación de apresorios en C.. goeosporíoides.
Así mismo Pseudomonas spp. aislada de hojas de remolacha muestra
también este efecto sobre C.. dematium y C. acutatum: debido a la
competencia por nutrientes de bacterias procedentes del filoplano.
Brown y Swinburne (1981), determinaron que agentes quelatores como los
sideróforos bacteriales, procedentes de la cepa de Pseudomonas UV3,
presentan alta afinidad por el hierro contenido en la matriz conidial y siendo
un factor importante en la estimulación de la germinación de Colletotríchum
musae aislado de bananos.
Antagonismo:
Bacillus sp., tiene un efecto antagónico frente a C. gloeosporioides,
produciendo lisis celular y reducción en el porcentaje de germinación de
conidias de Colletotríchum (Lenné y Parbery, 1976).
En Colombia, Bravo (2003) ha realizado pruebas de antagonismo
bacterial in Vitro, con el fin de evaluar el comportamiento de B. subtilis
frente a varios hongos fitopatógenos, incluyendo a C. gloeosporioides
aislado de cítricos, encontrándose disminución en la germinación de
conidias, e inhibición en el crecimiento micelial de Colletotrichum.
En Brasil se han realizado pruebas de antagonismo contra C.
gloeosporioides. con diferentes cepas de hongos como Cladosporium
sp., Fusarium sp. y Trichoderma sp.; según el antibiograma se encontró
inhibición en el crecimiento micelial de Colletotrichum con algunas cepas
de Trichoderma y Fusarium sp (Silvana, 1994).
Antagonismo: (Continuación).
Así mismo, Leben (1965) afirma que Pseudomonas cepacia produce in. vitro butanol
soluble que es un compuesto antifungal, el cual reduce el desarrollo de la Antracnosis
causada por Collectotríchum lagenarium en pepino.
Bacillus subtilis aislado de la superficie de la leguminosa forrajera Stylosanthes
guianensis en la región de Pucallpo (Perú), exhibió una actividad antifúngica contra
Collectotríchum gloeosporioides reduciendo significativamente el crecimiento micelial,
la germinación y la producción de conidias (Badel, 1994).
Douville y Boland (1992), mostraron que el filtrado libre de células del aislamiento de
Bacillus subtilis. redujo significativamente la incidencia de la Antracnosis causada por
Collectotríchum trífolii en plántulas de alfalfa de 56% a 16% y la severidad de 2 a 12.
B. Subtilis o el producto antifúngico puede ser útil en el tratamiento de semillas o en el
control directo de la enfermedad de la planta.
Dennis (2001) reporta que existen cepas de Tríchoderma lignorum de crecimiento
rápido que inhiben el desarrollo de C glooeosporíoides aislado de maracuyá causando
tisis celular de la hifa, reduciendo el desarrollo de la enfermedad.
Manejo fitoquímico:
Bernal, 2008 concluye que el extracto de canela posee una acción fungicida para el
desarrollo del hongo Colletotrichum gloeosporioides causante de la antracnosis en mora
evaluada in Vitro.
Las concentraciones mas eficientes de extracto de canela Cinnamomum zeylanicum
Nees al 95 % de pureza son 5 ppm y 30 ppm. Otro extracto que se referencia en la
literatura es manzanilla (Matricaria chamomilla L.)
Mildeo polvoso
(Oidium sp.)
Kingdom:Fungi
Division:Ascomycota
Class:Ascomycetes
Order:Erysiphales
Genus:Oidium
Mildeo polvoso
(Oidium sp.)
Se considera la segunda enfermedad mas importancia de este cultivo, después de antracnosis y moho gris,
se caracteriza por la presencia de un polvillo de color blanco grisáceo a gris ceniza, que afecta
especialmente el envés de las hojas acompañado de lesiones necróticas pequeñas, de forma irregular y de
color casi negro. Esta enfermedad causa retraso en el desarrollo de la planta y las ramas afectadas toman
apariencia de látigo.
Temperaturas superiores a 15º suficientes para el desarrollo de las conidias Déficit de agua Deficiencia de Azufre
0 10
20 50
Escala de severidad deMildeo polvoso en hojas
Mildeo polvoso (Oidium sp.)
•Fertilización balanceada en S y Cu
•Nutrición vegetal adecuada en K, Ca, Mg y P.
