UNIVERSIDAD DE CUENCA
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
1 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
RESUMEN:
“PREVALENCIA E IDENTIFICACION DE PROTOZOOS
(Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.) EN CANINOS
DE LA CIUDAD DE CUENCA”
La presente investigación está dirigida al campo de la
parasitología de pequeñas especies, cuyo título es:
Prevalencia e identificación de protozoos (Giardia canis,
Ameba spp. y Coccidia spp.) en caninos de la ciudad de
Cuenca; estos microorganismos carecen de pared celular y
su citoplasma contiene un núcleo bien definido. Poseen
órganos de motilidad como: seudópodos, flagelos y cilios. Las
formas vegetativas (trofozoítos) se transforman en quistes
para sobrevivir en condiciones adversas del medioambiente.
Se caracterizan por causar infección del tracto gastrointestinal
especialmente del intestino grueso destruyendo el epitelio,
ocasionalmente penetran la mucosa y se diseminan a otros
órganos. La infección parasitaria se contrae por ingestión de
los quistes maduros los mismos que salen al medio de la
materia fecal de animales parasitados, la signología en el
animal es gastroenterica llegando incluso a ocasionar la
muerte. Para el diagnóstico, se ha utilizado la técnica de
flotación con Sulfato de Zinc, la misma que permite
identificar quistes y ooquistes de protozoos de esta manera
emitir un buen diagnóstico y dar un tratamiento efectivo de
acuerdo al animal y al grado de infestación. En esta
investigación se obtuvieron los siguientes resultados En
caninos machos y hembras en tres rangos de edad de las 4
áreas del cantón Cuenca de acuerdo a los grados de
infestación tenemos para Giardia canis: Baja con 3,45%,
Media con 1,25%, Alta con 0,37%. Ameba spp.: Baja con
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11,58%, Media con 3,10%, Alta con 1,03%. y Coccidia
spp.: Baja con 8,91%, Media con 3,25%, Alta con 1,31%.
Palabras Claves: Prevalencia, técnica, flotación,
centrifugación, protozoos, Giardia, Ameba, Coccidia, sulfato,
Zinc.
INDICE
Contenido Página
Introducción…………………………………..............….... 7
Objetivos……………………………………..………….….. 8
I REVISION DE LITERATURA………..………………... 9
1.1. PROTOZOOS………………………...……….....…. 9
1.1.1. CLASE RHIZOPODARIA: AMEBA………. 11
1.1.1.1. Historia……………….……….…………... 11
1.1.1.2. Taxonomía……………..…..…………...… 13
1.1.1.3. Morfología…………..……..……………… 13
1.1.1.4. Amebiasis………………………….….….. 15
1.1.1.4.1. Definición…………..………..….….. 15
1.1.1.4.2. Etiología……………..………..……. 16
1.1.1.4.3. Ciclo parasitario………………..…... 16
1.1.1.4.4. Epidemiología………………..…….. 20
1.1.1.4.5. Patogenia……………………..…….. 21
1.1.1.4.6. Cuadro clínico………………….…… 23
1.1.1.4.7. Diagnóstico….………………..…..… 25
1.1.1.4.8. Diagnóstico diferencial………..…… 26
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3 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
1.1.1.4.9. Pronóstico……………….….….…… 27
1.1.1.4.10. Tratamiento……………….……… 27
1.1.1.4.11. Prevención…………………..…… 28
1.1.2. CLASE FLAGELADA: GIARDIA………...… 28
1.1.2.1. Historia.………..….……………...……… 29
1.1.2.2. Taxonomía..…………..…..………..….... 29
1.1.2.3. Morfología……………….….………..….. 30
1.1.2.4. Giardiasis…..…………….…………..….. 31
1.1.2.4.1. Definición…………….……….….…. 31
1.1.2.4.2. Etiología……………………..….…… 32
1.1.2.4.3. Ciclo parasitario………………..…… 32
1.1.2.4.4. Epidemiología…………............…… 34
1.1.2.4.5. Patogenia……….……………….….. 35
1.1.2.4.6. Cuadro clínico…...…………….…… 36
1.1.2.4.7. Diagnóstico…………….…..…….… 37
1.1.2.4.8. Diagnóstico diferencial……….…… 39
1.1.2.4.9. Tratamiento………………….……… 39
1.1.2.4.10. Prevención….......……….…… 40
1.1.3. CLASE ESPOROZOARIA: ISOSPORA…. 41
1.1.3.1. Taxonomía…………….…………...… 41
1.1.3.2. Morfología……..…………………...… 41
1.1.3.3. Coccidiosis………...…………….…… 42
1.1.3.3.1. Definición……………………….…… 42
1.1.3.3.2. Etiología………………..…………… 43
1.1.3.3.3. Ciclo parasitario………………...….. 43
1.1.3.3.4. Epidemiología……..…………....….. 45
1.1.3.3.5. Patogenia……………...........……… 46
1.1.3.3.6. Cuadro clínico………………….…… 47
1.1.3.3.7. Diagnóstico…….……..……….....… 48
1.1.3.3.8. Diagnóstico diferencial………..…... 49
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1.1.3.3.9. Pronóstico…………………….…….. 49
1.1.3.3.10. Tratamiento……….……….….… 50
1.1.3.3.11. Prevención……………….……… 51
1.2. METODO DE FLOTACION CON SULFATO DE
ZINC..51
1.2.1. Concentración por
flotación...………….…………………….……… 52
1.2.2. Control de calidad del método…………… 52
1.2.3. Ventajas y desventajas…..………….……. 53
1.2.4. Materiales para preparar la solución de
Sulfato de zinc……………………………..…… 53
1.2.5. Preparación de la solución de Sulfato de
zinc…………………………….……………...…. 53
1.2.5.1. Ajuste de densidad………………….…… 54
1.2.6. Ejecución del método………………….….. 55
1.2.6.1. Pasos del método………...……………… 55
1.2.6.1.1. Filtrado y lavado de heces………… 55
1.2.6.1.2. Flotación en sulfato de zinc………. 56
1.2.6.1.3. Recuperación del flotante……….… 56
1.2.6.1.4. Observación al microscopio………. 56
1.2.7. Desinfección………………………..……….57
1.2.8. Puntos importantes……………….……….. 57
1.2.9. Interpretación………………………..…….. 57
II MATERIALES Y METODOS…………………….…… 58
2.1. MATERIALES…………………………………..….. 58
2.1.1. Materiales de campo………………..……. 58
2.1.2. Materiales de laboratorio…………….…… 59
2.1.3. Materiales de escritorio……………..….… 60
2.2. MÉTODOS………………………..…………..……. 61
2.2.1. Manejo del experimento……………….… 61
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2.2.1.1. Métodos de campo………………….…… 61
2.2.2. Area de estudio………………...........…… 62
III RESULTADOS Y DISCUSION………………….…… 63
3.1. Análisis Estadístico……………………………….. 64
3.2. Métodos de evaluación y datos a tomarse……. 64
3.3. Análisis de las muestras………………….……… 64
3.4. Factores a estudiar……………….……….……… 65
3.5. Procedimientos estadísticos………………...…… 65
3.6. Cuadros y gráficos estadísticos……………..…… 67
IV CONCLUSIONES………….…………………...……. 115
V RECOMENDACIONES………….…….…………..…. 116
VIII BIBLIOGRAFIA………………….…………..…….… 118
IX ANEXOS…………..……………..……………..…..… 123
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(Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp.) EN CANINOS
DE LA CIUDAD DE CUENCA”
Tesis de Grado, previa a la obtención del
Título de Médico Veterinario Zootecnista
AUTORES: Beatriz Catalina Méndez Albarracín
Carlos Enrique Almeida Fárez
DIRECTOR: Dr. MVZ. Fredi Carpio Alemán.
CUENCA – ECUADOR
2011
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INTRODUCCION
La Parasitología en Medicina Veterinaria de Pequeñas
Especies ha evolucionado con el pasar de los años gracias al
avance de la ciencia y la tecnología, en la actualidad es una
rama fundamental del diagnóstico clínico veterinario, ya que
los parásitos son los causantes de numerosas enfermedades
en las mascotas, éstos se dividen en muchos géneros y
especies.
Es de trascendental importancia realizar esta investigación
no solamente por su incidencia en los animales de compañía
sino también por el impacto de estas enfermedades en la
salud pública, las que pueden ser zoonósicas, es decir que
se transmiten de los animales al hombre y viceversa, la clave
para poder luchar contra estos parásitos intestinales de los
animales menores es su identificación y reconocimiento,
saber su comportamiento y cómo actúan sobre los mismos y
finalmente su eliminación.
Esta investigación está dirigida al tipo protozoos como son:
Giardia canis, Ameba spp. y Coccidia spp., parásitos que
colonizan y se reproducen en la mucosa del tracto
gastrointestinal, llegando a causar cuadros clínicos severos e
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incluso la muerte de los caninos. Por otra parte la Medicina
Veterinaria también se ha visto afectada, por el lado de las
patologías asociado al convivir con animales de compañía
(caninos) que han permitido el intercambio de formas
parasitarias que pueden afectar significativamente la salud de
los animales y del ser humano.
La presente investigación está encaminada a estudiar la
prevalencia e identificación de protozoos por medio del
método de flotación a través de la centrifugación de una
suspensión de heces, con solución de sulfato de zinc al 33%
con una densidad 1.180 y añadiendo una gota de lugol al 5%,
la misma que permite colorear e identificar de mejor manera
quistes y ooquistes de protozoos bajo microscopio.
Para la realización de esta investigación nos planteamos los
siguientes
Objetivos:
OBJETIVO GENERAL:
1. Determinar la prevalencia de protozoos (Giardia canis,
Ameba spp. y Coccidia spp.), mediante la técnica de
sulfato de zinc, en perros de la ciudad de Cuenca.
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OBJETIVOS ESPECIFICOS:
1. Identificar los protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y
Coccidia spp.), mediante el método de centrifugación
utilizando la técnica de sulfato de zinc en perros de la
ciudad de Cuenca.
2. Cuantificar porcentualmente la presencia de Giardia
canis, Ameba spp. y Coccidia spp., en caninos de la
ciudad de Cuenca según la raza, edad y sexo.
3. Determinar cuáles son las áreas de la ciudad de
Cuenca, donde existe mayor presencia de Giardia canis,
Ameba spp. y Coccidia spp.
I REVISION DE LITERATURA
1.1. PROTOZOOS
Etimológicamente el estudio de los protozoos procede de tres
palabras:
Protos.- Primero, primitivo.
Zoon.- Animal
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Logos.- Estudio, tratado.
Los protozoos son microorganismos unicelulares eucariotas
en los que todas las funciones vitales ocurren en el interior de
una sola célula. Carecen de pared celular y su citoplasma
contiene un núcleo bien definido y otros orgánulos. Los
protozoos son capaces de producir enfermedades en el
huésped humano y en animales10
.
Algunos protozoos son móviles. Los órganos de motilidad
varían desde simples estructuras como pseudópodos
(proyecciones del citoplasma) hasta estructuras complejas
como flagelos y cilios. Característico de algunos protozoos es
que las formas vegetativas (trofozoítos) se transforman en
formas de alta resistencia llamadas quistes cuando les falta
alimento o se producen cambios hostiles en el hábitat. El ciclo
vital de los protozoos presenta diferentes estadios, aunque no
en todos ellos ocurren todos, unos presentan fases
asexuadas y otros también sexuadas10
.
