CONSEJO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA -CONCYT-
SECRETARIA NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA -SENACYT-
FONDO NACIONAL DE CIENCIA Y TECNOLOGIA -FONACYT-
FACULTAD DE CIENCIAS QUIMICAS Y FARMACIA
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
INFORME FINAL
EVALUACIÓN DE LA CONTAMINACIÓN FISICO-QUIMICA Y
BACTERIOLÓGICA EN EL AGUA DEL RIO DULCE Y LAGO DE IZABAL
PROYECTO FODECYT No. 025-2006
BESSIE EVELYN OLIVA HERNÁNDEZ
Investigadora Principal
GUATEMALA, ENERO DE 2010.
AGRADECIMIENTOS:
La realización de este trabajo, ha sido posible gracias al apoyo financiero dentro
del Fondo Nacional de Ciencia y Tecnología, -FONACYT-, otorgado por La
Secretaría Nacional de Ciencia y Tecnología -SENACYT- y al Consejo Nacional de
Ciencia y Tecnología -CONCYT-.
Autores:
M.Sc. Bessie Oliva Hernández de Sandoval
Química graduada de la Universidad de San Carlos. Obtuvo su M.Sc. en Estudios
Ambientales en la Universidad del Valle de Guatemala. Profesora de la Escuela de
Química de la USAC desde 1998, ha impartido cursos de Química Orgánica, Análisis
Instrumental y Fisicoquímica des 1993. Realizó estudios de especialización en Análisis
de Metales Traza en el Centro de Energía Nuclear en la Agricultura (CENA),
Piracicaba, Brasil, y en la Universidad Católica del Norte, Antofagasta, Chile, y de
Garantía de la Calidad, en la Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia.
Anteriormente se desempeñó como Jefe del Laboratorio de Fluorescencia de Rayos X
de la Dirección General de Energía Nuclear (1992-1996). Ha participado en más de 25
proyectos de investigación relacionados con la Química Ambiental, Química Analítica
y Química de Productos Naturales. Es Co-autora de 10 publicaciones nacionales y más
de 20 internacionales.
Dr. Juan Francisco Pérez Sabino.
Químico graduado de la Universidad de San Carlos, MBA por ESEADE, Universidad
Francisco Marroquín y M.Sc. en Estudios Ambientales por la Universidad del Valle de
Guatemala. Es Doctor en Química de Productos Naturales, por el Núcleo de Pesquisas
de Productos Naturales de la Universidad Federal de Río de Janeiro, Brasil. Ha hecho
estudios de especialización en Química Analítica Nuclear en la Universidad de Lund,
Suecia, y en la Universidad de Viena, Austria, y de microcontaminantes orgánicos en
medio ambiente en los Laboratorios del OIEA en Seibersdorff, Austria, y en el
Instituto Biológico, Sao Paulo, Brasil. Profesor Titular de la Escuela de Química de la
USAC desde 1998, actual Director de la misma, ha impartido cursos de Química
Orgánica, Análisis Instrumental y Fisicoquímica desde 1993. Anteriormente se
desempeñó como Jefe del Laboratorio de Radiactividad Ambiental de la Dirección
General de Energía Nuclear (1990-1997). Ha participado en más de 25 proyectos de
investigación relacionados con la Química Ambiental, Radiactividad Ambiental,
Química Analítica y Química de Productos Naturales. Es Autor y Co-autor de 12
publicaciones nacionales y más de 30 internacionales.
Dra. Karin Larisa Herrera
Química Bióloga, graduada de la Escuela de Química Biológica de la USAC, M.Sc. en
Estudios Ambientales, por la Universidad del Valle de Guatemala. Con Doctorado en
Sociología, por la Universidad Pontificia de España. Es Profesora e Investigadora del
Laboratorio Microbiológico de Referencia, -LAMIR- de la Escuela de Química
Biológica. Imparte cursos de microbiología en la Escuela de Química Biológica. Ha
participado como coordinador e investigador en proyectos de investigación en el área
de la Química Biológica y Química Ambiental. Cuenta con varias publicaciones
nacionales e internacionales.
Licda. Isabel Gaitán
Química Bióloga, graduada de la Escuela de Química Biológica de la USAC, con
Maestría Multidisciplinaria en Producción y uso de Plantas Medicinales –MUPLAM-.
Profesora de la Escuela de Química, desde 2005, ha impartido los cursos de Anatomía y
Fisiología, Laboratorio de Microbiología, Histopatología. Ha participado en más de 10
proyectos de investigación.
Licda. Blanca Callejas
Química Bióloga, graduada de la Universidad de San Carlos de Guatemala, con más de
30 años de experiencia en análisis microbiológicos. Ha participado en 5 proyectos de
investigación relacionados con la calidad del agua en diferentes cuerpos de agua del
país.
Licda. Claudia Karina Osorio Gamboa
Química Bióloga, graduada de la Universidad de San Carlos de Guatemala, con
experiencia en la identificación de fitoplancton.
Lic. Oswaldo Efraín Martínez Rojas
Químico graduado de la Universidad de San Carlos de Guatemala. Es profesor en la
Escuela de Química desde 2006, impartiendo los cursos de Análisis Inorgánico,
Química Inorgánica y Química General. Ha participado en más de 5 proyectos de
investigación relacionados con la calidad del agua en diferentes cuerpos de agua del
país.
Lic. Abner Mardoqueo Arzet
Químico graduado de la Universidad de San Carlos de Guatemala. Ha participado en 3
proyectos de investigación relacionados con calidad de agua, en diferentes cuerpos de
agua del país.
Br. Johana Patricia Hernández Catú
Con pensum cerrado en la carrera de Química Biológica, en la Universidad de San
Carlos de Guatemala. Ha participado en 2 proyectos de investigación relacionados con
la calidad del agua, en diferentes cuerpos de agua del país.
VII
INDICE
No. CONTENIDO
Página
INDICE VII
Lista de Abreviaturas XIII
RESUMEN XIV
SUMMARY (ABSTRACT) XV
PARTE I 1
I.1. INTRODUCCIÓN 1
I.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 2
I.2.1 Antecedentes 2
I.2.1.1 Descripción del área de estudio 2
I.2.1.2 Importancia socioeconómica 2
I.2.1.3 Situación del bosque tropical y subtropical 3
I.2.1.4 Estudios de calidad del agua efectuados previamente en el área de
estudio
3
I.2.2 Justificación del trabajo de investigación 6
I.3 OBJETIVOS E HIPOTESIS 7
I.3.1 Objetivos 7
I.3.1.1 Objetivo General 7
I.3.1.2 Objetivos Específicos 7
I.3.2 Hipótesis 8
I.4 METODOLOGÍA 9
I.4.1 Localización 9
I.4.2 Las Variables 9
I.4.2.1 Variables dependientes 9
I.4.2.2 Variables independientes 9
I.4.3 Indicadores 9
I.4.4 Estrategia metodológica 9
I.4.4.1 Población y muestra 9
I.4.5 El método 10
I.4.5.1 Muestreo 10
I.4.5.2 Toma de muestras de agua y sedimentos 10
I.4.5.3 Análisis de parámetros físicos en el campo 11
I.4.5.4 Análisis de nutrientes (especies de nitrógeno y fósforo) 11
I.4.5.5 Análisis de metales 11
I.4.5.6 Análisis de Hidrocarburos Aromáticos Policíclicos 11
I.4.5.7 Medición de sólidos 11
VIII
I.4.5.8 Análisis Bacteriológicos y de fitoplancton 11
I.4.5.8.1 Análisis microbiológicos de agua 12
1.4.5.8.1.1 Toma De muestra para análisis microbiológico 12
1.4.5.8.1.1.1 Recipientes 12
1.4.5.8.1.1.2 Agua de ríos, lagos o reservorios 12
1.4.5.8.1.1.3 Volumen de muestra 12
1.4.5.8.1.1.4 Transporte y recepción de la muestra 12
1.4.5.8.1.2 Análisis microbiológico en el laboratorio 12
1.4.5.8.1.2.1 Materiales y reactivos 12
1.4.5.8.1.2.2 Procedimiento 13
I.4.5.8.2 Fitoplancton 13
I.4.5.8.2.1 Muestreo 13
I.4.5.8.3 Colifagos 13
I.4.5.9 Índice de Calidad del Agua (ICA) 14
I.4.6 La técnica estadística 15
I.4.7 Material general de muestreo 15
I.4.8 Los Instrumentos utilizados 16
PARTE II, MARCO TEÓRICO 17
II.1 Eutrofización de cuerpos de agua 17
II.2 Calidad del agua 19
II.3 Áreas protegidas ubicadas en la región de estudio 20
II.4 Contaminación de cuerpos de agua y efectos sobre los organismos vivos 21
II.5 Parámetros de calidad del agua 22
II.5.1 Nitrógeno total 22
II.5.2 Fósforo total 23
II.5.3 Nitrógeno de amonio 23
II.5.4 Nitrógeno de nitrato y nitrógeno de nitrito 24
II.5.5 Fósforo de ortofosfato 24
II.5.6 Sólidos totales 25
II.5.7 Sólidos disueltos 25
II.5.8 Potencial de hidrógeno (pH) 25
II.5.9 Oxígeno disuelto 26
II.5.10 Materia orgánica biodegradable: Demanda Bioquímica de Oxígeno
(DBO5)
27
II.5.11 Materiales oxidables: Demanda Química de Oxígeno (DQO) 27
II.5.12 Potencial Redox 27
II.5.13 Parámetros Físicos 28
II.5.13.1 Color 28
II.5.13.2 Temperatura 28
II.5.13.3 Conductividad 29
II.5.13.4 Transparencia del agua 30
II.5.14 Contaminantes traza 30
II.5.15 Hidrocarburos aromáticos policíclicos (PAHs) 30
IX
II.5.16 Microorganismos indicadores de Contaminación Microbiológica 31
II.5.17 Fitoplancton 31
PARTE III 33
III.1 Resultados 33
III.1.1 Localización de sitios de muestreo. 33
III.1.2 Parámetros fisicoquímicos de campo 37
III.1.3 Nutrientes 50
III.1.4 Otros parámetros fisicoquímicos 55
III.1.5 Sólidos 58
III.1.6 Resultados microbiológicos 61
III.1.7 Índice de calidad del agua (ICA) en Río Dulce y Lago de Izabal 68
III.1.8 Análisis de metales 69
III.1.9 Análisis de fitoplancton 70
III.2 Discusión de Resultados 74
III.2.1 Parámetros de campo 74
III.2.1.1 Sitios de muestreo, profundidad, temperatura y porcentaje de humedad
ambientales
74
III.2.1.2 pH y potencial de oxidorreducción 74
III.2.1.3 Temperatura 75
III.2.1.4 Oxígeno disuelto 75
III.2.1.5 Conductividad 76
III.2.1.6 Salinidad 76
III.2.1.7 Visibilidad o penetración de la luz 77
III.2.1.8 Color aparente 77
III.2.1.9 Sólidos disueltos totales 78
III.2.2 Concentración de nutrientes y situación de la contaminación del Lago
de Izabal
78
III.2.2.1 Compuestos de nitrógeno 78
III.2.2.1.1 Nitrógeno de nitritos y de nitratos 78
III.2.2.1.2 Nitrógeno total 79
IIII.2.2.2 Compuestos de fósforo 80
III.2.2.2.1 Fósforo de ortofosfatos 81
III.2.2.2.2 Fósforo total 81
III.2.2.3 Sulfatos 82
III.2.2.4 Demanda Química de Oxígeno y Demanda Bioquímica de Oxígeno 83
III.2.2.5 Sólidos 83
III.2.3 Contaminación bacteriológica 84
III.2.4 Índice de Calidad del Agua (ICA) 86
III.2.5 Metales en sedimentos 87
III.2.6 Fitoplancton 88
X
PARTE IV 82
IV.1 CONCLUSIONES 90
IV.2 RECOMENDACIONES 92
IV.3 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 93
IV.4 ANEXOS 99
IV.4.1 Información de organismos de fitoplancton 99
PARTE V 102
V.1 Informe Financiero 102
INDICE DE TABLAS
No. CONTENIDO Página
1. Tabla 1. Ubicación de los sitios de muestreo (medidos con GPS) 33
2. Tabla 2. Potencial de Hidrógeno en sitios de muestreo en el Lago de Izabal y
Río Dulce
37
3. Tabla 3. Potencial de óxido Reducción en el Río Dulce y Lagos de Izabal. 38
4. Tabla 4. Temperatura del agua en los sitios de muestreo en Río Dulce y Lago
de Izabal.