•Aplicación de Miclobutanil (Rally) en rotación con Procloraz (Sportak,
Mirage), Azufre (Top Sul, Elosal, zuAco), Flusilazol (Punch), Polisulfuro
de calcio (Polycal), Sulfato de cobre pentahidratado (S-Kuper) en dosis
de 0.2 g, 0.7 cc, 4 cc, 0.4 cc, 2.5 cc y 1.5 cc/l respectivamente
•Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos (Nutri Phite, Cera Quin,
Agrifos, Acua Phite en dosis de 2 cc/l, cada 20 días a partir del día 10.
•Aplicación de Fosetil Aluminio (Elicit, Aleato, Aliette, Fosetal) en dosis de
2.5 g/l alternado con las aplicaciones de fertilizantes a base de fosfitos
•Aplicación de Trichoderma sp (Tricho D, Safersoil) en dosis de 1 g/l
dirigida al plato.
•Aplicación de fertilizante inorgánico líquido con microorganismos
eficientes (Oasis) en dosis de 5 cc/l.
•Aplicación de EcoSwing en dosis de 1 cc/l.
Mildeo velloso
(Peronospora spp.)
Kingdom:ChromalveolataPhylum:HeterokontophytaClass:OomycetesOrder:PeronosporalesFamily:PeronosporaceaeGenus:Peronospora
Temperatura 17º –22ºC (ciclo de germinación -3 días)Humedad relativa superior a 80%
<1% 5%
10% 50%
MILDEO VELLOSO (Peronospora sp.)
a. Mejorar la aireación del cultivo mediante distancias de
siembra amplias, manejo oportuno de arvenses y realización de
podas de realce y de formación periódicamente.
b. Aplicación de Trichoderma sp en dosis de 1 g/l o 300 g/ha,
cada 30 días.
c. Aplicación de fertilizante inorgánico líquido con
microorganismos eficientes (Oasis) en dosis de 5 cc/l.
d. Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos potásicos
(CeraQuin, Agrifos, Nutri Phite, Acua Phite, y Kasugamicina en
dosis de 2 cc/l de cada uno de los productos.
e. Aplicación de productos a base de Cobre penta hidratado (S-
Kuper) en dosis de 1.5 cc/l, Mandipropamid (Revus) en dosis de
1.0 cc/l, Folpet + Cymoxanil (Pronto) en dosis de 2g/l, Bacillus
subtilis raza QTS 713 (Rhapsody), 2.5 a 5.0 cc/l, Fosetil
Aluminio (Elicit, Fosetal, Alliete, Aleato) 2 a 4 g/l, Metalaxyl
(Altair) 2.5 g/l, Metiram + Ametoctradine (Orvego) 1.5 g/l,
Fenamidone + Fosetil Aluminio (Mildex) 0.8 a 1.0 g/, Quattro
Gold (Azoxystrobin); Quattro Gold
(Azosxystrobin+Tebuconazole).
Formas de penetración e invasión
Penetración directa
Penetración a través de heridas naturales o artificiales
Cercospora
clasificación cientifica
Reino: hongos
Filo: Ascomycota
Clase: Dothideomycetes
Orden: Capnodiales
Familia: Mycosphaerellaceae
Género: Cercospora
Productos para Cercopsora
Quattro, Helmstar ( Azoxystrobin)Timorex (Melaleuca alternifolia)Sportak (Plochloraz)Metropol ( Azoxystrobin + Flutriafol)Quattro Gold, Xstrata Gold (Azoxystrobin+Tebuconazole)Xstrata ( Azoxystrobin)Sportak, Octave (Procloraz)Rovral (Iprodione)Comodin, Folicur (Tebuconazole)Score (Difenoconazole)Silvacur Combi (Tebuconazole+Triadimenol)Punch (Flusilazol)Nativo (Tebuconazole+Trifloxystrobin)Mertec (Tiabendazol)Microthiol (Azufre)Impact (Flutriafol)Cuprofix (Caldo bordeles)Comet (Pyraclostrobin)Helmforce Xtra (Azoxystrobin+Cyproconazole)Magnate Sulfato (Imazalil)
Planta hospederaOrganismo plaga
Nombre vulgar Nombre científicoBesitos Impathiens balsamina Nematodos Meloidogyne spp
Coquito, cortadera Cyperus spNematodos Meloidogyne sppPalomillas de la raíz
Browalia Browalia americanaNematodos Meloidogyne sppMoko Ralstonia solanacearum
Emilia, lechuguilla Emilia sonchifoliaPalomillas de la raízMoko Ralstonia solanacearum
Lengua de vaca Rumex sppPerla de tierraCercospora spPalomillas de la raíz
Llantén Plantago major Perla de tierra
Venadillo Conyza canadiensesPalomillas de la raízMosca blanca
Yerba mora Solanum nigrumÁfidosMoko Ralstonia solanacearum
Papunga, cadillo Bidens pilosaTripsÁfidos
Guasca Galinsoga parviflora TripsAcedera Oxalis corniculata Roya en cebollaCampesina Lantana cámara Mosca blanca
Cerraja Sonchus oleraceusÁfidosTripsPerla de tierra
Sangre de toro Euphorbia heterophylla MildeosActinodaphne lancifolia Mosca del ovario Bruggmanniella
actinodaphnesCiannamomumjaponicum Bruggmanniella cinnamomi
La roya (Spirechina loeseneriana o Gerwasia lagerheim), marchitez y pudrición de raíz (Verticillium spp., Fusarium spp., Rosellinia spp.) (Franco et al. 2000).