El perro es hospedador de muchos géneros de protozoos
entre los que se encuentran: Flagelados intestinales:
(Giardia, Trichomonas), hemoflagelados (Tripanosomas,
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Leishmania), Rhizopodarios: (Entamoeba), ciliados
(Balantidium), Esporozoarios: (Isospora, Hammondia,
Cryptosporidium, Sarcocystis, Neospora, Toxoplasma,
Caryospora piroplasmas (Babesia), un hemogregarínido
(Hepatozoon) y un microsporidio (Encephalitozoon)14
.
1.1.1. CLASE RHIZOPODARIA: AMEBA
1.1.1.1. Historia
Las enfermedades asociadas a infección por amebas
parasitarias se conocen desde la antigüedad, en especial el
cuadro colónico y la enfermedad diseminada cuyo agente
causal, Entamoeba histolytica, fue descubierto en 1875 por
Fedor Alexandrovich Lesh médico ruso21
.
Lesh estudió el caso de un joven campesino que presentaba
diarrea, malestar general y molestias rectales. Bajo el
microscopio observó las heces del enfermo y notó
formaciones en movimientos con pseudópodos. Eran células
amibianas, a las cuales denominó “amibas del colon”, o sea
Amoeba coli. Lesh asoció la presencia de las amebas con la
enfermedad del joven y aplicó tratamiento. Por primera vez se
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hacían ambas cosas en la Historia de la Medicina. No
obstante el paciente murió. Lesh encontró en la autopsia
ulceraciones en el colon. Luego introdujo material fecal del
enfermo a unos perros y en uno de ellos apareció el cuadro
disentérico. Pero Lesh dudó y no dijo que las amibas eran
agente causal de la enfermedad. Simplemente pensó que
empeoraban el cuadro clínico19
.
En 1890 Willian Osler describió un absceso hepático.
Encontró muchas amibas, pero no sacó conclusiones para
inculparlas. Councilman y Lafleur, en 1891, acuñaron los
términos disentería amibiana y absceso hepático. Además
hablaron de la existencia de diferentes tipos de amibas en el
intestino humano: unas patógenas y otras no. Dos médicos
alemanes, Quincke y Ross, en 1938, establecieron las
diferencias entre Entamoeba coli y Entamoeba histolytica.
Describieron también el quiste como forma resistente de las
amibas. En 1913, Walter y Sellar hicieron un experimento con
prisioneros filipinos, quienes ingirieron material con varias
especies de amibas. Los que ingirieron Entamoeba coli (30 %
de las personas la tuvieron pero no enfermaron), al contrario
del grupo que consumió la Entamoeba histolytica (25 % de
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las personas que la tuvieron se enfermaron, el otro 75 % eran
portadores sanos)19
.
1.1.1.2 Taxonomía
• Phylum: Sarcomastigophora
• Sub-phylum: Sarcodina
• Clase: Rhizopodaria
• Orden: Amoebida
• Sub-orden: Tubulina
• Familia: Entamoebidae
• Géneros: Entamoeba
• Especies: histolytica
dispar
coli
hartmanii
gingivalis
polecki
nana11
.
1.1.1.3 Morfología
Las Amebas emiten pseudópodos a base de material
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protoplásmico locomotor; tiene dos formas o fases de
desarrollo bien establecidas, el trofozoíto y el quiste. El
trofozoíto o forma vegetativa es irregular o ameboide. Los
trofozoítos al microscopio son células alargadas con
lobopodios laterales y con frecuencia uvoide posterior.
Presentan membrana citoplasmática, citoplasma dividido en
dos porciones, una externa hialina y transparente, casi sin
granulaciones, llamada ectoplasma y una porción interna muy
granulosa que contiene los organelos celulares, denominada
endoplasma. El núcleo es esférico con un acúmulo de
cromatina pequeño y puntiforme en el centro, llamado
endosoma o centrosoma. También presenta cromatina
adherida a la cara interna de la membrana nuclear, distribuida
en forma homogénea24
.
FIGURA N° 1. Trofozoíto y quiste de Ameba spp10
.
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Si las condiciones ambientales no son propicias, el trofozoíto
empieza a cambiar de forma, deja de emitir pseudópodos, el
ectoplasma y el endoplasma ya no se diferencia, de manera
que casi desaparece el primero, se pierde la forma irregular y
se hace esférico, al tiempo que aparece una pared gruesa,
llamada pared quística, también a expulsado al exterior todo
el contenido de las vacuolas y empieza a formar material de
reserva como vacuolas de glucógeno y barras
cromatoidales24
.
1.1.1.4 AMEBIASIS
1.1.1.4.1 Definición
La amebiasis es una infección del intestino grueso producida
por Ameba patógena spp., que ocasionalmente penetrará la
mucosa y se diseminará a otros órganos12
.
Las infecciones causadas por amebas constituyen una de las
infecciones oportunistas emergentes de mayor interés
médico. Aunque es poco frecuente, se han descrito en casi
todo el mundo, su diagnóstico depende de un alto índice de
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sospecha, sobre todo morfo-patológico y estudios de
laboratorio21
.
Es una enfermedad parasitaria que afecta fundamentalmente
al hombre y que puede producir cuadros digestivos de mucho
interés en el perro. Sus manifestaciones pueden variar desde
portadores asintomáticos a enfermedad de grado variable1.
1.1.1.4.2 Etiología
Varias especies de amebas pueden habitar el tracto intestinal
de los animales, pero de ellas sólo Entamoeba histolytica
parece ser patógena. En la actualidad, se considera que la
cepa caracterizada por tamaño pequeño y carente de
virulencia es Entamoeba hartmanii y que la cepa de mayor
tamaño corresponde a Entamoeba histolytica, que sería la
ameba patógena para el hombre y los animales1.
1.1.1.4.3 Ciclo parasitario
Entamoeba histolytica existe en dos formas:
El trofozoíto, forma móvil o forma tisular invasiva y
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El quiste, forma inmóvil o forma tubular o infectante para
el hombre y los animales.
La forma vegetativa tisular denominada trofozoíto, habita en
el lumen, pared o en ambos lugares del colon1.
Los trofozoítos pueden habitar el lumen del colon como
comensales o invadir la pared colónica. En raras
oportunidades se diseminan hacia otros órganos como el
hígado, pulmones, cerebro, la piel perianal y los genitales7.
Las bacterias y las células intestinales descamadas, además
de los hidratos de carbono procedentes de los alimentos, le
proporcionan los nutrientes necesarios para su metabolismo y
confieren al medio intestinal cierto grado de anaerobiosis y un
pH moderadamente bajo (6-6.5) condiciones óptimas para su
subsistencia12
. La infección parasitaria se contrae por
ingestión de los quistes. Los trofozoítos se desenquistan en el
intestino delgado pero se asientan en el intestino grueso
donde colonizan la mucosa y se multiplican por fision
binaria14
.
Cada uno de ellos mide de 15 – 60um de diámetro y está
dotado de notable movilidad mediante pseudópodos. En su
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centro se encuentra el núcleo de 4 -8um de diámetro, provisto
de un nucléolo esferoide12
.
Una vez formados los quistes, éstos son eliminados al
exterior con las heces para completar el ciclo14
.
A medida que avanza por el colon, algunos de los trofozoítos
se redondean, pierden sus inclusiones y en su interior
contienen una gran vacuola de glucógeno para nutrirlos,
constituyendo los denominados prequistes12
.
Cuando hay diarrea, los trofozoítos salen en el contenido
fecal y presentan muchas veces eritrocitos fagocitados;
cuando no hay diarrea, los trofozoítos suelen enquistarse
antes de abandonar el intestino, rodeándose de una pared
muy resistente a los cambios ambientales, a las
concentraciones de cloro en agua potable y a la acidez
gástrica. Los quistes maduros al ser ingeridos por un nuevo
hospedero repiten el ciclo12
.
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19 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
FIGURA No 2. Ciclo parasitario de Ameba spp.
17.
El quiste es la forma infectante y predomina en las
deposiciones de portadores asintomáticos o de formas leves
de la enfermedad. Estos quistes sobreviven fuera del
hospedero por días o semanas, en especial en condiciones
de baja temperatura y humedad, constituyen el estado
infectante en el ciclo de vida del parásito y así la infección se
transmite de un hospedero a otro, con la ingestión de
alimentos o agua contaminada con deposiciones12
.
Una vez ingeridos estos quistes, sus núcleos sufren una
división adicional debido a la acción de las secreciones
intestinales que digieren la pared del quiste, quedando en
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20 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
libertad ocho formas amebianas o trofozoítos dispuestos a
continuar el ciclo12
.
1.1.1.4.4 Epidemiología
Aunque Entamoeba histolytica puede infectar el tubo
digestivo de varios animales, el principal huésped y reservorio
es el ser humano; la distribución de Entamoeba histolytica es
mundial. Los trofozoítos no son capaces de enquistarse fuera
del intestino y mueren en cuanto lo abandonan. Los
transmisores son individuos infectados que eliminan quistes
con las heces y se constituyen, así, en el principal problema
epidemiológico. Los quistes eliminados se mantienen en el
ambiente en cualquier situación climática. La transmisión se
produce en forma fecal oral, ya sea por vía directa de animal
a animal o indirecta a través de alimentos o aguas
contaminadas12
.
El quiste maduro es la forma infectante por cuanto es capaz
de resistir a la cloración del agua y las condiciones
ambientales, ya que los trofozoítos apenas sobreviven fuera
del hospedador1.
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21 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
1.1.1.4.5 Patogenia
Los trofozoítos de Entamoeba histolytica dañan el
intestino al adherirse y
provocar lisis en las células huésped y secretar enzimas que
rompen las conexiones intercelulares. La presencia de ciertas
bacterias y una ingesta proteica deficiente por parte del
huésped contribuyen a la virulencia del parásito. La propia
respuesta inmunológica celular del huésped frente a las
amebas que invaden el tejido puede exacerbar el daño. La
diarrea secretora puede ser inducida por la serotonina y otros
factores secretados por los trofozoítos7.
Una vez ingeridos, los quistes superan la barrera ácida del
estómago. La pared quística se disuelve en el intestino
delgado y los trofozoítos quedan en libertad, formándose
microúlceras que luego crecen hasta constituir úlceras
amebianas, que representan la lesión anatomopatológica
fundamental de la amebiasis intestinal12
.
Las úlceras alcanzan el colon, predominantemente en el
ciego, el sigmoide y el recto. Estas úlceras presentan dos
patrones claramente definidos: nodular e irregular. Las
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22 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
ulceras nodulares son redondeadas, de un diámetro entre 1 y
5 mm, con áreas de mucosa ligeramente elevadas y áreas
necróticas, deprimidas o hemorrágicas, rodeadas por un
borde de tejido edematoso. A menudo estas áreas están
llenas de un material mucoso y amarillento denominadas
“úlceras en botón de camisa”, en las cuales pueden verse
trofozoítos. En ocasiones, estas lesiones pueden llegar a
cubrir la mayor parte de la mucosa del colon, causando
edema y eritema en las áreas mucosas que no se encuentran
comprometidas. Las úlceras irregulares tienen 1 a 5 cm de
longitud y se encuentran habitualmente en el ciego y colon
ascendente. Sus márgenes suelen ser elevados y
edematosos y la úlcera se llena de fibrina15
.