39
5. Tabla 5. Oxígeno Disuelto (mg/L) en agua superficial del Lago de Izabal y
Río Dulce.
40
6. Tabla 6. Oxígeno Disuelto (% de saturación) en agua superficial del Lago de
Izabal y Río Dulce
41
7. Tabla 7. Conductividad del agua en Río Dulce y Lago de Izabal (uS/cm) 42
8. Tabla 8. Salinidad en partes por mil (o/oo), medida en agua del Río Dulce y
Lago de Izabal.
43
9. Tabla 9. Total de sólidos disueltos (TDS) en mg/L, medidos en agua del Río
Dulce y Lago de Izabal.
44
10. Tabla 10. Profundidad en metros en el Río Dulce y Lago de Izabal. 45
11. Cuadro 11. Visibilidad en metros, medida en agua del Río Dulce y Lago de
Izabal.
46
12. Tabla 12. Color del agua en Río Dulce y Lago de Izabal. 47
13. Tabla 13. Temperatura ambiente, medida en los sitios de muestreo ubicados
en el Río Dulce y Lago de Izabal.
48
14. Tabla 14. Porcentaje de humedad, medido en los sitios de muestreo ubicados
en el Río Dulce y Lago de Izabal.
49
15. Tabla 15. Nitrógeno de Nitritos (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce.. 50
16. Tabla 16. Nitrógeno de Nitratos (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce. 51
17. Tabla 17. Nitrógeno Total (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce. 52
18. Tabla 18. Fósforo de Ortofosfatos (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce. 53
XI
19. Tabla 19. Fósfoto Total (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce. 54
20. Tabla 20. Sulfatos, en miligramos por litro (mg/L), medido en el agua del
Río dulce y Lago de Izabal.
55
21. Tabla 21. Demanda Química de Oxígeno (DQO) en los sitios de muestreo en
el Lago de Izabal y Río Dulce
56
22. Tabla 22. Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO) en mg/L en el Lago de
Izabal y Río Dulce.
57
23. Tabla 23. Sólidos Suspendidos, en miligramos por litro (mg/L), medido en el
agua del Río dulce y Lago de Izabal.
58
24. Tabla 24. Sólidos disueltos, en miligramos por litro (mg/L), medido en el
agua del Río dulce y Lago de Izabal.
59
25. Tabla 25. Sólidos Totales, en miligramos por litro (mg/L), medido en el agua
del Río dulce y Lago de Izabal.
60
26. Tabla 26. Recuento Total de Bacterias Anaeróbicas (RAP) en UFC / ml 61
27. Tabla 27. Recuento de coliformes Totales en UFC / mL 62
28. Tabla 28. Recuento de Coliformes Fecales UFC / ml 63
29. Tabla 29. Recuento de Escherichia coli 64
30. Tabla 30. Recuento de Enterococcus NMP / mL 65
31. Tabla 31. Recuento de Colifagos 66
32. Tabla 32. Análisis de Salmonella en agua de sitios de muestreo en Río Dulce
y Lago de Izabal.
67
33. Tabla 33. Indice de Calidad del Agua (ICA) en los sitios de muestreo en Lago
de Izabal y Río Dulce
68
34. Tabla 34. Concentraciones promedio de metales en sedimentos del Lago de
Izabal colectados en 2004, determinados por Espectrofotometría de
Absorción Atómica en la Universidad Federal de Río de Janeiro. (mg/Kg,
peso seco).
69
35. Tabla 35. Determinación de metales en sedimentos colectados en Río Dulce,
en enero de 2007, analizados por Espectrofotometría de Absorción Atómica
en la Universidad Federal de Río de Janeiro. (mg/Kg).
69
36. Tabla 36. Géneros de fitoplancton entrados en muestras de agua colectadas
durante el primer muestreo, realizado durante el mes de octubre de 2006, en
Río dulce y Lago de Izabal.
70
37. Tabla 37. Géneros de Fitoplancton encontrados en muestras de agua
colectadas durante el segundo muestreo, realizado durante el mes de enero de
2007, en Río Dulce y Lago de Izabal
71
38. Tabla 38. Géneros de Fitoplancton encontrados en muestras de agua
colectadas durante el tercer muestreo, realizado durante el mes de abril de
2007, en Río Dulce y Lago de Izabal.
72
39. Tabla 39. Géneros de Fitoplancton encontrados en muestras de agua
colectadas durante el cuarto muestreo, realizado durante el mes de enero de
2008, en Río Dulce y Lago de Izabal.
73
XII
INDICE DE FIGURAS
No. CONTENIDO Página
1. Ubicación de los sitios de muestreo en el Lago de Izabal y Río Dulce 34
2. Ubicación de los sitios de muestreo en el Río Dulce 35
3. Ubicación de los sitios de muestreo en el Lago de Izabal 36
Mapas temáticos
4. pH en Río Dulce 110
5. Temperatura en Río Dulce 111
6. Conductividad en Río Dulce 112
7. Oxígeno disuelto en Río Dulce 113
8. Saturación de oxígeno en Río Dulce 114
9. Total de sólidos disueltos en Río Dulce 115
10. Visibilidad en Río Dulce 116
11. Temperatura ambiente en Río Dulce 117
12. Porcentaje de humedad en Río Dulce 118
XIII
LISTA DE ABREVIATURAS:
ANVISA: Agencia Nacional de Vigilancia Sanitaria de Brasil.
APHA: American Public Health Association
ASINDEGUA: Asociación para el Desarrollo Integral de los guatemaltecos
AWWA: American Water Works Association
CECON: Centro de Estudios Conservacionistas.
COGUANOR: Comisión Guatemalteca de Normas
CONAP: Comisión Nacional de Áreas Protegidas
DBO: Demanda Bioquímica de Oxígeno
DQO: Demanda Química de Oxígeno
EFSA: Autoridad Europea de Seguridad Alimentaria
EPA: Agencia de Protección Ambiental de los Estados Unidos.
g: gramo
GPS: sistema de posicionamiento geográfico
Ha: hectárea
ICA: Índice de Calidad del Agua
INAB: Instituto Nacional de Bosques
Kg: kilogramo
km2: kilómetro cuadrado
L: Litro
MAGA: Ministerio de Agricultura y Alimentación
mg: miligramo
mL: mililitro
NMP: Número más probable.
NSF: Fundación de Sanidad Nacional de los Estados Unidos
OD: Oxígeno disuelto
OMS: Organización Mundial para la Salud
PAH: Hidrocarburos aromáticos policíclicos
pH: potencial de hidrógeno
RAP: Recuento total de bacterias anaeróbicas
SDT (o TDS): Sólidos disueltos totales
UFC: Unidades Formadoras de Colonias.
UV-VIS: Ultravioleta-visible
uS: microsiemens
XIV
RESUMEN
En el presente trabajo se evaluó la contaminación del agua en el Lago de Izabal y Río Dulce en
cuatro meses comprendidos en el período entre octubre de 2006 y enero de 2008. En el estudio
fueron analizados los principales parámetros fisicoquímicos y bacteriológicos del agua del Río
Dulce y Lago de Izabal, así como metales tóxicos en sedimentos y organismos indicadores de
contaminación del agua como fitoplancton y colifagos.
Los muestreos fueron realizados en 26 sitios localizados en la desembocadura del Río Polochic,
el Lago de Izabal y sus afluentes, Río Dulce y ríos y lagunas del Biotopo Chocón Machacas. Se
encontraron altos niveles de contaminación, especialmente de nitrógeno de nitratos y fósforo de
ortofosfatos, así como la presencia de organismos de fitoplancton que son considerados como
indicadores de cuerpos de agua eutrofizados, que representan una amenaza para la integridad
ecológica del Lago de Izabal y el Río dulce y que demuestran el incremento de la contaminación
en las pasadas décadas. En varios sitios de muestreo fueron encontradas bacterias patógenas, que
representan un riesgo para la población humana que utiliza el agua para consumo o recreación.
A partir de los principales parámetros de calidad del agua se determinaron los índices de calidad
del agua (ICA), que revelaron que los principales sitios contaminados son Río Bonito,
Livingston, Salida del Golfete, Exmibal, Bocas del Polochic Sur, Bocas del Polochic Norte, Río
Oscuro y Aldea Izabal, cuya calidad del agua está afectada por altos niveles de contaminación
bacteriológica y de nutrientes. Los resultados del proyecto conforman una base de datos sobre la
contaminación del agua, de utilidad para la evaluación de tendencias anuales en los niveles de
contaminación, así como para evaluar el efecto de medidas de mitigación tomadas por las
autoridades de la cuenca.
XV
SUMMARY (ABSTRACT)
The physicochemical and bacteriological contamination of the water of Izabal Lake and Dulce
River was evaluated in this study. Sampling was carried out in four different months between
October 2006 and January 2008 in 26 sampling sites located in Izabal Lake, Dulce River,
Chocón Machacas Biotope and the main tributaries of those water bodies. Among the pollutants
evaluated in water were nutrients, pathogenic bacteria, and pollution indicators as phytoplankton
organisms. Toxic metals as Pb, Cr, Cd, Hg, As, Zn and Ni were analyzed in sediments.
High levels of contamination, especially nitrate-nitrogen and phosphate-phosphorus, and
phytoplankton organisms known as eutrophication indicators were found, which represents a
threat to the ecological integrity of these aquatic ecosystems and demonstrating the increasing
levels of water contamination in Izabal Lake and Dulce River. Pathogenic bacteria were found
in some sampling sites representing a serious threat to human health of the population using the
water for consumption or recreation. A Water Quality Index (WQI) was calculated using 9 main
water quality parameters. The indexes revealed that the sites most polluted were Río Bonito,
Livingston, Salida del Golfete, Exmibal, Bocas del Polochic Sur, Bocas del Polochic Norte, Río
Oscuro y Aldea Izabal, affected mainly by high livels of nutrients and bacteria. The results of
this study are useful as data base to evaluate annual trends in pollution levels and the
effectiveness of mitigation actions taken by the basin environmental and local authorities.
PARTE I
I.1 INTRODUCCIÓN
El Lago de Izabal y Río Dulce son utilizados por las poblaciones de la cuenca, como fuente de
suministro de agua para diferentes propósitos, entre ellos, la pesca, el transporte y la
recreación, por lo que contribuye al sostenimiento económico del Departamento de Izabal. El
Lago de Izabal es el lago de mayor extensión en Guatemala con 718 km2, y desemboca al
Mar Caribe a través del Río Dulce, en cuya cuenca se encuentra el Biotopo Chocón
Machacas, administrado por el Centro de Estudios Conservacionistas (CECON), de la
Universidad de San Carlos.
La calidad del agua del Lago de Izabal y Río Dulce se ha visto deteriorada en las últimas
décadas, lo cual representa un riesgo para la salud de los habitantes, las actividades
económicas y la conservación de los ecosistemas que dependen de la misma. La descarga
directa de aguas residuales, las actividades agrícolas que incluyen el uso excesivo de
fertilizantes y plaguicidas, las actividades de explotación minera y de transporte, son fuentes
potenciales de liberación de contaminantes en el ecosistema acuático, con el consiguiente
incremento en la eutrofización y la toxicidad del agua. Entre los contaminantes se encuentran
los nutrientes (nitrógeno y fósforo), metales tóxicos, microorganismos patógenos,
hidrocarburos y surfactantes, por lo que la integridad ecológica del lago sufre alteraciones
negativas. En la actualidad, el Lago de Izabal se encuentra en un estado eutrófico por lo que
es importante disminuir la descarga de altas concentraciones de nutrientes, para desacelerar el
proceso de eutrofización.