Productos para el manejo de Roya: Propiconazol (Tilt, Propizole, Held); Epoxiconazole (EpoK, Rubric);Azoxystrobin+Cyproconazol (Helmforce); Szoxystrobin+Flutriafol (Metropol, Authority); Pyraclostrobin (Comet);Triadimenol (Bayfidan); Metconazole (Caramba); Difenoconazole+Propiconazole (Ciclope); Penconazol (Topas);Tebuconazole+Triadimenol (Silvacur); Flusilazol (Punch); Cyproconazole (Alto 100);Epoxiconazole+Pyraclostrobin (Opera); Oxicloruro de cobre (Oxicob); Tebuconazole+Trifloxystrobin (Nativo);Hexaconazol (Mildium); Hidróxido cúprico (Kocide); Captan (Maestro); Flutriafol (Impact).
Época de ataque (DDS): 20
Época de manejo (DDS): - 5
Prácticas de manejo.
a. Aplicación de Trichoderma sp (Tricho D, Safersoil) en dosis de 1 g/l, dirigida al sitio de siembra.
a. Aplicación de fertilizantes a base de fosfitos potásicos (Cera Quin, Agrifos, Nutri Phite, Acua Phite, y Kasugamicina en dosis de 2 cc/l de
cada uno de los productos.
a. e. Aplicación de productos a base de Sulfato de Cobre Pentahidratado (Skuper) en dosis de 1.5 cc/l, Mandipropamid (Revus) en dosis de
1.0 cc/l, Folpet + Cymoxanil (Pronto) en dosis de 2 g/l, Bacillus subtilis raza QTS 713 (Rhapsody), 2.5 a 5.0 cc/l, Fosetil Aluminio (Elicit,
Fosetal, Aliette, Aleato) 2 a 4 g/l, Metalaxyl (Altair, Maxin)) 2.5 g/l, Metiram + Ametoctradine (Orvego) 1.5 g/l, Fenamidone + Fosetil
Aluminio (Mildex) 0.8 a 1.0 g/l, Tiabendazol ( Mertec), Azoxystrobin (Amistar), Dazomet (Basamid), Magnate Sulfato (Imazalil),
a. Aplicación de Kasugamicina (Kasumin) + Procloraz (Sportak, Mirage) en dosis de 0.7 cc/l, dirigida al cuello de la planta.
a. Aplicación de fertilizantes inorgánicos líquidos con microorganismos eficientes (Oasis) dirigido a la cama de siembra en dosis de 5 cc/l.
a. Aplicación de fertilizantes a base de Fosfitos (Cera Quin, Fito Cup, Nutri Phite, Agrifos, Acua Phite).
Descripción de la enfermedad: se caracteriza por presentar marchitamiento de la planta, de manera progresiva hasta causar la muerte, en el
sistema radicular se observa necrosamiento total y descortezamiento de la misma, además de pudrición húmeda.
Marchitez y pudrición radicular Verticillium sp, Fusarium sp, Phytophthora s
MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS Y ENFERMEDADES EN EL CULTIVO DE LA MORA
LA RESPONSABILIDAD ES DE TODOS