A través de la vena porta, las amebas alcanzan el hígado,
donde suelen
destruirse y solo ocasionan una hepatitis reactiva de escaso
significado clínico. Sin embargo, a veces originan la
formación de un absceso hepático, que es la manifestación
más frecuente e importante de la amebiasis extraintestinal y
se asienta más a menudo en el lóbulo derecho del hígado
debido a la distribución anatómica de la sangre portal12
.
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1.1.1.4.6 Cuadro clínico
La mayoría de los pacientes infectados lo están por formas no
patógenas o son simples portadores asintomáticos. Los
síntomas se distinguen por manifestaciones intestinales que
aparecen tras un periodo de incubación que oscila entre 7 y
15 días y se puede presentar en dos formas:
1.- Amebiasis intestinal crónica
2.- Amebiasis intestinal aguda
1.- Amebiasis intestinal crónica
Los síntomas comienzan paulatinamente con molestias
vagas, como anorexia y astenia moderadas, dolores
abdominales difusos y tendencia a las deposiciones pastosas
o semilíquidas. Poco a poco, en el curso de 1-2 semanas, las
manifestaciones se vuelven más concretas y el número de
deposiciones diarreicas pardo-amarillentas aumenta hasta 4-
8 diarias en los casos leves; puede advertirse sangre o moco
al defecar y no hay fiebre. Estos síntomas suelen cursar en
brotes de unas semanas de duración, que recurren varias
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24 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
veces al año y alternan con períodos de normalidad casi total
o incluso de estreñimiento12
.
En los casos más graves, en los que las úlceras tienden a
difundir a lo largo de todo el colon, a menudo con afección
preferentemente rectosigmoidea, los dolores son más
intensos y difusos, el número de deposiciones se incrementa
notablemente, encontrándose mezclado con sangre. En estos
pacientes la afección rectal es casi constante, con tenesmo y
pujos y las heces se acompañan de eliminación de moco
abundante, a menudo mezclado con sangre. El examen
microscópico de las heces en fresco demuestra abundantes
trofozoítos y escasos leucocitos12
.
2.- Amebiasis intestinal aguda
Denominada también forma fulminante, es poco frecuente y
se caracteriza por un comienzo brusco, con fiebre, cólico,
diarrea líquida profusa hemática con tenesmo12
.
La presencia de lesiones ulceronecróticas en este segmento
colónico se manifiesta por un cuadro de comienzo agudo con
diarrea disentérica, deposiciones sanguinolentas y con
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25 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
mucosidades, de alta frecuencia, alrededor de 7 a 10
evacuaciones al día, acompañada de dolor en hemiabdomen
inferior o en la fosa iliaca izquierda1.
A diferencia de la forma crónica, las pérdidas
hidroelectrolíticas son muy importantes y el paciente puede
deshidratarse. El abdomen resulta tan doloroso a la palpación
que sugiere una peritonitis. La hepatomegalia sensible es
muy frecuente, puede haber además náuseas, vómitos y
distención abdominal progresiva capaz de evolucionar hacia
megacolon tóxico12
.
1.1.1.4.7 Diagnóstico
Se basa en la observación del trofozoíto o de los quistes en
las heces. En heces íntegras, se suelen encontrar
únicamente quistes, pero en las heces diarreicas también se
pueden ver trofozoítos. Se aprecian organismos muy móviles
en heces en muestras diarreicas, recientes y mantenidas en
condiciones templadas; pero, en otras ocasiones, los quistes
se observan más fácilmente si se añade una gota de solución
de yodo (solución saturada de yodo en yoduro potásico 1%).
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26 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
Se pueden concentrar los quistes mediante flotación en
solución de sulfato de zinc25
.
El examen directo es necesario para la detección
de trofozoítos en la fase de diarrea. La inspección debe
hacerse de zonas de la muestra con moco y/o sangre. Se
puede utilizar sonda rectal para obtención de muestras. Las
pruebas inmunológicas (ELISA, inmunofluorescencia
indirecta) se emplean en la enfermedad intestinal invasiva,
extraintestinal y en estudios epidemiológicos. Las técnicas
imagenológicas (rayos X, ultrasonido, tomografía
computarizada, proctoscopía) permiten evaluar las
dimensiones de los abscesos y su evolución3.
En los animales con afección clínica, un método más
confiable para la detección de trofozoítos es el examen
microscópico de una parte de mucosa colónica para biopsia7.
1.1.1.4.8 Diagnóstico Diferencial
La amebiasis intestinal crónica leve, con sus alteraciones de
diarrea y estreñimiento en ocasiones, presencia de moco; se
presenta al diagnóstico diferencial con el colon irritable. La
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forma crónica más grave debe diferenciarse de la colitis
ulcerosa. La colitis amebiana aguda debe diferenciarse de la
shigellosis y de la salmonelosis, en las cuales las heces
contienen abundantes leucocitos y la mucosa entre las
úlceras está más afectada. La balantidiasis (Balantidium coli)
produce un cuadro agudo muy similar con formación de
microabscesos en las zonas ulceradas. El ameboma puede
confundirse con un adenocarcinoma cecal o con procesos
granulomatosos infecciosos de la misma localización12
.
1.1.1.4.9 Pronóstico
El pronóstico de la forma intestinal crónica es benigno
excepto que surjan complicaciones, la mortalidad es baja. La
forma aguda es mucho más grave por la posibilidad de
perforación colónica o de hemorragia masiva12
.
1.1.1.4.10 Tratamiento
El objetivo de la terapia antiamibiana es erradicar los
parásitos en su localización intestinal y extraintestinal. Los
fármacos disponibles pueden actuar en diferentes sitios, en el
lumen, en la pared intestinal o en forma sistémica. El
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28 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
metronidazol es considerado por muchos como la droga de
elección, tanto para la amibiasis invasora o como para la
amibiasis luminal, sin embargo, es menos efectiva contra los
parásitos del lumen intestinal1.
La dosis de metronidazol: 10mg/kg (TID) PO por 5 días.
Existen otros fármacos de elección como: clortetraciclina,
oxitetraciclina y tetraciclina, en dosis de 20 – 22 mg/kg (TID)
PO. Por 5 días26
.
La cirugía debe reservarse para casos de ruptura intestinal o
hepática, siempre asociada con terapia antiamibiana1.
1.1.1.4.11 Prevención
El control de la parasitosis transmitidas directamente por vía
fecal-oral es el saneamiento y la higiene. Sin embargo, los
hábitos normales de los perros tienden a eludir todos los
esfuerzos realizados en esta dirección y de hecho es una
suerte que la amebiasis canina sea una enfermedad muy
poco frecuente14
.
1.1.2 CLASE FLAGELADA: GIARDIA
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1.1.2.1 Historia
La Giardia lamblia fue nombrado en honor a Vilem Lambl
(1824 – 1895), quien descubrió el organismo con más detalle
después de que fue visto por primera vez por Leeuwenhoek
en 1681. Sin embargo, la Giardia intestinalis es considerado
por muchos como el nombre correcto de este protozoo. Las
diferentes especies de Giardia son estructuralmente muy
similares, por ejemplo, Giardia bovis, Giardia canis, Giardia
cati. Por otro lado, Erlandsen (1990) ha sugerido una
clasificación basada en criterios morfológicos de las
estructuras microtubulares presentes en los cuerpos medios
de los trofozoítos se incluye tres grupos de especies:
Giardia agilis que se encuentra en anfibios
Giardia muris en roedores
Giardia duodenalis en humanos y muchos mamíferos24
.
1.1.2.2 Taxonomía
Phylum: Sarcomastigophora
Subphylum: Mastigophora
Clase: Flagelada
Familia: Hexamitidae
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Género: Giardia
Especies: agilis
muris
Intestinalis (duodenalis, canis, cati,
lamblia)8.
1.1.2.3 Morfología
La Giardia es un protozoo flagelado de aspecto piriforme, con
dos núcleos, ocho flagelos y un disco suctor en la parte
ventral. Por medio de esta formación se adhieren a las
microvellosidades del intestino delgado, así como del
intestino grueso9.
La forma móvil que se aloja en la luz intestinal es el trofozoíto,
tiene alrededor de 15um de largo y 8um de ancho. Esta forma
se identifica con facilidad al microscopio óptico debido a su
apariencia de “cara sonriente”, formada por los dos núcleos
en el tercio anterior (los ojos), los axonemas que pasan en
forma longitudinal por entre los núcleos (la nariz) y los
cuerpos medios (la boca) ubicados en forma transversal al
tercio posterior, cuatro pares de flagelos completan la
apariencia un tanto cómica de esta forma7.
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FIGURA No 3. Trofozoíto y quiste de Giardia canis
10.
El segundo estadio es el quiste, responsable de la
transmisión y de la supervivencia ambiental; tiene 12um de
largo y 7um de ancho, dado que el quiste contiene dos
trofozoítos formados pero con separación incompleta, se
pueden observar dentro de éste los axonemas, fragmentos de
discos ventrales y hasta cuatro núcleos7.
1.1.2.4 GIARDIASIS
1.1.2.4.1 Definición
Es un proceso parasitario causado por Giardia spp., que
afecta principalmente a los animales jóvenes en el duodeno,
yeyuno y ocasionalmente intestino grueso; caracterizado por
un síndrome de malabsorción y diarrea. También se puede
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considerar un síndrome gastrointestinal producido por un
protozoo parásito que infecta a muchos vertebrados, incluidos
gatos, perros y seres humanos9.
1.1.2.4.2 Etiología
El género Giardia contiene múltiples especies de protozoos
flagelados morfológicamente distinguibles22
.
Hay dos formas: trofozoítos móviles y quistes infectantes no
móviles. Tienen distribución mundial, con prevalencia de por
lo menos 5 % en la mayoría de las poblaciones. La tasa de
ocurrencia es alta en animales jóvenes y en los que están
confinados en grupos4.
El agente causal de la Giardiasis en perros es un protozoario
del intestino delgado de los mamíferos, llamado Giardia canis.
La Giardiasis es una enfermedad de los mamíferos, afecta a
perros, gatos, animales silvestres y al hombre. Por lo tanto es
una enfermedad zoonósica. (Transmitida de los animales al
hombre)2.
1.1.2.4.3 Ciclo parasitario
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Son parásitos de ciclo directo. La forma parásita, el trofozoíto,
de 12-15 x 7-10 μm, se encuentra adherido a la mucosa
intestinal, donde se divide por fisión binaria. A medida que se
desprende y es arrastrado a lugares más distales del tubo
digestivo, se va formando el quiste, de forma ovalada de 9-13
x 7-9 μm, con cuatro núcleos en su interior9.
FIGURA No 4. Ciclo parasitario de Giardia canis
13.
Expulsado al medio externo con las materias fecales, es la
forma de resistencia, diseminación y transmisión. Al ser
ingerido por un nuevo hospedador, en el estómago se inicia la
enquistación, que se completa en el intestino por la acción de
los componentes biliares, el ácido carbónico y las proteasas
pancreáticas. De esta forma son liberados los trofozoítos,
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fijándose a la mucosa y comenzando de nuevo su replicación.
El ciclo completo dura de 4 – 5 días9.
1.1.2.4.4 Epidemiología
La Giardia parasita el intestino delgado de los mamíferos,
como trofozoítos móviles residentes en el lumen, no requieren
intermediarios para completar su ciclo vital. La principal
fuente de transmisión es la oro-fecal, por contacto directo
con materia fecal que contenga quistes, así como también por
agua y comidas contaminadas con estos. Se adhiere al borde
velloso de la mucosa intestinal mediante un disco adhesivo
ventral. En perros, se cree que la transformación en una
forma quística resistente ocurre sobre todo en el ciego6.