El propósito del presente proyecto fue generar información relevante sobre la situación de
la contaminación del agua en el lago de Izabal y el Río Dulce, que permita la evaluación de
las medidas de mitigación adoptadas por la Autoridad para el Manejo Sustentable del Lago de
Izabal (AMASURLI) para tratar de controlar el crecimiento de la planta exótica Hydrilla
verticilata, mejorar el entendimiento de los procesos biogeoquímicos en el lago, así como para
la planificación de la cuenca. La determinación de los principales parámetros fisicoquímicos y
bacteriológicos abarcó la totalidad del Lago de Izabal y Río Dulce, desde la desembocadura
del Río Polochic, como el tributario que contribuye mayormente al aporte de agua al lago de
Izabal, incluyendo los humedales del Biotopo Chocón Machacas. Los resultados mostraron
niveles elevados de contaminación fisicoquímica y bacteriológica que indican el grado de
deterioro de la cuenca, motivada por la deforestación, las malas prácticas agrícolas y la
descarga de aguas residuales al lago de Izabal y Río Dulce. Se confirmó que el Río Polochic
presenta niveles elevados de nutrientes que aporta al lago de Izabal incrementando su
deterioro. Los niveles de contaminación encontrados representan un riesgo importante para la
integridad biológica de los cuerpos de agua así como para la salud humana, al haberse
encontrado niveles elevados de nutrientes y de contaminación bacteriológica en el agua, que
representan un riesgo para la salud humana y la integridad ecológica del Lago de Izabal y Río
Dulce.
Para mejorar la calidad del agua en los cuerpos de agua estudiados, se recomienda que se
realice la planificación integral de la cuenca abarcando al río Polochic. La planificación debe
2
incluir el tratamiento de aguas residuales, la capacitación de los agricultores y la educación
ambiental de los habitantes de la cuenca, así como la conservación de los humedales, tanto en
Bocas del Polochic como en el Biotopo Chocón Machacas, con el fin de reducir la carga de
contaminantes. En la planificación de la cuenca deben estar involucrados los investigadores
que desarrollan proyectos en el área, el CECON, la Autoridad para el Manejo Sustentable del
Río Dulce y Lago de Izabal y las municipalidades de la cuenca.
I.2 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
I.2.1 Antecedentes
I.2.1.1 Descripción del área de estudio
El lago de Izabal cuenta con una extensión de 718 km2 y se localiza entre las coordenadas
15°24'N a 15°38´N y 88°58'W a 89°24' W, y con una profundidad media de 11.9 m, con
una altitud promedio de 0.8 msnm (Machorro, 1996), siendo el mayor lago de Guatemala.
Su principal afluente es el río Polochic que aporta un 70% de sus aguas (Basterrechea,
1993). En su desembocadura se encuentran los humedales de Bocas del Polochic, los cuales
cumplen la función de sistema de filtración para la contaminación, reduciéndo los niveles
de contaminantes que entran al lago hasta en un 60% (Pérez, 2003). En total, la cuenca
constituida por el lago de Izabal y Río Dulce cuenta con una extensión de 268,956.78 Ha
(MAGA, 2001).
Río Dulce fue declarado Parque Nacional por Acuerdo Gubernativo del 26 de mayo de
1955 y delimitado por acuerdo ministerial del 23 de agosto de 1968, siendo su extensión de
aproximadamente 7,200 ha, sin incluir el cuerpo de agua. El río se encuentra en el
municipio de Livingston, departamento de Izabal y constituye el drenaje natural del Lago
de Izabal hacia el mar Caribe.
I.2.1.2 Importancia socioeconómica
La tasa de crecimiento de la población en la cuenca del río Dulce es del 4.2 %, mientras que
el promedio en el país es de 2.3 %. Debido a la expansión desordenada de asentamientos
humanos caracterizados por condiciones de pobreza, por falta de oportunidades y la falta de
servicios básicos de saneamiento en la región, se descargan millones de metros cúbicos
anuales de aguas negras al Río Dulce contaminando sus aguas (Mejía, 1997)
El departamento de Izabal cuenta con una población de 314,306 habitantes (INE, 2003),
con una esperanza de vida de 68.81 años, un 69% de alfabetización, siendo dicho parámetro
de 61.3 % en Livingston y de 51.0% en El Estor, que son los municipios que tienen más
dependencia de los recursos acuáticos del Río Dulce y Lago de Izabal (ONU, 2001). En
cuanto al Índice de Desarrollo Humano, el departamento de Izabal presenta un valor de
0.61, oscilando entre 0.57 y 0.66 en sus municipios. En cuanto a la población en nivel de
pobreza, a nivel departamental el 52% de los habitantes presenta condiciones de pobreza,
con un mínimo de 33.6 en El Estor y un máximo de 65.5 en Los Amates, a nivel municipal
(ONU, 2001)
3
Las principales actividades socioeconómicas en la región de estudio: agricultura, turismo,
pesca, transporte, construcción, ganadería, provocan el deterioro del ecosistema, ya que no
existe un plan de manejo que permita la planificación de la cuenca (Mejía, 1997).
I.2.1.3 Situación del bosque tropical y subtropical
El departamento de Izabal cuenta con seis zonas de vida identificadas por su condición
topográfica. La zona de vida que cuenta con una mayor área en el departamento de Izabal
es el Bosque Muy Húmedo Subtropical Cálido, con 463,074.88 Ha seguido del Bosque
Muy Húmedo Tropical con 265,088 Ha (MAGA, 2001). Estas zonas de vida son las que se
encuentran en la cuenca del lago de Izabal y Río Dulce.
El bosque tropical y subtropical del departamento de Izabal se encuentra en grave amenaza
en vista del avance de la frontera agrícola y las prácticas de ganadería extensiva en la
región. Según el INAB, entre 1997 y 2001, se reforestaron en Izabal 3,444.60 Ha dentro
del Programa de Incentivos Forestales. Mientras que el área de bosque natural bajo manejo
a través del mismo Programa, se ha incrementado hasta 4,779.65 Ha (INAB, 2001). En
2001 se reportaron 3 incendios en el área boscosa del departamento de Izabal, afectando
290 Ha, habiendo sido los incendios de tipo rastrero. De esas 290 Ha, 92 correspondieron a
bosques de coníferas, 28 Ha de bosque latifoliado, 10 Ha a bosque mixto y 160 Ha a otro
tipo de vegetación.
Entre las principales amenazas en el Biotopo Chocón Machacas y en el Parque Nacional
Río Dulce en general se encuentran las actividades de extracción como la tala ilegal y la
cacería, que además son una fuente de conflictos entre pobladores y administradores del
parque. Estas actividades producen perdida de biodiversidad, afectando las opciones futuras
de desarrollo en la región. Según el CONAP, la explotación de la flora y fauna terrestre y
acuática en la zona ha llegado a niveles alarmantes, impulsando la biodiversidad a su punto
histórico más bajo (CONAP, 2004).
I.2.1.4 Estudios de calidad del agua efectuados previamente en el área de estudio
Desde la década de los 70 se han realizado estudios que demuestran la contaminación de las
aguas y los sedimentos del lago de Izabal (Machorro, 1996). Uno de los más recientes, es
el realizado por Basterrechea en el período 1991-1992 (Basterrechea, 1993), quién realizó
un estudio que comprendió la determinación de 49 parámetros físicos, químicos,
bioquímicos y bacteriológicos en 22 estaciones. El estudio consistió en la determinación
mensual de los parámetros seleccionados, por un año, estableciéndose así una línea base
para la calidad del agua del Lago de Izabal.
Un enriquecimiento del lago por los nutrientes inorgánicos como el amoníaco, los nitratos y
el fósforo, debido a cargas orgánicas excesivas, puede ocasionar un deterioro de la calidad
del agua, siendo conocido este proceso de sobreproducción como eutrofización (Payne,
1986). Basterrechea, en el estudio citado anteriormente, concluye que los principales
afluentes del Lago de Izabal, están provocando cambios indeseables en el mismo, a través
de la carga de material orgánico e inorgánico que son lavados de la cuenca. Así, se verificó
4
que existe el proceso de eutrofización en el lago, al ocurrir florecimientos algales de
cianofitas y diatomeas.
En 1997, ASINDEGUA efectúo un estudio sobre la calidad del agua en el río Dulce, en el
cual seleccionaron 29 puntos de muestreo a lo largo del río. En dicho estudio determinaron
principalmente contaminación microbiológica y por materia orgánica, y en algunos puntos
por grasas y aceites. Se concluyó que la principal fuente de contaminación era la descarga
de aguas servidas, en vista que los niveles de coliformes totales y fecales eran demasiado
elevados, encontrándose valores superiores a los 2,400 Unidades Formadoras de Colonias
por 100 mL (ASINDEGUA, 1997).
En 1998 se llevó a cabo un estudio sobre el Impacto de la Calidad del Agua en la cuenca
del río Polochic sobre la Integridad Biológica del lago de Izabal. En este estudio se
consideraron 6 puntos de muestreo ubicados en la región occidental del lago (El Estor,
Bocas de Cobán, Bocas de Bujajal, Río Oscuro, Centro del Lago y Punta Chapín).
Además, en la cuenca se muestrearon 9 puntos (Papaljá, Pueblo Viejo, Tinajas, Jolomjix,
Polochic en Telemán, Polochic en Panzós, Boca Nueva y Cahabón). Se evaluaron
parámetros químicos y biológicos. En dicho estudio se comprobó que la que la
deforestación relacionada con las actividades agrícolas se veía reflejada en los niveles de
sedimentos encontrados en los ríos (Dix et al., 1999). Asimismo, se encontró que los
niveles de nutrientes tienen un alto contenido de origen orgánico y sus niveles parecen estar
más relacionados a la cercanía de pueblos y la densidad de la población.
En dicho estudio se verificó la importancia del humedal ubicado en Bocas del Polochic
como una barrera filtradora de las aguas que van del Río Polochic hacia el lago de Izabal,
ya que se encontró que los niveles de nutrientes (N y P) en el agua, disminuyen en el lago.
Se ha estimado que dicha disminución de nutrientes alcanza hasta un 60% al desembocar el
río Polochic en los humedales (Pérez, 2003).
En 2002 y 2003, la Facultad de Ciencias Químicas y Farmacia participó en un estudio
multidisciplinario en el lago de Izabal y Río Dulce, en el cual se evaluó el problema de la
aparición y propagación de la planta exótica Hydrilla verticillata, la cual ocupa vastas
extensiones en las áreas someras de estos cuerpos de agua. Se concluyó que las altas
concentraciones de nutrientes han facilitado la propagación de la planta (Cabrera et al.,
2003).
Por otra parte, en el 2003 y 2004 se ejecutó por parte de la Facultad de Ciencias Químicas y
Farmacia, un proyecto cofinanciado por la Dirección General de Investigación, en el cual se
establecieron 23 sitios de muestreo, correspondiendo nueve al lago de Izabal y catorce a lo
largo del Río Dulce, tomando en cuenta los principales afluentes, es decir, el río Lámpara,
el río Crique Jute, el río Chocón y el río Bonito (Pérez et al., 2004). Asimismo, tomando
en cuenta las poblaciones de Río Dulce y Livingston, y el sitio de Puntarenas donde se
encuentra una comunidad. Los resultados confirmaron el estado eutrófico del lago de
Izabal, ya que se encontraron concentraciones promedio superiores a 30 ug/L de fósforo de
fosfatos y de 200 ug/L de nitrógeno de nitratos, las cuales son las formas más asequibles de
dichos elementos químicos como nutrientes para su ingreso a la cadena trófica a partir del
fitoplancton. Ya que en diferentes estudios se ha determinado que el fósforo es el nutriente
5
limitante en el lago de Izabal (Pérez, 2003), la concentración encontrada para el fósforo de
fosfatos indica el estado eutrófico del lago, al encontrarse en la clasificación de
Vollenweider (Roldán, 1992), dentro del rango correspondiente a lagos eupolitróficos, es
decir, en estado eutrófico pleno. Esto revela la importancia que tiene la investigación de la
evolución de las concentraciones de los nutrientes para la conservación de la calidad
ambiental del lago de Izabal y Río Dulce, ya que de seguir la tendencia creciente en el
aporte de nutrientes en la cuenca, el proceso de eutrofización del lago se verá acelerado y
podría sufrir problemas similares al lago de Amatitlán (Pérez, 2003). Los principales
géneros de fitoplancton encontrados en el estudio revelan también las características
eutróficas del lago, al encontrarse que los géneros más abundantes son Anabaena,
Anacystis, Diatoma y Microcystis, los cuales según Wetzel (1975), son indicadores de
estado eutrófico de lagos. En este estudio se evidenció que existe desconocimiento por
parte de la población de las comunidades de la cuenca, sobre el impacto de la
contaminación del agua, pensando un buen número de habitantes, que el agua corriente
arrastra y limpia la contaminación y por lo tanto no existirían problemas.