La fase quística o de resistencia sobrevive durante meses en
el medio ambiente en condiciones de humedad y bajas
temperaturas. El trofozoíto es incapaz de sobrevivir en
condiciones medioambientales16
.
Al excretar los quistes elipsoides, de inmediato son
infectantes para otros huéspedes. Después que los quistes
ingeridos se exponen a los líquidos gástricos y duodenales,
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35 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
los trofozoítos emergen y colonizan la mucosa del intestino
delgado. El período asintomático de las infecciones por
Giardia varía de 5 a 12 días, en el perro la media es de 8
días. Cuando se inicia la enfermedad puede precederse de
eliminación de quistes uno a dos días6.
La prevalencia de Giardia es de alrededor del 10% en los
perros con buena asistencia, del 36 – 50% en los cachorros y
de hasta el 100% en los criaderos7.
1.1.2.4.5 Patogenia
Las diferencias apreciables en cuanto a virulencia de las
cepas de Giardia, así como su estado inmune y genético del
huésped determinan el resultado de la infección6.
Tras la ingesta oral de quistes, las secreciones gástrica y
duodenal inducen la liberación de trofozoítos22
.
Formas de patogenicidad:
Por un mecanismo traumático-irritativo, sobre las
células intestinales, esta ocasiona un acortamiento de
las microvellosidades intestinales y destrucción del
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36 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
borde en cepillo de las células. Como consecuencia hay
alteraciones en la digestión y un cuadro general de
malabsorción.
Acción Expoliadora.- Sobre los principales elementos
nutricionales, tomando para su propio metabolismo
proteínas, hidratos de carbono, grasas del hospedador e
interfiriendo en el metabolismo de éste.
Acción Vectorial.- Ya que son capaces de transportar
en su interior otros agentes patógenos (virus, bacterias,
micoplasmas, hongos)9.
Las diferencias de virulencia entre las cepas de Giardia
pueden determinar el desarrollo de la signología clínica, que
puede ser potenciada por las respuestas inmunológicas frente
al microorganismo. El estado de inmunidad del huésped
puede condicionar el desarrollo o no de la signología clínica.
Los animales que viven en grupo presentan un mayor riesgo
de infección por Giardia22
.
1.1.2.4.6 Cuadro Clínico
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La Giardia puede presentarse de dos formas:
Asintomáticamente.- No se observan signos clínicos y
los animales afectados actúan como reservorios.
De curso Agudo o Crónico.- Caracterizándose por
diarrea mucosa con abundante grasa que aparece al 4to
- 5to día post-infección, heces mal olientes, se alterna
con periodos de estreñimiento o heces normales.
Hay fiebre alcanzando hasta los 40 ˚C, anorexia, pérdida del
apetito, distensión y dolor abdominal, pelo sin brillo e hirsuto,
ojos hundidos, deshidratación en grado diverso, fatiga y
ocasionalmente muertes en los animales afectados9.
En general el cuadro se caracteriza por un proceso de
malabsorción con un importante retraso en el crecimiento. Es
frecuente la concomitancia con otros procesos de origen
bacteriano, viral o parasitario que enmascaran y agravan el
proceso. En el intestino se observa un fuerte proceso
inflamatorio de tipo mucoide, con acortamiento y destrucción
de las microvellosidades, infiltración con linfocitos,
macrófagos y eosinófilos. En la sangre se aprecian
hemoconcentración, linfocitosis y una ligera eosinofilia9.
1.1.2.4.7 Diagnóstico
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Los síntomas clínicos no son patognomónicos por lo que hay
que recurrir al análisis coprológico16
.
Los trofozoítos de Giardia se observan en heces recién
recolectadas de perros y gatos o en moco duodenal obtenido
por endoscopia en perros. Para obtenerlos vivos, una
pequeña cantidad de muestra se mezcla con solución
isotónica y se revisa bajo amplificación mínima de 200 X, con
luz reducida6.
Para detectar quistes de Giardia por flotación fecal, se
prefiere el método de centrifugación con sulfato de zinc. La
solución acuosa de sulfato de zinc se prepara con gravedad
específica de 1.18 a 1.20 6.
La técnica de elección es la flotación en sulfato de zinc ya
que es la solución menos hipertónica y, por lo tanto, la que
menos distorsiona los frágiles quistes16
.
La mayoría de los animales que eliminan quistes en sus
deposiciones son asintomáticos, mientras que en las heces
de aquellos con diarrea suelen hallarse trofozoítos. Un frotis
fecal, en especial en pacientes sintomáticos, pueden revelar
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trofozoítos, fácilmente identificables por su motilidad de
rotación errática y por su disco ventral cóncavo7.
Diversas pruebas basadas en la reacción antígeno-anticuerpo
han sido desarrolladas, la inmunoflorescencia indirecta (IFI),
las técnicas de ELISA aunque con estas los resultados son
muy dispares y puede existir reacción cruzada con otros
parásitos que asientan en el intestino9.
1.1.2.4.8 Diagnóstico Diferencial
Otras causas de diarrea de intestino delgado aguda, diarreas
del intestino delgado crónicas, esteatorrea, enteropatías
perdedoras de proteínas, pérdida de peso y falta de
desarrollo, entre ellas la insuficiencia pancreática exocrina,
las infecciones gastrointestinales por helmintos y las
enfermedades intestinales inflamatorias22
.
1.1.2.4.9 Tratamiento
Se debe tratar todos los animales en los que el análisis
coprológico sea positivo, independientemente presenten
síntomas o no16
.
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Las opciones terapéuticas en perros comprenden:
Metronidazol, 15 – 25mg/kg VO (BID) durante 8 días.
Febendazol, 50mg/kg VO (SID) durante 3 -7 días.
Albendazol, 25mg/kg VO (BID) durante 2- 7 días.
Quinacrina, 9mg/kg VO (SID) durante 6 días; es
frecuente la irritación gastrointestinal.
Tinidazol, 44mg/kg VO (SID) durante 3 días.
Ipronidazol.- 126mg / l de agua VO ad libitum durante 7
días.
El tratamiento combinado con metronidazol y quinacrina
podría solucionar algunas infecciones resistentes. Dado que
la signología clínica de la Giardia puede ser intermitente y se
trata de una zoonosis, deben tratarse los animales con
infección subclínica22
.
1.1.2.4.10 Prevención
El control de la giardiasis canina en perreras generalmente se
realiza eficazmente muestreando rutinariamente las heces y
tratando a los individuos que eliminan quistes. Cuando es
factible, el aislamiento y una rigurosa desinfección son una
buena alternativa. Los desinfectantes eficaces son el Lisol (2
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– 5%), el Sterinol (1%) o el Hipoclorito sódico (1%) y los
compuestos de Amonio Cuaternario14
.
1.1.3 CLASE ESPOROZOARIA: ISOSPORA
1.1.3.1 Taxonomía
Phylum: Apicomplexa
Clase: Esporozoaria
Subclase: Coccidiasina
Orden: Eucoccidida
Suborden: Eimeriorina
Familia: Eimeriidae
Género: Isospora
Especies: canis
belli
felis
suis28
.
1.1.3.2 Morfología
Sus ooquistes son elipsoidales anchos y ligeramente ovoides,
de 32- 42 por 27 – 33um, sin micrópilo, gránulo polar ni
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residuo, pero con una diminuta burbuja adherida al interior del
ooquiste en el extremo ensanchado. Sus esporoquistes
miden de 18 – 24 por 15 – 18 um18
.
FIGURA No 5. Ooquistes sin esporular y ooquiste
esporulado de Isospora spp.13
.
1.1.3.3 COCCIDIOSIS
1.1.3.3.1 Definición
Es la infección producida por un coccidio, Isospora spp. que
invade el aparato digestivo, especialmente las células del
epitelio de la mucosa del intestino delgado de todo vertebrado
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y que desencadena un síndrome febril, diarrea aguda,
deshidratación. Es un parásito de distribución cosmopolita. La
infección se produce por fecalismo, es decir el hospedero
susceptible contrae la infección por la ingestión de ooquistes
eliminados al medio ambiente a través de las heces27
.
Cuando invaden la mucosa intestinal Isospora canis al perro e
Isospora felis al gato, provocan ruptura de las células
parasitadas, irritación y lesiones erosivas, lo que origina
diarrea24
.
1.1.3.3.2 Etiología
Los miembros del género Isospora, los coccidios reconocidos
con más frecuencia como causantes de infecciones en perros
y gatos son especies específicas del huésped definitivo. Al
menos cuatro especies Isospora canis, Isospora oihensis,
Isospora burrowsi e Isospora neorivolta infectan a los perros y
dos Isospora felis e Isospora rivolta a los gatos7.
1.1.3.3.3 Ciclo Parasitario
Todos los coccidios tienen un ciclo asexual y uno sexual. En
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algunos géneros como en Isospora, se encuentran en el
mismo huésped. En todos los coccidios, el oocisto representa
el ciclo biológico la fase resistente al ambiente y se excreta
en las heces del huésped definitivo6.
Después de exponerse al aire, temperaturas cálidas (20 a 37º
C) y humedad los oocistos esporulan y forman dos
esporocistos. Dentro de cada uno hay 4 esporozoitos23
.
Después que los perros o gatos ingieren oocistos
esporulados los esporozoítos salen del quiste en el lumen
intestinal e inician la formación de esquizontes o merontes.
Durante la esquizogonia o merogonia, el núcleo del
esporozoíto se divide en dos, tres o más núcleos, según el
parásito y fase del ciclo. Después de la división, cada núcleo
se rodea de citoplasma para formar un merozoíto. Los
merozoítos se liberan del esquizonte cuando la célula
huésped se rompe. La primera generación de merozoítos
repite el ciclo asexual y forma una segunda generación de
esquizontes o se transforma en gamontes masculinos (micro)
y femeninos (macro). El microgamonte se divide en muchos
pequeños microgamentos. Uno de ellos fertiliza a un
macrogamonte y se forma una pared del oocisto alrededor del
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cigoto. El ciclo biológico se completa cuando los oocistos
esporulados se excretan en heces6.
FIGURA No 6. Ciclo parasitario de Isospora spp.
13.
1.1.3.3.4 Epidemiología
La edad es un factor importante en su presentación, que es
más grave y dura más tiempo en los cachorros. Están
asociadas a estrés, enfermedades concomitantes,
desnutrición16
.
El ciclo vital de la Isospora, que afecta a perros y gatos es
similar al ciclo intestinal coccidiano básico, excepto porque
también puede ocurrir un ciclo asexual en el huésped
definitivo o intermedio. En la ingestión por parte de los
huéspedes definitivos o paraténicos (intermedios) apropiados,
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los oocistos liberan los esporozoítos ante la presencia de
bilis, y los esporozoítos libres invaden el intestino. Algunos
esporozoítos penetran en la pared intestinal y entran en los
ganglios linfáticos mesentéricos u otros tejidos
extraintestinales, donde forman quistes unicelulares que
aumentan de tamaño. Si no hay replicación, el huésped se
denomina huésped paraténico en lugar de huésped
intermedio. Los quistes monozoicos de Isospora pueden
permanecer en los tejidos extraintestinales de los huéspedes
definitivos o paraténicos durante la vida de éste7.
En los perros y gatos, estos quistes pueden servir como focos
de reinfección intestinal y recidivas de coccidiosis entérica. La
ingestión de quistes monozoicos en los huéspedes
paraténicos produce infección en el huésped definitivo canino
o felino. El ciclo vital posterior a la infección de un huésped
paraténico es el mismo que el posterior a la ingestión de
oocistos esporulados en las heces7.
1.1.3.3.5 Patogenia
Cada esquizonte y cada gametocito destruyen su célula
hospedadora. La infección coccidiana asintomática pasa a
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manifestarse como enfermedad (coccidiosis) cuando el
número de células destruidas supera la capacidad del
hospedador para regenerarla. Dado que el número de células
destruidas es determinado por el número de células invadidas
por los esporozoítos, la gravedad de la infección depende de
la tasa de ingestión de ooquistes y del estado inmunitario del
hospedador. En un cachorro sano la ingestión continua de un
número reducido de ooquistes da lugar a una infección
moderada que permite la producción de nuevos ooquistes
para beneficio del parásito y el desarrollo de inmunidad frente
a la reinfección para beneficio del hospedador7.
Por el contrario, la ingestión de un número de ooquistes
elevado en un periodo de tiempo breve puede provocar una
enteritis grave especialmente en individuos malnutridos,
enfermos o muy estresados. La edad es un importante factor
determinante de la gravedad y duración de la infección14
.
1.1.3.3.6 Cuadro Clínico
La diarrea con coccidiosis en animales inmunocompetentes
puede representar infecciones incidentales o concurrentes
con coccidios y otros agentes infecciosos, ya que la infección
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coccidiana puede existir en ausencia de enfermedad clínica.
Las infecciones enzoóticas se encuentran con frecuencia en
guarderías felinas o perreras donde se reúnen animales. Los
signos clínicos son más evidentes en los neonatos7.
A nivel clínico, la diarrea grave se ha asociado con la
coccidiosis natural en perros y gatos inmunosuprimidos. El
principal signo atribuido a la coccidiosis en perros y gatos es
la diarrea con pérdida de peso y deshidratación y hemorragia
(aunque esta última es rara)7.
En los animales con afección grave se puede observar
anorexia, vómitos, depresión mental y por último la muerte.
Los perros y gatos muy inmunosuprimidos pueden presentar
etapas extraintestinales en los macrófagos de los ganglios
linfáticos con depleción linfocitaria o en otros tejidos no
intestinales. La coccidiosis intestinal puede manifestarse a
nivel clínico cuando los perros y gatos son transportados,
destetados o experimentan un cambio de dueño7.
1.1.3.3.7 Diagnóstico
La infección intestinal coccidiana en perros y gatos se
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diagnostica por medio de la identificación de los oocistos con
cualquiera de los métodos de flotación fecal usados con
frecuencia para diagnosticar infecciones parasíticas. En los
perros, sólo Isospora canis puede identificarse con seguridad
por medio del tamaño y forma del oocisto7.
Aunque los oocistos de Isospora canis pasan sin formar
esporas en las heces frescas, para el momento en que se
realiza el examen fecal han esporulado parcialmente, los
oocistos esporulados en forma parcial contienen dos
esporocistos sin esporozoítos. Las especies de Isospora
pueden esporular dentro de las 8 horas de la excreción, estas
formas son muy infecciosas7.
1.1.3.3.8 Diagnóstico Diferencial
Deben considerarse todas las causas de diarrea de intestino
delgado, grueso o mixta, entre ellas enfermedades
infecciosas por parvovirus o coronavirus, enfermedades
inflamatorias intestinales, enteropatías obstructivas y
helmintiasis digestivas22
.
1.1.3.3.9 Pronóstico
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Con frecuencia favorable de 8 a 10 días20
.
1.1.3.3.10 Tratamiento
Cuando las infecciones coccidianas persisten por periodos
extensos en animales mayores o cuando se asocian con
diarrea crónica, debe sospecharse una enfermedad
subyacente o inmunosupresión del huésped. El tratamiento
se indica a menudo en las perras y sus cachorros recién
nacidos debido a la gravedad de los signos clínicos a esta
edad7.
Opciones terapéuticas en perros:
Trimetoprim-sulfonamida, 15 mg/kg VO (BID-SID)
durante 5 días.
Sulfadimetoxina/ormetoprim (55mg/kg de
sulfadimetoxina y 11 mg/kg de ormetoprim) VO (SID)
durante 23 días.
Sulfadimetoxina, 50-60mg/kg VO en una dosis, luego
25 mg/kg VO (SID) durante 5-20 días.
Furazolidona, 4-10mg/kg VO (BID-SID) durante 5
días.
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Amprolium, 200mg de dosis total VO (SID) durante 5
días22
.
Si la diarrea o la deshidratación son graves, se debe
considerar la fluidoterapia parenteral como medida de apoyo.
Cuando la hemorragia intestinal resulta en anemia, se puede
necesitar transfusión sanguínea7.
1.1.3.3.11 Prevención
La coccidiosis tiende a ser un problema en los ambientes
antihigiénicos. La excreción fecal de grandes cantidades de
oocistos resistentes al ambiente hace más probable la
infección bajo estas condiciones. Los animales deben estar
alojados de manera que no permita la contaminación de los
recipientes de agua y comida por medio del suelo sembrado
de oocistos o de heces infectadas. Las heces deben ser
recogidas a diario e incineradas. Los oocistos sobreviven a
las temperaturas bajo cero. Los corrales, jaulas, utensilios de
comida y demás elementos deben desinfectarse por medio de
vapor o inmersión en agua hirviendo o con solución de
amonio al 10% 7.
1.2 METODO DE FLOTACION CON SULFATO DE ZINC
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La flotación con Sulfato de Zinc es una técnica útil, para
recuperar quistes y ooquistes de protozoos y huevos de
helmintos, con excepción de los operculados y los de alta
densidad como el Toxocara canis1.
Cuando el examen directo de heces resulta negativo, se
puede recurrir a métodos de concentración que aumentan
probabilidad de un diagnóstico positivo.
1.2.1 Concentración por Flotación
El principio de este método consiste en usar líquido de más
alta densidad que los elementos buscados. Los elementos
menos densos flotarán a la superficie.
1.2.2 Control de calidad del método
Al probar un nuevo método en el laboratorio, es siempre
recomendable comparar la muestra con una ya conocida.
Para ello tener a mano muestras de heces positivas por
huevos de nematodos y/o quistes de protozoos y ejecutar el
método con controles positivos y pacientes.
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1.2.3 Ventajas y Desventajas
La ventaja es que los elementos diagnósticos se recobran
libres de detritus, lo cual facilita y acelera el tiempo de
examinar la lámina.
Tiene la desventaja de que la densidad de la solución encoge
y deforma las larvas en poco tiempo.
1.2.4 Materiales para preparar la solución de Sulfato
de Zinc
Sulfato de zinc
(SO4Zn)
Agua Destilada
Papel filtro o gasas
Embudos
Guantes
Balanza
Vasos de precipitación
Varilla de vidrio
Soporte universal
Hidrómetro
Hornilla
Recipientes
Papel aluminio
Espátula
Probeta de 1,000 mL
capacidad
Erlen Meyer de
1,500mL capacidad
1.2.5 Preparación de la solución de Sulfato de zinc
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Pesar 330 gramos de SO4Zn.
Colocar en Erlen Meyer.
Medir 700 mL de agua destilada.
Verter y disolver SO4Zn.
Calentar para facilitar la disolución del SO4Zn.
Cuando la sal de sulfato se ha diluido completamente,
adicionar 250-300mL de agua destilada y mezclar muy
bien.
El volumen total será de acuerdo a la densidad 1.180.
Verter solución de SO4Zn en un cilindro de 1,500mL.
Medir la densidad de la solución de SO4Zn.
El hidrómetro debe flotar libre, sin tocar las paredes del
cilindro.
La densidad debe leer 1.180.
1.2.5.1 Ajuste de densidad
Si la densidad es inferior a 1.180, agregar un poco más de
sulfato de zinc. Si la densidad resultó mayor a 1.180, agregar
un poco más de agua destilada, agregar más SO4Zn o más
agua según lectura. Medir de nuevo a la densidad deseada,
guardar en un frasco rotulado para evitar confusiones5.
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1.2.6 Ejecución del método
Rotular vasos y tubos de ensayo con muestras.
1.2.6.1 Pasos del método
1. Filtrado y lavado de heces.
2. Flotación en sulfato de zinc.
3. Recuperación del flotante.
4. Observación al microscopio.
1.2.6.1.1 Filtrado y lavado de heces
Mezclar 2 g de heces aproximadamente, en un vaso de
plástico con 5 ml de agua destilada para el primer
lavado, esto se puede lograr mezclando en forma
manual con dos aplicadores.
Filtrar la suspensión de materia fecal a través de dos
capas de gasa y pasarla a un segundo vaso de plástico,
lavando con un pequeño volumen de agua.
Verter el filtrado en el tubo de ensayo.
Centrifugar a 2 500 rpm X 1 min.
Decantar el sobrenadante.
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1.2.6.1.2 Flotación en sulfato de zinc
Agregar aproximadamente 3 ml de solución de sulfato de
zinc y volver a suspender con los aplicadores.
Llenar el tubo hasta 1 cm del borde.
volver a centrifugar a 2 500 rpm X 1 min.
Mientras centrifuga rotular porta-objetos.
1.2.6.1.3 Recuperación del flotante
Al completar el centrifugado abra la tapa de la centrífuga
con cuidado y sin tocar ni agitar los tubos.
Pipetear para recoger sobrenadante.
Colocar la muestra sobre los porta- objetos rotulado.
Agregar una gota de solución de Lugol para colorear
quistes de protozoos.
Cubrir con cubreobjetos.
1.2.6.1.4 Observación al microscopio
Se observan quistes y ooquistes de protozoos de
diferente tamaño.
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Identificar bien su morfología, ya que con este método
se puede visualizar huevos de otros parásitos que
pueden ser objeto de confusión.
1.2.7 Desinfección
Descartar materiales utilizados en solución
desinfectante.
Lavado de manos cuantas veces sea necesario.
Descartar muestras de heces.
Desinfectar mesa de trabajo.
1.2.8 Puntos importantes
Realizar informe de resultados en el formulario de
laboratorio.
Asegurar densidad de solución de SO4Zn: 1.180 o 1.200.
Mezclar bien el sedimento con solución de SO4Zn.
No tocar tubos hasta terminar operación5.
1.2.9 Interpretación
Una vez observada la muestra al microscopio en la cual
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identificaremos quistes y ooquistes por campo de los
protozoos en estudio, seguiremos el siguiente esquema para
determinar el grado de infestación parasitaria:
Una cruz (+) si el campo presenta de 1 a 2.
Dos cruces (++) si el campo presenta de 3 a 4.
Tres cruces (+++) cuando en campo presenta más de
5.