En cuanto a la contaminación bacteriológica, el presente proyecto revela que existe
contaminación por coliformes fecales en la mayor parte de los sitios de muestreo,
encontrándose en el 2004, la presencia de parásitos en los sitios evaluados, lo que revela la
peligrosidad del agua para la salud humana. Los sitios más afectados son Río Dulce,
Castillo de San Felipe, Livingston, centro del lago, Mariscos, río Crique Jute, río Lámpara,
río San Marcos y El Estor.
En cuanto a niveles de metales en sedimentos del Lago de Izabal en 1993 se encontraron
valores medios de 221 mg/Kg de plomo y 86 mg/Kg de zinc (Basterrechea et al., 1993). En
la cuenca existen depósitos de Pb-Zn, que podrían provocar niveles elevados en el
ecosistema acuático, por lo cual debe investigarse la columna de sedimento para tratar de
encontrar si existen causas antropogénicas en lo niveles de metales en el ecosistema
acuático.
En el año 2006 se realizó una caracterización de los habitats del manatí (Trichechus
manatus manatus) en el Golfo de Honduras, que comprendió el estudio de niveles de
metales tóxicos en agua, así como la determinación de la abundancia de los pastos de que
se alimenta el manatí (Romero-Oliva, 2006). En el estudio se encontraron niveles elevados
del zinc, atribuyéndose a la intervención antropogénica. Sin embargo, la aseveración parece
arriesgada, ya que el zinc es un metal presente en altas concentraciones en la cuenca
hidrográfica, por lo que se necesitan estudios más profundos en los núcleos de sedimento
para evaluar si en realidad existen variaciones que puedan atribuirse a la intervención
humana. En el estudio se encontraron niveles elevados de nutrientes, lo cual evidencia el
estado eutrófico en que se encuentra el Lago de Izabal. Romero-Oliva indica que la
vegetación acuática sumergida encontrada en el ecosistema estudiado en Guatemala,
consistía de V. americana, H. verticillata y P. illinoensis en la sección continental, siendo
H. verticillata la que presentaba mayores valores de cobertura, abundancia y frecuencia
para el país.
6
I.2.2 Justificación del trabajo de investigación
El deteriorlo de la calidad del agua del Lago de Izabal se ha puesto de manifiesto desde
estudios previos de la calidad del agua en el Lago de Izabal y Río Dulce realizados en la
década de 1990, entre ellos, la caracterización previa a las actividades de exploración petrolera
del lago (Basterrechea, 1993) y un estudio efectuado en 1998, por la la Universidad del Valle
el cual se concentró en la parte occidental del lago (Dix, 1999). En ambos estudios se
encontraron niveles elevados de contaminación por nutrientes, motivo por el cual se estimó
que el lago se encontraba en un estado eutrófico. En el período 2003-2004, fue realizado un
estudio por la Universidad de San Carlos (Pérez et al., 2003; Pérez et al., 2004) en el que se
encontró que los niveles de contaminación por nutrientes continuaban elevados, indicando que
el Lago de Izabal se encuentra en un estado eutrófico.
Además del proceso de eutrofización acelerado, los niveles de nutrientes han facilitado la
propagación de la planta exótica Hydrilla verticilata, la cual representa una amenaza seria para
la ecología del lago de Izabal y Río Dulce, y ha provocado el uso sin control de herbicidas por
parte de habitantes de los márgenes de esos cuerpos de agua. En el Lago de Izabal y Río
Dulce existe también una amenaza para la salud de los habitantes de la cuenca, al encontrarse
la presencia de bacterias en niveles de riesgo, por lo que se consideraba necesario investigar la
presencia de organismos patógenos para evaluar los sitios en que existe mayor riesgo para la
población por el consumo de agua.
Se ha considerado que las principales causas de la contaminación en los cuerpos de agua de
estudio son la descarga de aguas residuales de las poblaciones humanas, el uso de fetilizantes
en la agricultura y la explotación minera en la cuenca. Por la importancia que el Lago de
Izabal y el Río Dulce presentan debido a su gran diversidad biológica y recursos naturales, que
contribuyen al desarrollo de la región, tanto por el uso y explotación de los recursos como por
su atractivo turístico, es necesario investigar los niveles de contaminación y los procesos
biogeoquímicos de los cuerpos de agua, para generar información relevante para la
conservación de la cuenca y el uso sostenible del recurso hídrico.
Por otra parte, la investigación se justifica también en la necesidad de establecer los cambios
en los niveles de contaminación en el tiempo, para verificar la efectividad de las medidas de
mitigación adoptadas para reducir la contaminación, especialmente en los últimos años por
causa de la propagación de la planta exótica Hydrilla verticillata. Es así, como en el proyecto
se utilizó un índice de calidad del agua aplicable a aguas naturales, desarrollado por la
Fundación de Sanidad Nacional de los Estados Unidos (NSF) que considera los principales
parámetros de calidad del agua, para su clasificación en una escala de calidad que es más
entendible para la toma de decisiones por parte de autoridades amientales y sanitarias
(Landwher & Dennenger, 1976).
En vista que se ha reiniciado la actividad minera en la cuenca del Lago de Izabal, era también
necesario también determinar los niveles de contaminación por los principales metales tóxicos,
para ser utilizados como línea base en el control de la contaminación del lago.
7
I.3 OBJETIVOS E HIPOTESIS
I.3.1 Objetivos
I.3.1.1 General
Evaluar la contaminación fisicoquímica y bacteriológica del agua del lago de Izabal y del
Río Dulce.
I.3.1.2 Específicos
Determinar los niveles de nutrientes (nitrógeno y fósforo) en muestras de agua del lago de
Izabal, Río Dulce y humedales del Biotopo Chocón Machacas, en cuatro muestreos
durante un año.
Determinar la temperatura, el pH, la conductividad y perfiles de oxígeno disuelto, así como los
principales iones en el lago de Izabal, Río Dulce y humedales del Biotopo Chocón
Machacas, en cuatro muestreos durante un año.
Determinar los niveles de metales tóxicos (Pb, Cd, Zn, Cr, Ni, Cu, Hg) en sedimentos del lago
de Izabal y Río Dulce, en forma disponible y en forma total.
Determinar los niveles de plaguicidas y PAHs en agua y sedimentos del lago de Izabal y Río
Dulce.
Determinar la carga de nutrientes y sedimentos de los principales afluentes del lago de
Izabal, Río Dulce y humedales del Biotopo Chocan Machacas, en cuatro muestreos durante
un año.
Determinar los niveles de contaminación bacteriológica en el lago de Izabal y Río Dulce,
en cuatro muestreos durante un año.
Determinar la presencia de organismos de fitoplancton indicadores de contaminación y
eutrofización en el agua del Lago de Izabal y Río dulce.
Informar a los pobladores de las comunidades en el Río Dulce y El Estor, sobre la situación
de la contaminación en el lago de Izabal y Río Dulce, y obtener propuestas de soluciones a
partir de talleres.
Determinar parásitos, colifagos y enterococos en el agua del lago de Izabal y Río Dulce.
Determinar el índice de calidad del agua de Río Dulce y Lago de Izabal, en los diferentes
sitios de muestreo, para evaluar los sitios con mayor deterioro de la calidad del agua y
comparar con los índices obtenidos a partir de resultados de estudios previos.
8
I.3.2 Hipótesis
Ha existido un detrimento en la calidad del agua del Río Dulce y Lago de Izabal, estimada a
partir de índices de calidad que consideran los principales parámetros de calidad del agua,
desde 1991 a la fecha.
9
I.4 METODOLOGIA (Descripción detallada de la Metodología)
I.4.1 Localización
El lago de Izabal cuenta con una extensión de 718 km2 y se localiza entre las coordenadas
15°24'N a 15°38´N y 88°58'W a 89°24' W, a una altitud promedio de 0.8 msnm (Machorro,
1996) y con una profundidad media de 11.9 m, es el mayor lago de Guatemala. Su
principal afluente es el río Polochic que aporta un 70% de sus aguas (Basterrechea, 1993),
encontrándose en su desembocadura los humedales de Bocas del Polochic, los cuales
cumplen la función de sistema de filtración para la contaminación, reduciéndose los niveles
de contaminantes hasta en un 60% (Pérez, 2003). En total, la cuenca constituida por el lago
de Izabal y Río Dulce cuenta con una extensión de 268,956.78 Ha (MAGA, 2001).
Río Dulce fue declarado Parque Nacional por Acuerdo Gubernativo del 26 de mayo de
1955 y delimitado por acuerdo ministerial del 23 de agosto de 1968, siendo su extensión de
aproximadamente 7,200 ha, sin incluir el cuerpo de agua. El río se encuentra en el
municipio de Livingston, departamento de Izabal. Constituye el drenaje natural del Lago
de Izabal hacia el mar Caribe.
I.4.2 Las Variables
I.4.2.1 Variables dependientes
Las variables dependientes son los parámetros de calidad fisicoquímica y bacteriológica del
agua del Lago de Izabal, Río Dulce y humedales del Biotopo Chocón Machacas.
I.4.2.2 Variables Independientes
Las variables independientes son los sitios y los meses de muestreo de agua y sedimentos
en el Lago de Izabal, Río Dulce y humedales del Biotopo Chocón Machacas en el período
2006-2007.
I.4.3 Indicadores
Los indicadores son los niveles de los parámetros de calidad fisicoquímica y bacteriológica
determinados en el presente estudio.
I.4.4 Estrategia Metodológica
I.4.4.1 Población y Muestra
La población del estudio son los sitios en el Lago de Izabal, Río Dulce y humedales del
Biotopo Chocón Machacas, ubicados en las cercanías de poblaciones, ríos y fuentes de
contaminación dispersa y puntual. La muestra está constituida por los 26 sitios
seleccionados para la colecta de agua y sedimentos, y las muestras colectadas en los cuatro
meses de actividades de campo.
10
I.4.5 El Método
Los humedales son ecosistemas que tienen una gran importancia, no solo por su
importancia ecológica, sino también porque poseen un gran valor cultural, económico, y
recreativo. Por esta razón también es de importancia científica, conocer sus características
porque es implescindible para la evaluación y control de su calidad. Para la evaluación y
control de calidad ecológica de un humedal, es de suma importancia la toma de muestras,
tanto para el agua como para otros tipos de muestra. La forma en que las muestras son
obtenidas resulta determinante para obtener la información verídica de las mismas, ya que
cualquier método que se utilice verá limitada su precisión, por la representatividad de las
muestras analizadas. A continuación se describen los métodos utilizados para el
cumplimiento de los objetivos del proyecto:
I.4.5.1 Muestreo
El objetivo de la toma de muestras, es recoger una porción del material que se desea analizar,
suficientemente pequeña para ser transportada adecuadamente y manejada en el laboratorio,
miestras todavía representa fielmente al material muestreado. Esto significa que las porciones
y las concentraciones de cada componente de la muestra deben ser las mismas que en la
muestra original, que la muestra debe ser homogénea y debe ser manipulada de forma tal que
no ocurran cambios significativos antes de su análisis en el laboratorio. Una vez tomada la
muestra, se debe seguir con un protocolo de conservación que permita que las muestras
lleguen sin alteración al laboratorio, por lo que incluye procedimientos generales y partículares
(Andreu, 2002).
Para el presente estudio, las muestras fueron colectadas en 26 sitios de muestreo,
localizados en el lago de Izabal y Río Dulce, y en los humedales del Biotopo Chocón
Machacas. Los muestreos fueron realizados en octubre de 2006, enero y abril de 2007, y
enero de 2008.
I.4.5.2 Toma de muestras de agua y sedimentos:
Se realizaron de acuerdo a los procedimientos estándar de la United States Environmental
Protection Agency –USEPA- y de la American Public Health Association, American Water
Works Association - APHA-AWWA. Las muestras de agua fueron colectadas en recipientes
plásticos de polietileno de alta densidad color blanco, para el análisis de contaminantes
inorgánicos y en recipientes de vidrio color ámbar para los análisis de contaminantes
orgánicos. Las botellas fueron tratadas previamente con ácidos para eliminar cualquier
contaminación de las muestras y transportadas al laboratorio en hieleras para mantener una
temperatura de aproximadamente 4oC.
Se colectaron muestras de 1 y 2 litros dependiendo del análisis para el cual se destinó cada
una. Para análisis inorgánicos se tomaron 3 botellas de un litro y para los análisis orgánicos se
tomó una botella con capacidad de 2 litros.
11
I.4.5.3 Análisis de Parámetros Físicos en el Campo
Los parámetros pH, conductividad, oxígeno disuelto, temperatura fueron medidos en cada
sitio de muestreo, utilizando medidores portátiles. Se midió la transparencia y la profundidad
utilizando un disco de Secchi. Todos los sitios se registraron por medio de un sistema
posicionamiento geográfico (GPS).
I.4.5.4 Análisis de nutrientes (especies de nitrógeno y fósforo)
Se analizaron los niveles de nitrógeno total, de amonio, de nitratos y de nitritos, y de fósforo
total y de o-fosfatos, y sulfatos, según metodología de la American Public Health
Association, American Water Works Association -APHA-AWWA- (1998). Para esto se
utilizaron reactivos específicos para formar compuestos con coloración, para luego ser
analizados por Espectrofotometría Visible. Debido al tiempo transcurrido entre la toma de las
muestras y su análisis de laboratorio, las muestras fueron preservadas siguiendo
procedimientos de APHA-AWWA (1998).
I.4.5.5 Análisis de metales:
Se analizaron los metales tóxicos plomo, cadmio, cromo, mercurio, zinc, cobre y níquel, así
como sodio, calcio, manganeso y hierro por espectrofotometría de absorción atómica de
llama, en el Laboratorio de Radioisótopos del Instituto de Biofísica de la Universidad Federal
de Río de Janeiro, Brasil. Para el análisis de metales en forma disponible se realiza una
digestión suave de 0.2 g de sedimento con ácido clorhídrico. Para el análisis de metales en
forma total, se realiza una digestión total de 0.2 g de sedimento con agua regia (HCl-HNO3),
en bomba de teflón y con calentamiento en un baño de arena (Rezende, 1993).
I.4.5.6 Análisis de Hidrocarburos Aromáticos Policíclicos
Los PAH en agua y sedimentos, fueron extraídos por medio de Extracción en Fase Sólida,
uitilizando cartuchos de C-18, pasando por ellos 1 L de agua o 10 mL de metanol utilizados
para extraer 0.2 g de sedimentos. Posteriormente, las muestras fueron analizadas por
cromatografía de gases con detector de ionización de llama (FID).
I.4.5.7 Medición de sólidos:
Se midireron los sólidos totales, sólidos disueltos, sólidos en suspensión y sólidos
sedimentables, en las muestras de agua de ríos y lagunas. Los procedimientos utilizados
fueron los de la APHA-AWWA en el Standard Methods (1998).
I.4.5.8 Análisis Bacteriológicos y de fitoplancton
Las características biológicas y microbiológicas de las aguas vienen regidas por las
poblaciones que se encuentren en ellas, y que de alguna manera afecten su calidad. Algunos
de los microorganismos presentes pueden dañar la salud, y es por esto que nos interesa saber
cuales microorganismos acuáticos están presentes, ya que pueden ocasionar las llamadas
enfermedades hídricas (Marín, 2003) como disentería, fiebre tifoidea, paratifoidea,
salmonelosis, legionelosis y que pueden producir brotes epidémicos.
12
I.4.5.8.1 Análisis microbiológicos de agua
I.4.5.8.1.1 Toma de muestra para análisis microbiológicos de agua
I.4.5.8.1.1.1 Recipientes
Los recipientes para la colecta de la muestra de agua deben evitar cualquier alteración de la
muestra, deben ser herméticos y resistentes a alteraciones físicas o químicas. Deben estar
perfectamente limpios, enjuagados con agua destilada y estériles. Para esterilizar los
recipientes pueden colocarse en agua hirviendo por 10-15 minutos. También pueden
utilizarse las bolsas pre-esterilizadas especiales (Andreu, 2002; OMS, 1988).
I.4.5.8.1.1.2 Agua de ríos, lagos o reservorios
Se elige y localiza el lugar de donde se desea tomar la muestra, si es necesario se utiliza un
bote o lancha. Cuando se está en el sitio de la toma de muestra, se abre el recipiente y
rápidamente se introduce en el agua contra la corriente. En caso de no haber corriente se
mueve horizontalmente el recipiente. Al terminar de tomar la muestra, se cierra el
recipiente rápidamente y se rotula escribiendo el código de la muestra, el nombre del sitio,
la fecha, la hora de muestreo. Si se observa alguna perturbación o información que se crea
importante para comprender los resultados del análisis de la muestra, estos pueden
escribirse en la hoja de toma de datos del sitio de muestreo.
I.4.5.8.1.1.3 Volumen de muestra
El volumen de la muestra por análisis no debe ser menor de 100 ml, si se desea un análisis
completo el volumen debe ser de por lo menos 500 ml.
I.4.5.8.1.1.4 Transporte y recepción de muestras
Si las muestras no se van a procesar inmediatamente es muy importante que después de 1
hora de colectadas se transporten en condiciones de refrigeración a menos de 10 C.
Un tiempo de 6 horas entre la toma de la muestra y el análisis es aceptable; si esto no es
posible el tiempo máximo es de 24 horas.
Todas las muestras deben estar bien rotuladas al momento de llegar al laboratorio (de
preferencia debe utilizarse un marcador indeleble para evitar que la información se borre
durante el transporte).
I.4.5.8.1.2 Análisis microbiológicos en el laboratorio
I.4.5.8.1.2.1 Materiales y reactivos
- Tubos de vidrio con tapón de rosca
- Cajas de Petri
- Caldo LMX
- Pipetas automáticas para 1 mL, 0.1mL
- Pipetas serológicas para 10 mL
- Pipetor
- Tips estériles
13
I.4.5.8.1.2.2 Procedimiento
Se analizaron coliformes totales, coliformes fecales y Escherichia coli: Método del
Numero Más Probable o Tubos Múltiples modificación con LMX (15 tubos). Las pruebas
se incuban a 37°C por 24 hrs. Los resultados se leen por un cambio de color, reacción
Indol positiva o negativa y presencia o ausencia de fluorescencia. Se leen en una tabla de
número más probable para juegos de 15 tubos.
I.4.5.8.2 Fitoplancton
La presencia de ciertas especies de algas o asociaciones algales en un ambiente específico,
las constituye en indicadores biológicos de las condiciones ambientales existentes y en
cierto momento su distribución y/o crecimiento desordenado puede reflejar cambio o
situaciones positivas o negativas que se están dando en el ecosistema (Herrera, 1999). A
partir del tipo de organismos fitoplanctónicos presentes en un ambiente particular, así como
de su abundancia y densidad, pueden hallarse una serie de índices que permiten determinar
el estado trófico y la calidad del agua (Ramírez, 2000).
Hay seis divisiones algales más representativas de agua dulce, se trata de las siguientes:
Cyanophyta, Euglenophyta, Cryptophyta, Chrysophyta, Pyrrophyta y Chlorophyta. De
estas, existen organismos como Microcystis sp., Anabaena sp., Anacystis sp. que pueden
considerarse como indicadoras de cuerpos de agua contaminados o eutrofizados.
I.4.5.8.2.1 Muestreo
La unidad de muestreo fue una red de fitoplancton de 80 micrómetros de poro (Ramírez,
2000). Debe efectuarse la localización de los sitios de muestreo, la naturaleza física del
agua influye en gran medida en la selección del sitio de muestreo. Al escoger las
estaciones de muestreo es importante tener en cuenta las áreas en las que se ha colectado
anteriormente, ya que esto permitirá hacer comparaciones. Las estaciones de muestreo
deben ser localizadas en un mapa.
Muestras compuestas de 100 L de agua de los sitios de muestreo fueron colectadas con una
cubeta de 10 L y filtradas en la red de fitoplancton. Las muestras se preservaron con lugol
y formalina. Posteriormente se procedió a la identificación de los especímenes encontrados
y al recuento de los mismos en la muestra. Para el efecto se utilizó una cámara de
Sedgwick-Rafter de un mililitro de volumen. Se identificaron con la ayuda del microscopio
y claves dicotómicas diseñadas para la identificación (APHA, 1996).
I.4.5.8.3 Colifagos
Para identificar la ausencia o presencia de este grupo se usó filtración por membrana
utilizando el agar para Enterococos. Se verificó la presencia de estos con pruebas
bioquímicas y serológicas.
14
I.4.5.9 Indice e Calidad del Agua (ICA)
Se utilizó el índice de calidad de agua desarrollado por la Fundación de Sanidad Nacional
(NSF) de los Estados Unidos, (Landwher & Denninger, 1976), en la cual se considera la
siguiente ecuación:
n
ICAm = Σ(Subiwi)
i = 1
donde:
ICA = Índice de calidad del agua
n = número de variables
Sub = ponderación de cada parámetro obtenido de gráficas según el valor de
concentración o desviación del valor medio dados por Landwher &
Denninger, (1976)
i = Subíndices
wi = pesos de importancia asignados a las variables
Los pesos de importancia son los siguientes:
Parámetro Peso de importancia
DBO5 0.10
Coliformes fecales 0.15
% saturación oxígeno disuelto 0.17
Fosfato 0.10
Nitrato 0.10
Desviación de temperatura 0.10
Turbidez 0.08
pH 0.12
Sólidos totales (TS) 0.08
Los valores de cada parámetro están clasificados en gráficas para determinar el valor de
Subi dependiendo del rango em que se encuentre el parámetro determinado.
El valor del ICA, dará el tipo de calidad del agua de acuerdo con la siguiente escala:
Calidad Rango
Excelente 91-100
Buena 71-90
Media 51-70
Mala 26-50
Muy mala 0-25
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I.4.6 La Técnica Estadística
Fue utilizada estadística descriptiva para la determinación de los niveles de contaminantes.
Las determinaciones fueron realizadas por triplicado, utilizando curvas de calibración para
la cuantificación de los contaminantes.