II MATERIALES Y METODOS
2.1 MATERIALES
2.1.1 Materiales de campo
Biológicos:
Caninos
Físicos
Mandil
Sonda rectal para
heces
Cajas de recolección
de heces
Guantes de examinación
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Termo con material refrigerante
2.1.2 Materiales de laboratorio:
Biológicos:
Heces de caninos
Químicos:
Sulfato de zinc
Agua destilada
Lugol al 5%
Físicos:
Para la solución:
Balanza
Embudos
Espátula
Varilla de vidrio
Hornilla
Vasos de
precipitación
Probeta de 1,000
mL
Papel filtro
Soporte universal
Papel Aluminio
Hidrómetro
Recipientes
Matraz Erlen Meyer de
1,500mL
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Para la técnica:
Sulfato de zinc
(SO4Zn) de
densidad 1.800
Agua destilada
Solución de Lugol al
5%
Microscopio
Mandil
Hojas de campo
Hojas de laboratorio
Guantes de
examinación
Vasos de plástico
Aplicadores
Coladores
Tubos de ensayo
Gradillas
Centrífuga
Pipeta
Portaobjetos
Cubreobjetos
Cinta masking
2.1.3 Materiales de Escritorio
Computadora
Impresora
Scanner
CDs
Cámara de fotos
Memory flash
Esferográficos
Hojas de papel bond
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2.2 METODOS:
2.2.1 Manejo del experimento
2.2.1.1 Métodos de campo
a) Recolección de muestras:
Para la recolección de muestras se recomienda seguir el
siguiente protocolo:
Preparar los materiales que se van a utilizar.
Toma de datos en la hoja de campo.
Recolección de heces recién evacuadas.
En caso de que no presente la defecación, sujetar
al animal y tomar la muestra del recto.
b) Identificación de la muestra
La caja que va a contener la muestra debe tener una
etiqueta numerada para su fácil identificación, y a la vez
que concuerde con su respectiva hoja de campo, la misma
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que poseerá los datos ampliados de las características
individuales de cada animal.
c) Envío de la muestra
Se la debe enviar lo más pronto posible al laboratorio en
termos con material refrigerante, para que llegue en
buenas condiciones, de no ser así se obtendrá resultados
falsos.
2.2.2 Area de estudio
a) Lugar
Esta investigación se realizará en las parroquias urbanas
pertenecientes al Cantón Cuenca, provincia del Azuay, de la
República del Ecuador.
b) Condiciones Topográficas
El cantón Cuenca ubicado al sur de Ecuador es uno de los 15
cantones que conforman la provincia del Azuay de la cual
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Cuenca es su capital.
Latitud sur 2°52’ – 2°54’
Longitud oeste 78°59’ – 79°01’
Altitud 2.550 msnm
Temperatura
promedio 15°C
Pluviosidad
anual 700 a 1100 mm
Humedad
relativa 75%
Época
lluviosa(meses)
Febrero a mayo y de octubre a
noviembre
Época
seca(meses)
Junio a septiembre y con menor intensidad de diciembre a enero
Velocidad
media del
viento
4m/s entre abril y mayo y 5,5m/s en dos periodos: diciembre-enero
y julio-agosto
FUENTE: INAMHI (Instituto Nacional de Meteorología e
Hidrología). 2010
III RESULTADOS Y DISCUSION
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3.1. Análisis Estadístico
En este capítulo se registraron los datos de la investigación,
del número de casos positivos y negativos en caninos
machos y hembras de diferente raza registrados con 3 rangos
de edad, con respecto al grado de infestación parasitaria:
baja, media y alta causada por Giardia canis. Ameba spp. y
Coccidia spp.
3.2. Métodos de evaluación y datos a tomarse
Las muestras de heces se tomaron de caninos de la Ciudad
de Cuenca, de ambos sexos, diferente raza y con 3 rangos de
edad, de una población de la ciudad de Cuenca de las
parroquias urbanas según el Censo Canino del 2008, emitido
por el Ministerio de Salud Pública. (Anexo 4)
3.3. Análisis de las muestras:
Las muestras recolectadas fueron analizadas en los
siguientes laboratorios:
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Laboratorio de Parasitología de la Facultad de Ciencias
Agropecuarias de la Universidad de Cuenca.
Laboratorio de la Clínica Veterinaria CLINICAN.
3.4. Factores a estudiar
La prevalencia de protozoos (Giardia canis, Ameba spp. y
Coccidia spp.) en caninos de la ciudad de Cuenca mediante
centrifugación con la técnica de sulfato de zinc.
Determinar que protozoo entre (Giardia canis, Ameba spp. y
Coccidia spp.) es más común en caninos de la ciudad de
Cuenca, de acuerdo a edad, raza y sexo.
3.5. Procedimientos estadísticos
a) Población Universo: De acuerdo al plano del Ministerio
de Salud Pública se registra la división en 4 áreas de
salud de la ciudad de Cuenca, dentro de los cuales se
incluyen 14 parroquias urbanas, la población se estimó
en 111900 caninos.(Anexo 4)
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b) Muestra: Se realizó un muestreo a la población del 1%
en lo que se obtuvo una muestra de 1120 caninos, que
fueron seleccionados al azar en un número de 80
muestras por cada una de las parroquias de las 4 áreas
del cantón Cuenca.
c) Muestreo: En esta investigación se aplicó el Muestreo
Aleatorio al Azar.
d) Análisis estadístico: Se realizó los siguientes análisis y
pruebas:
Medida de tendencia central y dispersión de datos.
Cuadros de frecuencias relativas (%).
Intervalo de confianza al 95%.
Prueba de X2 (Chi Cuadrado).
Prueba de Z.
Gráficos y figuras.
e) Simbología utilizada en el análisis estadístico:
R = Rango
S2 = Varianza
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S = Desviación típica
IC = Intervalo de Confianza
= Media
∑ = Sumatoria
3.6 CUADROS Y GRÁFICOS ESTADÍSTICOS
Giardia canis
CUADRO N° 1. Promedio del grado de prevalencia de
Giardiasis en hembras, en las 4 áreas urbanas del cantón
Cuenca.
Giardia
N° Area + ++ +++ Negativo
Area 1 7 2 1 230
Area 2 2 1 0 157
Area 3 6 1 1 72
Area 4 2 1 0 77 ∑Xi 17 5 2 536
i 4,25 1,25 0,5 134
R 5,00 1,00 1,0 158
S2 6,92 0,25 0,3 5612,67
S 2,63 0,50 0,6 74,92
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El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de
infestación de Giardiasis en hembras para las 4 áreas
investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los
niveles de infestación: Baja (+) de 2,28 µ 6,22 con un =
4,25 con un 0,38% de casos con respecto a la muestra.
Media (++) de 0,71 µ 1,79 con una = 1,25 con 0,11% de
casos con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,18 µ 0,82
con una = 0,5 con un 0,04% de casos con respecto a la
muestra y Negativos de 72,94 µ 195,06 con una = 134
con un 11,96% de casos con respecto a la muestra.
IC al 95%
2,28 µ 6,22
0,71 µ 1,79
0,18 µ 0,82
72,94 µ 195,06
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CUADRO N° 2. Promedio del grado de prevalencia de
Giardiasis en machos en las 4 áreas urbanas del cantón
Cuenca.
Giardia
N° Area + ++ +++ Negativo
Area 1 7 3 0 230
Area 2 5 2 1 152
Area 3 6 0 1 73
Area 4 2 0 0 78
∑Xi 20 5 2 533
i 5 1,25 0,5 133,25
R 5 3 1 157 S
2 4,67 2,25 0,33 5464,92
S 2,16 1,5 0,58 73,93
IC al 95% 2,84 µ 7,16
0,49 µ 2,01
0,02 µ 0,98
72,63 µ 193,87
El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de
infestación de Giardiasis en machos para las 4 áreas
investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los
niveles de infestación: Baja (+) de 2,84 µ 7,16 con una =
5 con un 0,45% de casos con respecto a la muestra. Media
(++) de 0,49 µ 2,01 con una = 1,25 con 0,11% de casos
con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,02 µ 0,98 con una
. = 0,5 con un 0,04% de casos con respecto a la muestra y
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Negativos de 72,63 µ 193,87 con una = 133,25 con un
11,90% de casos con respecto a la muestra.
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CUADRO N° 3. Prueba de Chi Cuadrado de los casos
positivos de niveles (+), (++), (+++) y negativos de Giardia
canis en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.
Grado de infestación
Machos Hembras Total
oi ei oi ei
Positivos 27 25,5 24 25,5 51
Negativos 533 534,5 536 534,5 1069
Total 560 560 560 560 1120
El análisis de Chi Cuadrado de casos positivos y negativos de
Giardia canis en caninos machos y hembras en las 4 áreas
del cantón Cuenca se obtiene un valor de 0,21 que
comparado con los valores tabulares al 5 y 1% de
significación, resulta ser No significativo (NS) es decir que los
casos positivos y negativos se presentan por igual en machos
y hembras en los 3 niveles de prevalencia por lo que se debe
implementar medidas sanitarias por igual.
X² Cal. X² Tabular
0,21NS 0,05 0,01
3,84 6,63
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CUADRO N° 4. Prueba de Chi Cuadrado del total de los
casos positivos y negativos de Giardia canis registrados en 3
rangos de edad en caninos machos y hembras de la ciudad
de Cuenca.
Grado de infestacion
Giardia
Total Edad en años
< 2 2 a 4 > 4
oi ei oi ei oi ei
Positivos 32 17,3 12 20,26 7 13,43 51
Negativos 348 362,7 433 424,74 288 281,57 1069 Total 380 380 445 445 295 295 1120
X² Cal. X² Tabular
19,84 **
0,05 0,01
5,99 9,21
El análisis de Chi Cuadrado para determinar la prevalencia de
Giardia canis en las edades investigadas en las 4 áreas de la
ciudad de Cuenca se obtiene un valor calculado de 19,84 que
comparado con los valores tabulares al 5% y al 1% de
significación, resulta ser altamente significativo (**), por lo que
rechazamos la Ho y aceptamos la Ha de que los casos
positivos y negativos de Giardia canis se presentan de
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diferente manera en los 3 rangos de edad en el cantón
Cuenca.
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GRAFICO N° 3. Porcentajes totales de la muestra estudiada
en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
Giardia canis y prevalencia (+) en las 4 áreas urbanas del
cantón Cuenca.
GRAFICO N° 4. Porcentajes totales de la muestra estudiada
en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
1,25
0,63
1,07
0,36
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
0,45
0,27
0,09 0,09
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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Giardia canis y prevalencia (++) en las 4 áreas urbanas del
cantón Cuenca.
GRAFICO N° 5. Porcentajes totales de la muestra estudiada
en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
Giardia canis y prevalencia (+++) en las 4 áreas urbanas del
cantón Cuenca.
0,09
0,09
0,18
0
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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GRAFICO N° 6. Porcentajes totales de la muestra estudiada
en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
Giardia canis de los casos negativos en las 4 áreas urbanas
del cantón Cuenca.
CUADRO N° 6. Prueba de Z de los casos positivos y
negativos de Giardia canis, en 3 rangos de edad en caninos
machos y hembras de las 4 áreas del cantón Cuenca.
41,07
27,59
12,95
13,84
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
N° Area
Giardia
+ ++ +++ Negativo
xi xi xi xi
Area 1 14 5 1 460
Area 2 7 3 1 309
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Fórmula de la Prueba de Z
Positivo (+)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad, que estén con Giardia
canis y con una incidencia (+) mayor a 4.
Area 3 12 1 2 145
Area 4 4 1 0 155
Total 37 10 4 1069
9,25 2,50 1,0 267
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81 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 7. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia
canis en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
grado de infestación bajo.
El 84,38 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 4 o sea
8 casos que representa el 0,71 casos que no llega a 1.
Positivo (++)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad, que estén con Giardia
canis y con una incidencia (++) mayor a 1.