I.4.7 Material general de Muestreo
Para la preparación de un muestreo, resulta de mucha ayuda un listado con el material que
ha de utilizarse en cada una de las tareas específicas. El listado que a continuación se lista
es el material habitual más utilizado en los muestreos realizados en cuerpos de agua:
- Bitácora o libreta de camo
- Formularios para datos de campo
- Permisos, para colecta de muestra, en caso de ser necesarios
- Aparatos de campo
o Potenciómetro
o Conductímetro
o Oxímetro
o Disco de Secchi
- Aparatos de recogida de muestra
o Botella de van Dorn
o Draga
o Red de Fitoplancton
o Cubeta de 10 litros para filtración de agua
- Envases para la toma de muestras (botellas plásticas de 1 litro de capacidad, o
botellas de vidrio Ambar para toma de muestras especiales)
- Baterías para alimentar los aparatos eléctricos
- Cargador de baterías
- Marking tape
- Marcadores permanentes de punta fina (Azul, Rojo, Verde y Negro)
- Conservantes y fijadores para las muestras
o Acido sulfúrico
o Lugol
o Formalina
- Agus destilada, para lavado de material
- Goteros, jeringas, pipetas (para medida de conservantes)
- Filtros de varios tamaños
- Hielera, para almacenamiento de las muestras en condiciones de refrigeración
- Depósito de combustible
- Lazos para amarre
- Capa
- Linterna
- Herramientas varias (navaja)
- Cinta métrica
- Pinzas
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- Guantes de nitrilo, mascarilla y equipo de protección personal
- Papel aluminio
- Bolsas de plástico de varios tamaños
- Lapicero
- Cámara fotográfica
- Reloj de preferencia con cronómetro
- Sistema de Posicionamiento Global (GPS)
- Calculadora
- Teléfono móvil
Equipo utilizado en el laboratorio:
Espectrofotómetro de Absorción Atómica
Espectrofotómetro UV-VIS
Incubadora para DBO
Horno de microondas
Medidor Multiparamétrico
Electrodo para medición de Oxígeno Disuelto
Potenciómetro
Balanza Analítica
Horno de convencción
17
PARTE II
MARCO TEÓRICO
II.1 Eutrofización de cuerpos de agua
El concepto de estado trófico fue introducido originalmente por limnólogos suecos y
alemanes, basándose en dos factores relacionados: la cantidad de producción en las aguas
superficiales y las condiciones en el hipolimnio de las aguas estratificadas (Horne, 1994). La
eutrofización consiste en la superproducción de algas motivadas por incrementos notables de
los niveles de nutrientes, lo cual en el mediano plazo provoca reducciones en los niveles de
oxígeno disuelto en los cuerpos de agua. Esto provoca la muerte de los organismos acuáticos,
de acuerdo con Wetzel (1975), los factores más importantes para que un lago pase de un
estado oligotrófico a uno eutrófico, son el fósforo y el nitrógeno. Wetzel indica que las
razones aproximadas de fósforo, nitrógeno y carbono en tejidos de macrofitas y algas
acuáticas, son las siguientes:
1 P : 7N : 40C por 100 peso seco o
1 P : 7N : 40C por 500 peso húmedo
De esta forma, si cualquiera de dichos elementos estuviera presente en el agua en una
cantidad menor a la que se presentan en dichas razones, sería el elemento limitante. Un
aumento del nivel trófico en un sistema acuático, depende entonces de la cantidad de
alimento disponible. Los seres vivos necesitan de una fuente de nutrientes y de una fuente
energética. La materia orgánica procedente de otros seres vivos, constituye la fuente de
carbono para los organismos heterótrofos (quimioheterótrofos). Cuando la fuente de
alimentos se incrementa a niveles superiores a los naturales, la abundancia de los
organismos puede aumentar, constituyendo esto, una alteración al ecosistema. Los
organismos fotoautótrofos necesitan de nutrientes inorgánicos y de suministro energético,
como nutrientes. Los ejemplos más conocidos son las plantas. Si estos organismos
necesitan de nutrientes inorgánicos, cualquier proceso que aporte cantidades adicionales de
nutrientes a las aguas favorecerá su crecimiento, alterando las condiciones naturales. El
nitrógeno y el fósforo son los elementos inorgánicos necesarios para generalmateria viva
por los organismos autótrofos. Generalmente, estos elementos se encuentran de forma
natural en las aguas de forma bastante reducida (Andreu, 2002).
Tanto la degradación de la materia orgánica como el aporte directo de compuestos con
nitrógeno y fósforo, como aportes por aguas residuales sin tratamiento o depuradas sin
tratamiento terciario, contaminación por el uso de detergentes, o arrastre de fertilizantoes en
los lixiviados de la agricultura y ganadería (provenientes de actividades humanas)
provocarán un aumento de sus concentraciones naturales, alterando la proliferación de las
poblaciones que allí se desarrollan, así como su abundancia (Andreu, 2002).
Son conocidos los impactos negativos de las floraciones de cianobacterias sobre la calidad del
agua, incluyendo problemas de sabor y olor, e interferencia con algunos procesos de
tratamiento del agua como reducción de la capacidad y eficiencia en estos sistemas.
18
Cuando algunas especies de cianobacterias (por ejemplo, Microcystis), alcanzan altas
proporciones, pueden producir toxinas que presentan elevado riesgo para el consumo del agua,
ya que producen toxinas que pueden tener efectos neorológico y hepatotóxico. Estas
floraciones tóxicas se han reportado desde hace más de un siglo, por autores como Francis en
1878 (Carmichael, 1992; Carmichael, 1994).
La actividad humana es responsable del aporte almedio ambiente de muchos productos, que
pueden producir daños ambientales en los humedales. Los productos fitosanitarios como
los plaguicidas y los biocidas, y las sustancias que de ellos derivan, también pueden
producir ciertos efectos letales y crónicos en los seres vivos. Estos efectos pueden ser
potenciados por la bioacumulación y bioconcentración que ocurre a través de la cadena
alimenticia, desde los niveles inferiores hasta los niveles superiores (Andreu, 2002). Los
residuos industriales pueden contener metales ecotóxicos, sustnacias orgánicas y otros
contaminantes que pueden ser arrastrados por las aguas, teniendo como destino final los
cuerpos de agua, por ejemplo descargas a través de ríos, hasta los lagos, como sucede con
el río San Francisco o Quiscab hacia el lago de Atitlán, o el río Polochic hacia el lago de
Izabal, o el río Ixlú hacia el lago Petén Itzá, todos de gran importancia en nuestro país.
Las aguas residuales urbanas pueden y los lixiviados de los vertederos de residuos sólidos
pueden contaminar las aguas, aportando microorganismos patógenos, materia orgánica,
nutrientes y moléculas complejas con potencial efecto perjudicial. Las aguas residuales si
no son tratadas por un sistema terciario de eliminación de nutrientes provocan la
eutrofización de las aguas (Andreu, 2002).
En la actualidad, es mas frecuente el vertido de hidrocarburos, aceites y grasas a los
sistemas acuáticos, en donde al formar una capa superficial sobre el agua, impide que exista
un intercambio de gases entre el agua y la atmósfera, reduciendo así el oxígeno disuelto y
provocando la muerte por asficia de la biota presente (Andreu, 2002).
En algunos casos, los sistemas hídricos han sido utilizados como vertederos, lugares en
donde se abandonan desechos sólidos y también orgánicos (como restos de animales
muertos, pedazos de muebles, escombros, llantas y otros), lo que no solo afecta el entorno
visual, sino que potencialmente contamina el humedal (Andreu, 2002). En Guatemala,
estas acciones son muy comunes en una gran parte de nuestros sistemas hídricos. En una
encuesta efectuada en El Estor, Izabal, en 2004, por el equipo de Investigación GIA, los
pobladores contestaron que creían que el agua no estaba contaminada, a pesar de verter
residuos en ella, porque el agua corría (Oliva, 2004).
Los humedales son lugares que tienen un gran valor ecológico e importancia como reservas
de una gran cantidad de diversidad biológica, además de servir como refugio a los seres
vivos, los cuales incluyen casos de especies endémicas o en peligro de extinción (Andreu,
2002).
19
II.2 Calidad del agua
El concepto de calidad de agua es utilizado para describir las características químicas,
físicas y biológicas del agua. La calidad del agua, se define dependiendo del fin o uso al
cual se destina, por lo que puede tener diferentes significados para diferentes personas. Así,
la calidad del agua para consumo humano o potable, como se le conoce, se define
diferentemente de la calidad del agua de ecosistemas acuáticos. El agua no se puede definir
como agua de buena calidad o agua de mala calidad, por ejemplo el agua utilizada para
riego puede ser de mala calidad para consumo humano. Es por eso que se han creado guías
para los diferentes usos (OMS, 1995).
El hombre utiliza el agua en diferentes actividades de su vida cotidiana, que pueden
nombrarse según los siguientes usos (Marín, 2003):
- Bebida y preparación de alimentos
- Riego agrícola y explotaciones ganaderas
- Industrias: refrigeración, procesos varios
- Navegación y comercio fluvial y/o marírtimo
- Usos deportivos y lúdicos
- Evacuación de vertidos y residuos variados
- Producción hidroeléctrica, termieléctrica, etc
Es importante mencional que por cada cien litros de agua potable, aproximadamente 5 litros
se utilizan directamente como agua de bebida (Marín, 2003).
En el caso del Lago de Izabal y Río Dulce, interesan los estándares para aguas naturales.
Los estándares de calidad del agua se definen en términos de los siguientes parámetros
(Weiner, 2008):
a) Composición química: concentraciones de metales, compuestos orgánicos, cloro,
nitratos, fósforo, sulfatos, amonio, etc.
b) Propiedades físicas y químicas: Temperatura, alcalinidad, conductividad, pH,
oxígeno disuelto, dureza, sólidos disueltos totales, demanda química de oxígeno.
c) Características biológicas: demanda bioquímica de oxígeno, E. coli coniformes
fecales, etc.
d) Radionucleidos: Radio-226, radio-228, uranio, radón, emisiones alfa y beta totales.
En el caso de las aguas naturales, según sea su propósito, existen las siguientes
clasificaciones típicas:
a) Recreacionales:
Clase 1: Contacto primario: que se disponen principalmente para actividades
recreacionales.
Clase 2: Contacto secundario: son aguas superficiales no disponibles para contacto
primario pero si para usos recreacionales como pesca, navegación en lancha, etc.
b) Vida Acuática: aguas superficiales que en el presente soportan los usos de la vida
acuática.
20
Clase 1: Vida acuática de agua fría: Aguas que pueden sostener biota de agua fría (aguas
que no superan los 20ºC).
Clase 2: Vida acuática de agua templada: Estas aguas sostienen una amplia variedad de
biota de agua templada (aguas que normalmente exceden los 20ºC).
Clase 3: Vida acuática de agua frías y templadas: son aguas que no son capaces de
sostener una amplia variedad de biota de agua templada.
c) Para la agricultura: Es el uso que mayor demanda supone a nivel mundial y supone un
70% de los recursos hídricos en el mundo, sin embargo en países en desarrollo puede
llegar a representar un 95% del total del uso del agua.
d) Humedales: Son generalmente tierras planas, que presentan inundaciones permanentes o
intermitentes. Al cubrirse de agua, el suelo se satura, por lo que queda sin oxígeno,
formando un ecosistema híbrido entre un sistema acuático y uno terrestre.
e) Agua subterránea. Para uso doméstico, uso agrícola, protección de la calidad del agua
superficial, potencialmente utilizable, de uso limitado.
II.3 Áreas protegidas ubicadas en la región de estudio
Existen varias áreas protegidas en la región de influencia del Río Dulce y parte oriental del
lago de Izabal, las cuales se ven afectadas por las alteraciones en la calidad del agua de
dichos ecosistemas. Dichas áreas, son las siguientes:
a) Parque Nacional Río Dulce, el cual hasta 1990 estaba constituido por 29 comunidades
con aproximadamente 7,523 habitantes. Los poblados ocupan unos 16 km2. De 45 a 55 %
de la población vive de la pesca, el resto son asalariados en agricultura, construcción,
comercio y turismo.
Se cultiva banano, plátano, mango, zapote, jocote, marañón, cítricos, guanaba y caña de
azúcar. Se utiliza el método de cultivo de tumba y quema, además se utiliza frijol
terciopelo para nitrificar el suelo. La ganadería se da en zonas privadas, ocupando un área
de aproximadamente 15 km2. La deforestación es grande y asciende a 800 Ha anuales.
Amenazas: hay invasión de terrenos en la zona oeste del río. Existen estaciones de
almacenaje de combustible, situadas en la ribera del río Crique Chino, en la desembocadura
del río Dulce. Además, hay un oleoducto subterráneo a la altura del río San Vicente. Hay
una alta tasa de deforestación lo cual ha contribuido a la desaparición de las iguanas
(Barrios, 1995).
b) Reserva Protectora de Manantiales Cerro San Gil: comprende la parte más alta de las
montañas del Mico en Izabal. Para 1987, había 17 comunidades formalmente establecidas.
En esta área se siembra mayormente milpa y la cantidad de actividades ganaderas es
significativa. Puntos turísticos de influencia son Punta de Palma, Las Cascadas y Las
Escobas. Se extrae madera del área (caoba, cedro, Santa María, etc.).
21
Amenazas: la deforestación es masiva y las tierras del estado están siendo velozmente
colonizadas (Barrios, 1995).
c) Biotopo Chocón Machacas: Se encuentra en la ribera del río Chocón en el margen norte
del Golfete, jurisdicción del municipio de Livingston, departamento de Izabal. Existen
cuatro comunidades kekchíes dentro de los límites del Biotopo con una población
aproximada de 200 personas. Si se agrega la población que habita en el área de influencia,
la población total de la región asciende a los 1,500 habitantes. Hay actividades de
agricultura, cultivándose principalmente cacao, arroz, hule, café, piña y maíz. También
existen porciones de bosque de hoja ancha que están siendo degradados rápidamente por la
demanda de leña.
Amenazas: deforestación e invasión ilegal de tierras (Barrios, 1995).
d) Reserva de Vida Silvestre Bocas del Polochic: El Refugio de Vida Silvestre Bocas del
Polochic es administrado por la Fundación Defensores de la Naturaleza y se sitúa en El
Estor, entre las Sierras de Santa Cruz hacia el norte de las Minas al sur, de las que recibe
importantes aportes de agua. Consiste en un área pantanosa, y ocasionalmente de difícil
acceso. Fisiográficamente pertenece a la denominada Depresión de Izabal. La situación
hidrológica es compleja, ya que es la parte más baja y final del curso del río Polochic,
siendo sus ríos más importantes los ríos Polochic y Cahabón. La zona de vida se clasifica
como Bosque Muy Húmedo-Subtropical (Cálido) (Barrios, 1995). En estudios recientes se
ha demostrado que los humedales de Bocas del Polochic tienen un papel muy importante en
la conservación de la integridad ecológica del lago de Izabal, al retener un porcentaje
importante de sólidos y nutrientes (Dix, 1999).
II.4. Contaminación de cuerpos de agua y efectos sobre los organismos vivos
Los metales tóxicos constituyen parte integrante del ambiente y de la materia viva,
ocurriendo naturalmente en pequeñas concentraciones, en el orden de partes por billón a
partes por millón. Entre estos, el zinc, el hierro, el manganeso, el cobre, el cobalto y el
molibdeno destacan por ser esenciales a los organismos, aunque en cantidades mínimas,
pues participan de procesos fisiológicos como la cadena respiratoria (Fe y Cu integran los
citocromos); otros elementos, como el mercurio, el plomo y cadmio, cuando se encuentran
en concentraciones más elevadas pueden causar toxicidad a los organismos (Esteves, 1988).
Se clasifican como metales traza aquellos que pertenecen a la clase B o a la categoría
límite. Estos iones metálicos tienen alta afinidad por moléculas conteniendo átomos de
nitrógeno y azufre, enlazándose con relativa facilidad a proteínas y macromoléculas
celulares. Así, su toxicidad se debe principalmente a su capacidad de interferir en
reacciones enzimáticas (bloqueando, desplazando el ión esencial o modificando la
conformación activa de las biomoléculas como proteínas y enzimas) y también a su baja
movilidad, en virtud de las pequeñas dimensiones y de las cargas dobles y triples (número
de oxidación). Esta movilidad débil hace que se acumulen, modificando profundamente el
metabolismo del organismo (Esteves, 1988).
22
Los metales también pueden enlazarse covalentemente a átomos de carbono en un grupo
orgánico, como el grupo metilo (-CH3), originando los llamados compuestos
organometálicos. Los compuestos organometálicos neutros tienden a ser liposolubles,
propiedad que facilita su movimiento a través de membranas biológicas, permaneciendo
intactos durante ese paso y permitiendo su distribución en esos sistemas. Este proceso
ocurre naturalmente y es responsable por gran parte de la movilidad ambiental de algunos
metales pesados, entre los elementos que presentan formas metiladas en el ambiente,
destacándose el mercurio y el plomo (Esteves, 1988).
Los nutrientes se ven alterados, debido a las descargas de aguas domésticas, al uso de
fertilizantes, a la ganadería, etc. Al incrementarse la concentración de éstos, se ven acelerados
los procesos de eutrofización en los lagos, al darse un crecimiento exagerado en las
poblaciones de algas. Al reducirse los niveles de oxígeno y la transparencia en el agua, se ven
limitadas las condiciones propicias para las especies acuáticas.
Por otra parte, lo hidrocarburos aromáticos policíclicos (PAHs), son generados durante la
combustión incompleta del petróleo y derivados, así como en derrames petroleros, y presentan
niveles de toxicidad elevados, siendo carcinógenos. Estos compuestos son adsorbidos en el
material particulado y acumulados en los sedimentos de cuerpos de agua (Manahan, 1994).
II.5 Parámetros de Calidad del agua
Existen algunas determinaciones que pueden en la mayoría de los casos realizarse en el
sitio, por parte del muestreador, si se dispone de los instrumentos adecuados. La
realización de estas medidas es obligatoria en el caso de algunos parámetros, ya que el
resultado se alterará como consecuencia de la toma y transporte de la muestra. El
instrumental de campo debe mantenerse en buen estado de funcionamiento, por lo que se
debe seguir todas las recomendaciones del fabricante. Los equipos deben calibrarse según
los protocolos y las instrucciones del aparato y se debe comprobar su estado antes de iniciar
una campaña de muestreo. Para la medición de parámetros en ellaboratorio también es
necesario su comprobación y calibración.
Parámetros Químicos
II.5.1 Nitrógeno total
El nitrógeno total está constituido por el nitrógeno que forma parte de los compuestos
presentes en una muestra y que puede ser determinado como tal. La diferencia entre el
nitrógeno total y el nitrógeno de especies inorgánicas constituye el nitrógeno orgánico, el
cual representa una reserva para la conversión a formas más asequibles para la cadena
trófica y por lo mismo, para los procesos de eutrofización de cuerpos de agua. El N
orgánico no contemplado en amoníaco puede convertirse a amoníaco por las bacterias
saprofitas, siendo entonces una fuente energética para bacterias autótrofas (nitrificantes)
que lo transforman en iones nitrito (NO2-) y nitrato (NO3
-) las cuales requieren cantidades
de oxígeno del orden de 4.5 veces más de la concentración que requiere el amoniaco, por lo
que sus efectos sobre el oxígeno disuelto pueden aparecer más tarde, siendo por lo tanto su
detección de interés en los planes de saneamiento. (Colegio de Ingenieros, 1995)
23
II.5.2 Fósforo total
El fósforo total es la suma del fósforo contenido en todas las especies presentes en una
muestra. La diferencia entre el fósforo total y el fósforo de ortofosfatos constituye la
reserva de fósforo que puede ser convertido a su forma más asequible para la cadena
trófica, el ortofosfato, el cual se considera como uno de los principales nutrientes en el agua
y por lo tanto, causante de eutrofización en cuerpos de agua cuando se encuentra en
cantidades grandes. El fósforo en sus diferentes formas produce un incremento del
crecimiento de las algas, ya que es un elemento esencial para crecimiento de plantas y
organismos. Normalmente se encuentra en cantidades limitadas, y por ser un factor
limitante para el crecimiento, es un elemento clave en la mayoría de los procesos de
eutrofización (Colegio de Ingenieros, 1995).
Los contenidos de fósforo total en aguas naturales no contaminadas son del orden de 0.100
mg/L a 1.0 mg/L. Si se producen contaminaciones por desechos urbanos, este valor puede
incrementarse de forma extraordinaria, y alcanzar valores de mas de 15 mg/L, y si se
vierten aguas residuales de industrias cerveceras y mataderos, se pueden llegar a superar
valores de 50 mg/L. Un agua residual urbana contiene aproximadamente un tercio del
contenido en fósforo total correspondeinte a fósforo orgánico (Marín, 2003).
II.5.3 Nitrógeno de amonio
Constituido por el nitrógeno que forma el ión amonio y el amoníaco, existe en la naturaleza
como producto de procesos metabólicos, agrícolas e industriales (OMS, 1995). Este es el
compuesto en más bajo estado de oxidación del elemento, el cual es el destino final de
sustancias orgánicas e inorgánicas ricas en nitrógeno (Marín, 2003).
La concentración en aguas naturales superficiales se encuentra generalmente por debajo de
0.2 mg/l. El amoníaco es considerado como un indicador de la contaminación del agua por
bacterias, aguas residuales o desechos de origen animal. Aunque sus efectos toxicológicos
se observan solamente en exposiciones mayores a 200 mg/Kg de peso corporal, su
presencia puede originar la formación de nitritos y ocasionar problemas de sabor y de olor
en el agua (OMS, 1995).
Las aguas con vertidos residuales domésticos presentan concentraciones de hasta 50 mg/L
de NH3. En lagos y embalses, las concentraciones de amonio presentan una secuencia que
está regida pro la estratificación y la mezcla térmica de la masa de agua. Durante la época
de mezcla vertical y horizontal, la concentración de amonio se mantiene alrededor de 0.2
mg/L, mientras que durante la estratificación, la aguas del fondo del lago, que se
encuentran poco oxigenadas presntan concentraciones mas altas, que se encuentran
alrededor de 1.0 mg/L (Marín 2003).
24
II.5.4 Nitrógeno de nitrato y nitrógeno de nitrito
Las concentraciones de nitratos en aguas naturales son normalmente de unos pocos
miligramos por litro, observándose en algunos lugares incrementos debido a las prácticas
agrícolas con fertilizantes nitrogenados. En cuanto al nitrógeno de nitritos, la OMS ha
propuesto un valor guía para el nitrito de 3 mg/L (OMS, 1995).
El nitrito es una especie poco estable químicamente y su presencia en el agua suele indicar
una contaminación de carácter fecal reciente. En aguas superficiales, la concentración de
nitrito no suele superar los 0.100 mg/L, sin embargo en aguas contaminadas por aguas
residuales urbanas y/o industriales, estos valores pueden ser muy superiores. Desde el punto
de vista fisiológico, los nitritos al igual que los nitratos son tóxicos, debido a que pueden
transformar la hemoglobina de la sangre en metahemoglobina, la cual es incapaz de fijar el
oxígeno y realizar de manera adecuada la respiración celular. Otra de las razones, se debe a
que los nitritos reaccionan dentro del organismo con las aminas y amidas secundarias y
terciarias formando nitrosaminas de alto poder cancerígeno (Marín, 2003).
La presencia de nitratos en las aguas puede proceder de la disolución de rocas y minerales,
así como de la descomposición de material vegetal y animal, de efluentes industriales y del
lixiviado de tierras agrícolas, en donde se utilicen abonos o fertilizandos que contienen a
los nitratos como componentes en sus fórmulas (Marín, 2003).
En general, las aguas naturales no suelen contener mas de 10mg/l de nitratos, y con mucha
frecuencia estos valores no sobrepasan de 1.0 mg/L. Sin embargo, debido al uso abusivo de
los fertilizantes, estos valores se han incrementado notablemente, provocando que muchos
pozos y acuíferos yano se puedan utilizar para consumo humano debido a sus altos
contenidos en nitrstos, los cuales pueden resultar en valores de 50 mg/L, con el respecrtivo
riesgo para la salud humana (Marín, 2003).
Los nitratos también pueden provocar metahemoglobinemia, y producir nitrosaminas, así
como provocar cánceres gástricos (Marín, 2003).
II.5.5 Fósforo de ortofosfato
El fósforo es un elemento esencial para la vida, lo mismo que el carbono, nitrógeno y
azufre, el cual está involucrado en un complejo ciclo bioquímico, que implica el tránsito del
elemento a través de una serie de estados inorgánicos y orgánicos que lo transforman,
generalmente por microorganismos (Marín, 2003).
El fósforo de ortofosfato es la forma asequible del fósforo para intervenir en los procesos
bioquímicos en el agua. Básicamente es el factor limitante de la productividad en cuerpos
de agua, por lo que su evaluación es importante para evaluar los procesos de eutrofización y
contaminación en aguas naturales (Colegio de Ingenieros, 1995). Su provisión en un agua
se agota si no se renueva, ya que no es posible fijarlo desde la atmósfera (Marín, 2003).
Este puede provenir de la disolución de las rocas que lo contienen, del lavado de suelos, en
los que se encuentran como restos de actividades ganaderas y agrícolas, y en aguas
25
residuales domésticas, debido a los detergentes utilizados los cuales contienen
tripolifosfatos, los cuales de hidrolizan dando como producto fosfato monoácido (Marín,
2003).