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82 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 8. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia
canis, en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras
con grado de infestación medio.
El 82,64 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (++) mayor a 1 o
sea 3 casos que representa el 0,27 casos que no llega a 1.
Positivo (+++)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad, que estén con Giardia
canis y con una incidencia (+++) mayor a 1.
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83 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 9. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia
canis, en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras
con grado de infestación alto.
El 50 % de los casos de los caninos de la ciudad de Cuenca
esta con una curva de incidencia (+++) mayor a 1 o sea cero
casos.
Ameba spp.
CUADRO N° 7. Promedio del grado de prevalencia de
Amebiasis en hembras en las 4 áreas urbanas del cantón
Cuenca.
Amebas
N° Area + ++ +++ Negativo
Area 1 23 4 0 213
Area 2 16 4 1 139
Area 3 10 4 3 62
Area 4 9 1 0 70 ∑Xi 58 13 4 484
i 14,5 3,25 1 121
R 14 3 3 151
S2 41,7 2,25 2 4956,67
S 6,45 1,50 1,41 70,40
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84 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de
infestación de Amebiasis en hembras para las 4 áreas
investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los
niveles de infestación: Baja (+) de 8,20 µ 20,80 con una =
14,5 con un 1,29% de casos con respecto a la muestra.
Media (++) de 0,82 µ 4,68 con una = 3,25 con 0,29% de
casos con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,30 µ 1,70
con una = 1 con un 0,09 % de casos con respecto a la
muestra y Negativos de -55,40 µ 296,40 con una
. = 121 con un 10,80 % de casos con respecto a la muestra.
IC al 95%
8,20 µ 20,80
0,82 µ 4,68
0,30 µ 1,70
-55,40 µ 296,40
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85 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
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86 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
CUADRO N° 8. Promedio del grado de prevalencia de
Amebiasis en machos en las 4 áreas urbanas del cantón
Cuenca.
El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de
infestación de Amebiasis en machos para las 4 áreas
investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los
niveles de infestación: Baja (+) de 0,47 µ 27,5 con una =
13,5 con un 1,21 % de casos con respecto a la muestra.
Media (++) de 0,11 µ 8,39 con una = 4,25 con 0,42 % de
casos con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,07 µ 2,93
con una = 1,50 con un 0,13 % de casos con respecto a la
Amebas
N° Area + ++ +++ Negativo
Area 1 30 8 1 201
Area 2 10 3 1 146
Area 3 9 5 3 64
Area 4 5 1 1 73 ∑Xi 54 17 6 484
i 13,5 4,25 1,50 121
R 25 7,00 2,00 137
S2 125,67 8,92 1 4192,67
S 11,21 2,99 1 64,75
IC al 95% 0,47 µ 27,5
0,11 µ 8,39
0,07 µ 2,93
12,81 µ 229,19
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muestra y Negativos de 12,81 µ 229,19 con una = 121
con un 10,80 % de casos con respecto a la muestra.
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89 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
CUADRO N° 9. Prueba de Chi Cuadrado de los casos
positivos de niveles (+), (++), (+++) y negativos de Ameba
spp. en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.
Grado de infestación
Machos Hembras Total
oi ei oi ei
Positivos 77 76,14 75 75,86 152
Negativos 484 484,86 484 483,14 968
Total 561 561 559 559 1120
X² Cal. X² Tabular
0,03NS 0,05 0,01
3,84 6,63
El análisis de Chi Cuadrado de casos positivos y negativos de
Ameba spp. en caninos machos y hembras en las 4 áreas del
cantón Cuenca se obtiene un valor de 0,03 que comparado
con los valores tabulares al 5 y 1% de significación, resulta
ser No significativo (NS) es decir que los casos positivos y
negativos se presentan por igual en machos y hembras en los
3 niveles de prevalencia por lo que se debe implementar
medidas sanitarias por igual.
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CUADRO N° 10. Prueba de Chi Cuadrado del total de los
casos positivos y negativos de Ameba spp. registrados en 3
rangos de edad en caninos machos y hembras de la ciudad
de Cuenca.
Grado de infestacion
Amebas
Total Edad en años
< 2 2 a 4 > 4
oi ei oi ei oi ei
Positivos 66 51,57 63 60,39 23 40,04 152
Negativos 314 328,43 382 384,61 272 254,96 968
Total 380 380 445 445 295 295 1120
X² Cal. X² Tabular
13,19** 0,05 0,01
5,99 9,21
El análisis de Chi Cuadrado para determinar la prevalencia de
Ameba spp. en las edades investigadas en las 4 áreas de la
ciudad de Cuenca se obtiene un valor calculado de 13,19 que
comparado con los valores tabulares al 5% y al 1% de
significación, resulta ser altamente significativo (**), por lo que
rechazamos la Ho y aceptamos la Ha de que los casos
positivos y negativos de Ameba spp. se presentan de
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91 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
diferente manera en los 3 rangos de edad en el cantón
Cuenca.
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92 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
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93 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 12. Porcentajes totales de la muestra estudiada
en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
Ameba spp. y prevalencia (+) de las 4 áreas urbanas del
cantón Cuenca.
GRAFICO N° 13. Porcentajes totales de la muestra
4,73
2,32
1,70
1,25
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
1,07
0,63
0,80
0,18
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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94 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y
hembras con Ameba spp. y prevalencia (++) de las 4 áreas
urbanas del cantón Cuenca.
GRAFICO N° 14. Porcentajes totales de la muestra
estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y
hembras con Ameba spp. y prevalencia (+++) de las 4 áreas
urbanas del cantón Cuenca.
0,09
0,18
0,54
0,09
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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95 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 15. Porcentajes totales de la muestra
estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y
hembras con Ameba spp. de los casos negativos de las 4
áreas urbanas del cantón Cuenca.
CUADRO N° 12. Prueba de Z de los casos positivos y
negativos de Ameba spp., registrados en 3 rangos de edad
en caninos machos y hembras de las 4 áreas del cantón
Cuenca.
N° Area
Amebas
+ ++ +++ Negativo
xi xi xi xi
Area 1 53 12 1 414
36,96
25,45
11,25
12,77
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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96 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
Area 2 26 7 2 285
Area 3 19 9 6 126
Area 4 14 2 1 143
Total 112 30 10 968
28 7,5 2,5 242
Positivo (+)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad que estén con Ameba
spp. y con una incidencia (+) mayor a 14.
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97 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 16. Porcentaje de la prueba de Z de Ameba
spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
grado de infestación bajo.
El 80,23 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 14 o
sea 23 casos que representa el 2,05 casos.
Positivo (++)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad que estén con Ameba
spp y con una incidencia (++) mayor a 2.
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98 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 17. Porcentaje de la prueba de Z de Ameba
spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
grado de infestación medio.
El 89,97 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (++) mayor a 2 o
sea 7 casos que representa el 0,63 casos.
Positivo (+++)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad que estén con Ameba
spp y con una incidencia (+++) mayor a 1.
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99 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 18. Porcentaje de la prueba de Z de Ameba
spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
grado de infestación alto.
El 81,06 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (+++) mayor a 1 o
sea 2 casos que representa el 0,18 casos que no llega a 1.
Coccidia spp.
CUADRO N° 13. Promedio del grado de prevalencia de
Coccidiosis en hembras en las 4 áreas urbanas del cantón
Cuenca.
Coccidia
N° Area + ++ +++ Negativo
Area 1 20 7 4 209
Area 2 12 8 1 139
Area 3 9 3 1 67
Area 4 7 1 2 70
∑Xi 48 19 8 485
i 12 4,75 2 121,25
R 13 7 3 142 S
2 32,67 10,92 2 4528,25
S 3,30 3,30 1,41 67,29
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100 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
IC al 95%
6,72 µ 17,28
2,46 µ 7,04
1,01 µ 2,99
66,11 µ 176,39
El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de
infestación de Coccidiosis en hembras para las 4 áreas
investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los
niveles de infestación: Baja (+) de 6,72 µ 17,28 con una =
12 con un 1,07% de casos con respecto a la muestra. Media
(++) de 2,46 µ 7,04 con una = 4,75 con 0,42 % de casos
con respecto a la muestra. Alta (+++) de 1,01 µ 2,99 con una
. = 2 con un 0,18 % de casos con respecto a la muestra y
Negativos de 66,11 µ 176,39 con una = 121,25 con un
10,83 % de casos con respecto a la muestra.
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101 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
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102 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
CUADRO N° 14. Promedio del grado de prevalencia de
Coccidiosis en machos en las 4 áreas urbanas del cantón
Cuenca.
Coccidia
N° Area + ++ +++ Negativo
Area 1 21 6 3 210
Area 2 6 2 0 152
Area 3 7 2 2 69
Area 4 6 3 0 71
∑Xi 40 13 5 502
i 10 3,25 1,25 125,5
R 15 4 3 141 S
2 54 3,58 2,25 4668,33
S 1,89 1,89 1,5 68,33
IC al 95% 5,07 µ 14,93
1,75 µ 4,75
0,49 µ 2,01
68,67 µ 182,33
El Intervalo de Confianza al inferir a la Muestra al 95 % de
infestación de Coccidiosis en machos para las 4 áreas
investigadas se obtuvo los siguientes resultados para los
niveles de infestación: Baja (+) de 5,07 µ 14,93 con una =
10 con un 0,89% de casos con respecto a la muestra. Media
(++) de 1,75 µ 4,75 con una = 3,25 con 0,29% de casos
con respecto a la muestra. Alta (+++) de 0,49 µ 2,01 con una
. = 1,25 con un 0,11% de casos con respecto a la muestra y
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103 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
Negativos de 68,67 µ 182,33 con una = 125,5 con un
11,21% de casos con respecto a la muestra.
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104 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
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105 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
CUADRO N° 15. Prueba de Chi Cuadrado de los casos
positivos de niveles (+), (++), (+++) y negativos de Coccidia
spp. en caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.
Grado de infestación
Machos Hembras Total
oi ei oi ei
Positivos 58 66,5 75 66,5 133
Negativos 502 493,50 485 493,5 987
Total 560 560 560 560 1120
X² Cal. X² Tabular
2,47 NS 0,05 0,01
3,84 6,63
El análisis de Chi Cuadrado de casos positivos y negativos de
Coccidia spp. en caninos machos y hembras en las 4 áreas
del cantón Cuenca se obtiene un valor de 2,47 que
comparado con los valores tabulares al 5 y 1% de
significación, resulta ser No significativo (NS) es decir que los
casos positivos y negativos se presentan por igual en machos
y hembras en los 3 niveles de prevalencia por lo que se debe
implementar medidas sanitarias por igual.
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106 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
CUADRO N° 16. Prueba de Chi Cuadrado del total de los
casos positivos y negativos de Coccidia spp. registrados en 3
rangos de edad en caninos machos y hembras de la ciudad
de Cuenca.
Grado de infestacion
Coccidia
Total Edad en años
< 2 2 a 4 > 4
oi ei oi Ei oi ei
Positivos 59 45,1 47 52,84 27 35,03 133
Negativos 321 334,9 398 392,16 268 259,97 987 Total 380 380 445 445 295 295 1120
X² Cal. X² Tabular
7,66* 0,05 0,01
5,99 9,21
El análisis de Chi Cuadrado para determinar la prevalencia de
Coccidia spp. en las edades investigadas en las 4 áreas de la
ciudad de Cuenca se obtiene un valor calculado de 7,66 que
comparado con los valores tabulares al 5% y al 1% de
significación, resulta ser significativo (*), por lo que
aceptamos la Ho al 1 % de que los casos positivos y
negativos de Coccidia spp. se presentan de igual manera en
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107 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
los 3 rangos de edad y son diferentes al 5% en los caninos
del cantón Cuenca.
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108 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
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109 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 21. Porcentajes totales de la muestra
estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y
hembras con Coccidia spp. y prevalencia (+) en las 4 áreas
urbanas del cantón Cuenca.
GRAFICO N° 22. Porcentajes totales de la muestra
estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y
3,66
1,61
1,43
1,16
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
1,16
0,89
0,45
0,36
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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110 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
hembras con Coccidia spp. y prevalencia (++) en las 4 áreas
urbanas del cantón Cuenca.
GRAFICO N° 23. Porcentajes totales de la muestra
estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y
hembras con Coccidia spp. y prevalencia (+++) en las 4
áreas urbanas del cantón Cuenca.
0,63
0,09
0,27
0,18
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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111 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 24. Porcentajes totales de la muestra
estudiada en 3 rangos de edad en caninos machos y
hembras con Coccidia spp. de los casos negativos en las 4
áreas urbanas del cantón Cuenca.
CUADRO N° 18. Prueba de Z de los casos positivos y
negativos de Coccidia spp., en 3 rangos de edad en caninos
machos y hembras de las 4 áreas del cantón Cuenca.
N° Area
Coccidia
+ ++ +++ Negativo
xi xi xi xi
Area 1 41 13 7 419
37,41
25,98
12,14
12,59
Area 1
Area 2
Area 3
Area 4
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112 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
Area 2 18 10 1 291
Area 3 16 5 3 136
Area 4 13 4 2 141
Total 88 32 13 987
22 8 3,25 246,75
Positivo (+)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad que estén con Coccidia
spp. y con una incidencia (+) mayor a 13.
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113 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 25. Porcentaje de la prueba de Z de Coccidia
spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
grado de infestación bajo.
El 76,12 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 13 o
sea 17 casos que representa el 1,52 casos.
Positivo (++)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad que estén con Coccidia
spp. y con una incidencia (++) mayor a 4.
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114 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 26. Porcentaje de la prueba de Z de Coccidia
spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
grado de infestación medio.
El 81,33 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (++) mayor a 4 o
sea 7 casos que representa el 0,63 casos.
Positivo (+++)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad que estén con Coccidia
spp y con una incidencia (+++) mayor a 1.
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115 Beatriz Catalina Méndez Albarracín Carlos Enrique Almeida Fárez 2011
GRAFICO N° 27. Porcentaje de la prueba de Z de Coccidia
spp., en 3 rangos de edad en caninos machos y hembras con
grado de infestación alto.
El 85,77 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (+++) mayor a 1 o
sea 3 casos que representa el 0,27 casos que no llega a 1.
IV CONCLUSIONES
De la investigación realizada conseguimos las siguientes
conclusiones:
Se determinó la prevalencia de protozoos (Giardia canis,
Ameba spp. y Coccidia spp.), mediante exámenes
coprológicos con el método de centrifugación utilizando
la técnica de sulfato de zinc, concluyendo que éstas
parasitosis se presentan por igual en caninos machos y
hembras.
Se comprobó que los protozoos (Giardia canis, Ameba
spp. y Coccidia spp.), de acuerdo a los tres rangos de
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edad, se encuentran con mayor predisposición en
caninos de edades tempranas, menores a 2 años.
Se comprobó que estas parasitosis tienen mayor
presencia en las áreas más lejanas, debido a que los
caninos conviven con otras especies animales, y las
condiciones medioambientales favorecen su desarrollo
permitiendo el intercambio de formas parasitarias.
Según los datos estadísticos de esta investigación la
mayoría de caninos se encontraron con grados de
infestación bajos de esta manera consideramos que
éstos se encuentran con mejor nivel de vida.
Se establecieron los porcentajes según el grado de
infestacion para: Giardia canis: Baja con 3,45%, Media
con 1,25% y Alta con 0,37%. Ameba spp.: Baja con
11,58%, Media con 3,10% y Alta con 1,03%. Coccidia
spp.: Baja con 8,91%, Media con 3,25% y Alta con
1,31%.
V RECOMENDACIONES
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En la presente investigación sugerimos las siguientes
recomendaciones:
Concientizar a los propietarios la importancia de los
exámenes coprológicos periódicos para prevenir la
difusión elevada de estas enfermedades protozoarias
y al mismo tiempo que no afecte su economía.
Por los resultados obtenidos en la investigación que
se encaminan a una prevalencia baja de estos
protozoos a nivel de la ciudad de Cuenca,
recomendamos a los propietarios de las mascotas
tener presente un calendario sanitario de
desparasitaciones, con el fin de evitar que estas
parasitosis alcancen niveles altos.
De igual manera recomendamos a los propietarios de
las mascotas visitar al Médico Veterinario
frecuentemente para que realice exámenes de heces
y las desparasitaciones periódicas con la finalidad de
mantener la salud del animal en perfecto estado.
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Realizar constantemente limpiezas del ambiente en
el que habitan los caninos para mantener un nivel
bajo de estas parasitosis.
Realizar investigaciones en el campo parasitario en
otras especies domésticas ya que se trata de
enfermedades zoonósicas, permitiendo de esta
manera la transmisión a nuestras mascotas.
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IX ANEXOS
Anexo N° 1
Cálculos de la Media aritmética, rango, varianza (S2),
desviación típica (S)e intervalo de confianza (IC) por el grado
de prevalencia de Giardiasis en hembras en las 4 áreas
urbanas del cantón Cuenca.
Giardia
N° Area + ++ +++ Negativo
Area 1 7 2 1 230
Area 2 2 1 0 157
Area 3 6 1 1 72
Area 4 2 1 0 77
∑Xi 17 5 2 536
i 4,25 1,25 0,5 134
Rango (R) 5,00 1,00 1,0 158
Varianza (S2) 6,92 0,25 0,3 5612,67
Desviación típica (S)
2,63 0,50 0,6 74,92
Intervalo de Confianza (IC)
al 95%
2,28 µ
6,22
0,71 µ
1,79
0,18 µ
0,82
72,94 µ
195,06
Fórmula de la Media Aritmética
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Positivo (+)
Fórmula del Rango
R= Valor máximo – Valor mínimo Positivo (+)
7-2 = 5
Fórmula de la varianza
Positivo (+)
Fórmula de la desviación típica
Positivo (+)
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Fórmula de la Desviación típica de la media
Positivo (+)
Fórmula del Intervalo de Confianza
IC = ( - t 0,05 x S < µ > + + t 0,05 x S )
Positivo (+)
IC = 4,25 - (3,182 x 0,62) <µ> 4,25 + (3,182 x 0,62)
IC = 2,28 <µ > 6,22
Anexo N° 2
Cálculos del Chi cuadrado de los casos positivos de niveles
(+), (++), (+++) y negativos de Giardia canis en caninos
machos y hembras de la ciudad de Cuenca.
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Grado de infestación
Machos Hembras Total
Oi Ei oi ei
Positivos 27 25,5 24 25,5 51
Negativos 533 534,5 536 534,5 1069
Total 560 560 560 560 1120
Formula de Chi Cuadrado (Xi2)
X2= [(oi – ei) – 0,5]
2+……………+ [(oi – ei) – 0,5]
2
ei ei X
2= [(27-25,5)-0,5]2+ [(24-25,5)-0,5]2+ [(533-534,5)-0,5]2 + [(536-534,5)-
0,5]2
25,5 25,5 534,5 534,5
X2= (0,04) + (0,16) + (0,01) + (0,002)
X2= 0,21
Grados de libertad (g.l.)
g.l. =(C-1) (H-1) (2-1)(2-1) 1*1 g.l. = 1
X² Cal. X² Tabular
0,21NS 0,05 0,01
3,84 6,63
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Anexo N° 3
Cálculos de la Prueba de Z del total de los casos positivos y
negativos de Giardia registrados en 3 rangos de edad en
caninos machos y hembras de la ciudad de Cuenca.
N° Area
Giardia
+ ++ +++ Negativo
xi xi xi xi
Area 1 14 5 1 460
Area 2 7 3 1 309
Area 3 12 1 2 145
Area 4 4 1 0 155
Total 37 10 4 1069
9,25 2,50 1,0 267
Fórmula de la Prueba de Z
Positivo (+)
1. Encontrar el porcentaje de caninos machos y hembras
registrados en 3 rangos de edad que estén con Giardia
canis y con una incidencia (+) mayor a 4.
Z = 4 - 9,25 = -1,01
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5,2 Area entre 0 y - 1,01 = 0,3438
1/2 Curva = 0,5000 Area entre 0 y - 1,01 = + 0,3438
0,8438
0,8438 x 100 = 84,38% Número de casos del total de las muestras = 0,8438 * 9 = 7,6 = 8 casos Número de casos del total de la población = (100* 8)/1120 =
0,71 casos.
GRAFICO Nº 7. Porcentaje de la prueba de Z de Giardia
canis en 3 rangos de edad en machos y hembras con grado
de infestación bajo.
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El 84,38 % de los casos de los caninos de la ciudad de
Cuenca esta con una curva de incidencia (+) mayor a 4 o sea
8 casos que representa el 0,71 casos que no llega a 1.
Anexo N° 4
AREAS Y SECTORES INVESTIGADOS
AREAS N° 1 N° 2 N° 3 N° 4
PUMAPUNGO
YANUNCAY
MIRAFLORES
TOMEBAMBA
MUESTRA 480 320 160 160
PARROQUIAS
Machangara
Yanuncay Bellavista Huayna Cápac
Totoracocha
San Sebastián El Vecino Monay
San Blas
El Batán
Cañaribamba
Sucre
El Sagrario
Gil Ramírez D.
Fuente: Ministerio de Salud Pública.2008
Mapa de la distribución de las parroquias urbanas del
cantón Cuenca
PARROQUIAS DE LA CIUDAD DE CUENCA
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FUENTE: Ilustre Municipalidad de Cuenca. 2010
Anexo N° 5
FORMULARIO DE CAMPO
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N° DE
MUESTRA
Nombre del
propietario
Nombre del
paciente
Área o
Sector
Parroquia Raza del
paciente
Edad del
paciente
Sexo del
paciente
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Anexo N° 6
FORMULARIO DE LABORATORIO
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N° DE
MUESTRA
Giardia Ameba Coccidia
POSITIVOS NEGATIVO
POSITIVOS NEGATIVO
POSITIVOS NEGATIVO
(+) (++) (+++) (+) (++) (+++) (+) (++) (+++)
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Anexo N° 7
PREPARACIÓN DE LA MUESTRA
Paso 1
Preparación de la muestra con Agua Destilada y rotulación de los tubos
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Paso 2
Primera centrifugación con agua destilada
Paso 3
Eliminación del sobrenadante y recuperación del
sedimento
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Paso 4 Preparación de la muestra con Sulfato de zinc
Paso 5 Segunda centrifugación con SO4Zn
Paso 6
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Preparación de las placas con una gota de Lugol
Paso 7
Observación al microscopio
Anexo N° 8
Protozoos observados en la investigación.
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Quistes de Giardia canis
Quistes de Ameba spp.
Ooquiste sin esporular y ooquiste esporulado de Coccidia
spp.
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