II.5.6 Sólidos totales
Los sólidos totales son el residuo luego de la evaporación de una muestra de agua y su
posterior secado en un horno a una temperatura definida. Los sólidos totales incluyen los
sólidos suspendidos totales que son los sólidos totales retenidos por un filtro, y los sólidos
disueltos totales que es la porción que pasa por dicho filtro (APHA, 1992).
II.5.7 Sólidos disueltos
Son los sólidos que pasan a través de un filtro con un tamaño de poro de 2.0 micrómetros o
menor, bajo condiciones especificadas. Proporcionan información sobre la cantidad de
sales y otros compuestos solubles (APHA, 1992).
II.5.8 Potencial de hidrógeno (pH)
El pH está relacionado con la acidez o alcalinidad de un vertido. Puede usarse como
controlador de acidez o alcalinidad excesiva. Describe la concentración del ion H+,
representado por el logaritmo de su inversa (Colegio de Ingenieros, 1995). El pH del agua
se debe al equilibrio carbónico y a la actividad de los microorganismos acuáticos. Respecto
al equilibrio carbónico, la disolución de dióxico de carbono en el agua y la disolución de
carbonatos y precipitación de bicarbonatos, alteran drásticamente el pH del agua. La
actividad fotosintética reduce el contenido de CO2, mientras que la respiración de los
organismos heterotróficos produce dióxido de carbono causando el efecto contrario. Otro
factor a considerar es la producción de ácido sulfídrico (H2S) el cual se forma en aguas
poco oxigenadas y con un ambiente fuertemente reductor, o los ácidos húmicos que
provienen de la mineralización de la materia orgánics (Marin, 2003).
El pH tiene una gran importancia en la química del agua, puesto que determina el estado de
disociación en el que se encuentran muchos compuestos, esto puede afectar la vida de los
organismos acuáticos (Marín, 2003).
La medición del pH es útil para determinar la acción corrosiva sobre estructuras de
abastecimiento, distribución, que resultan en adiciones de elementos metálicos al agua
potable (hierro, cadmio, plomo, cinc) tendiendo además a disolver metales (a bajo pH el
agua sabe ácida). Valores extremos de pH o cambios súbitos pueden provocar situaciones
limitantes o acabar con la vida de organismos acuáticos. (Colegio de Ingenieros, 1995)
Extremos en el pH pueden ocasionar la muerte rápida de los peces, alteraciones drásticas en
la flora y la fauna, y reacciones peligrosas secundarias, (p.e. cambios en la solubilidad de
los nutrientes, formación de precipitados, etc.). El pH debe mantenerse dentro de un rango
“normal” para la vida biológica, entre 6.5-8.0 (Reglamento de requisitos mínimos, 1989).
26
En lagos y embalses, el pH experimenta un cambio espacial y temporal que está ligado a la
dinámica térmica y fisicoquímica de un lago, observándose una disminución al lo largo de
la columna del agua. Durante la estratificación de los lagos, y por la producción de CO2 del
fitoplancton, se pueden encontrar valores mucho más altos en la superficie. En las zonas
pobres en oxígeno, y con microorganismos anaerobios, los valores de pH tienden a ser mas
bajos, del orden de 1.0 unidades de pH (Marín, 2003).
Los valores de pH de las aguas residuales pueden variar según su origen, por ejemplo,
aguas residuales domésticas presentan valores inferiores en algunas décimas, al agua
potable de donde provienen. Sin embargo las aguas de vertidos industriales dependerán del
tipo de industria del cual provengan. Las de industrias de minería, metalúrgicas e industrias
químicas tendrán un carácter ácido, mientras que las aguas de minas calcáreas, o aguas de
industrias de bebidas no alcohólicas exhibirán un pH básico (Marín, 2003).
El peligro en el consumo de agua con un pH muy ácido o muy básico, radica en que estos
pueden provocar irritaciones de las mucosas, órganos ingternos e incluso pueden causar
ulceraciones. El efecto asociado del pH es que los valores altos se encuentran asociados
con aguas coloreadas, presencia de olores y sabores, por lo que éstas no son agradables al
consumidor (Marín, 2003).
II.5.9 Oxígeno disuelto (OD)
Cualidad del agua, que en concentraciones apropiadas, es esencial, no sólo para mantener
los organismos vivos, sino también para mantener los niveles de reproducción de especies,
su vigor y desarrollo. La reducción de OD, afecta a la población de peces a través de
retrasos en la suelta de huevos, embriones reducidos en tamaño y vigor, deformaciones en
jóvenes, interferencias con digestión, aceleración de coagulación en la sangre, disminución
de tolerancia a tóxicos, utilización de alimentos, crecimiento y velocidad. Otros
organismos están afectados igualmente; su eliminación total conduce a la muerte. Se
considera que 5 ppm es un valor deseable para un medio adecuado, requiriéndose OD más
elevado para cientos de receptores (Colegio de Ingenieros, 1995).
El oxígeno es un gas muy relevante en la dinámica de las aguas. Su solubilidad, se ve
afectada en función de la temperatura, de la presión y del coeficiente de solubilidad, así
como de la tensión de vapor, la salinidad y la composición fisicoquímica del agua. El
porcentaje de saturación del agua depende de la turbulencia, de la superficie de contacto
entre el gas y el agua, y del contenido salino (Marín, 2003).
Las aguas corrientes superficiales no contaminadas suelen estar bien oxigenadas, y en
algunas ocasiones sobresaturadas, con concentraciones mayores a 7-8 mg/L, debido al
intercambio gaseoso atmósfera-agua (Marin, 2003).
La medición del oxígeno disuelto en el agua puede realizarse directamente en el campo
utilizando para ello un oxímetro, el cual puede consistir en un electrodo de membrana
conectado por un cable de diferente longitud (1 m, 5m, 10m o más) conectado a un
microporcesador. Sin embargo también puede utilizarse el método de Winkler modificado,
que es mucho más sensible que el método anterior; el cual debe fijarse en campo, y realizar
27
la medición final en el laboratorio. Otro tipo de electrodo es el tipo Clark, el cual tiene un
ánodo de plata y un cátodo de oro, unido a un cable, conectado a un medidor digital. Estos
aparatos presentan generalmente precisiones de 0.1 mg/L de oxígeno disuelto en agua.
Estos dispositivos deben calibrarse previo a su uso. La membrana del electrodo debe ser
sustituida cada cierto tiempo y el electrolito interno renovado para asegurar el buen
funcionamiento del electrodo. Estas sondas deben mantenerse en una cámara con agua
destilada o en una cámara de humedad para aumentar la duración de las mismas (Marín,
2003).
II. 5.10 Materia orgánica biodegradable: Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO5)
DBO5 es la cantidad de oxígeno disuelto requerido por los microorganismos para la
oxidación aerobia de la materia orgánica biodegradable presente en el agua. Se mide a los
cinco días. Su valor da idea de la calidad del agua desde el punto de vista de la materia
orgánica presente y permite prever cuanto oxígeno será necesario para la depuración de
esas aguas (Ciencias de la tierra y el medio ambiente).
II.5.11 Materiales oxidables: Demanda Química de Oxígeno (DQO)
Es la cantidad de oxígeno que se necesita para oxidar los materiales contenidos en el agua
con un oxidante químico (normalmente dicromato potásico en medio ácido). Se determina
en tres horas y, en la mayoría de los casos, guarda una buena relación con la DBO por lo
que es de gran utilidad al no necesitar los cinco días de la DBO. Sin embargo la DQO no
diferencia entre materia biodegradable y el resto y no suministra información sobre la
velocidad de degradación en condiciones naturales (Ciencias de la tierra y el medio
ambiente).
II.5.12 Potencial Redox
Esta magnitud mide la capacidad global de un agua de actuar como oxidante o reductor de
sustancias. Un elevado potencial redox tendrá una apreciable cantidad de oxígeno, por lo
que el agua estará rica en compuestos en estado oxidado: por ejemplo hierro y manganeso
en sus estados superiores de oxidación, sulfatos, nitratos, fosfatos y materia orgánica, y en
general, se encontrará fuertemente mineralizada. Cuando el agua presenta bajo potencial
redox, contendrà abundantes compuestos en estado reducido, y muy poca cantidad de
oxígeno, conteniendo sulfuros, amoníaco y materia orgánica difícilmente mineralizable
(Marín, 2003).
El uso del potencial redox en aguas residuales y en los procesos de depuración de las aguas
es muy utilizado, aguas residuales urbanas presentan un potencial redox de 100 mV, aguas
de fosas sépticas y putrefactas con ambientes reductores presentan valore sinferiores a -
40mV. Valores mayores de 25 caracterizan un medio oxidante, entre 15 y 25 corresponden
a un medio aireado de aguas abien oxigenadas, mientras que valores entre 13 y 15 indican
aguas en la zona de transición entre medio aireado y anaerobio. Valores inferiores a 13
ccorresponden a medios reductores.
28
II.513 Parámetros Físicos
II.5.13.1 Color
El color de un agua se debe a las diferentes sustancias coloreadas que sen encuentran en
suspensión o que están disueltas en ella. En aguas naturales, el color proviene de las
diferentes materias orgánicas que proceden de la descomposición de los vegetales, así como
de los diversos productos y metabolitos que se encuentran en ellas (Marín, 2003).
El agua no contaminada suele tener ligeros colores rojizos, pardos, amarillentos o verdosos
debido, principalmente, a los compuestos húmicos, férricos o los pigmentos verdes de las
algas que contienen, también la presencia de hierro y manmganeso produce un cierto color
en el agua, el hierro dando coloraciones rojizas, mientras que le manganeso da coloraciones
oscuras, negras. Si la coloración se debe a cobre, este proveerá una coloración verdosa y
azulada. (Marín, 2003).
Existe una relación entre el color y el pH del agua, a medida que aumenta el valor de pH,
también aumentará el color. El color del agua profunda durante la época de estratificación
es marcadamente màs alto que el del agua superficial (Marín, 2003).
Respecto a las aguas residuales industriales, estas suelen tener coloraciones que van en
relación con las actividades que se desarrollan según estas actividades. Por ejemplo las
fábricas de papel liberan aguas parduzcas debido a la lignina, las aguas de los rastros o
mataderos, descartarán aguas rojizas por la sangre, las lecherías y derivados de lácteos
descartarán aguas de color blancuzco. Las aguas contaminadas pueden tener muy diversos
colores pero, en general, no se pueden establecer relaciones claras entre el color y el tipo de
contaminación. En el caso de aguas fuertemente coloreadas, estas son más resistentes a la
acción desinfectante y oxidante del cloro y otros desinfectantes utilizados para su
tratamiento (Marín, 2003).
II.5.13.2 Temperatura
La temperatura siempre se debe determinar en sitio, para lo cual se puede utilizar un
termómetro de mercurio o si se dispone, preferiblemente un termómetro clásico de sonda,
que permite también determinar el perfil del agua (Andreu, 2002). La temperatura del agua
se establece por la absorción de radiación en la capas superiores, la cual afecta a las aguas
profundas, la cual experimenta una secuencia que se caracteriza por un periodo de mezcla
térmica, en la que la temperatura es similar en todo el perfil; y la estratificación térmica, en
donde las aguas más cálidas se encuentran en la superficie y las más frías en el fondo,
evitando una mezcla vertical de dichas capas (; Marín, 2003).
El aumento de temperatura disminuye la solubilidad de gases (oxígeno) y aumenta, en
general, la de las sales. Aumenta la velocidad de las reacciones del metabolismo,
acelerando la putrefacción. Desde el punto de vista humano, la temperatura óptima del agua
para beber está entre 12 y 16ºC (Marín, 2003).
La temperatura de un efluente a un cauce natural puede afectar drásticamente su biología y
su microbiología, lo que puede producir cambios drásticos en las poblaciones de bacterias y
29
organismos. Los Efluentes industriales que vierten aguas con elevadas temperaturas son
industrias alimenticias como cervecerías, conservas, fábricas de papel, industrias químicas,
centrales nucleares, térmicas y otras industrias contribuyen a la contaminación térmica de
las aguas, a veces de forma importante (Marín, 2003).
Según la dinámica en el comportamiento de la temperatura del agua en los lagos, estos
pueden clasificarse según estos cambios (Marín, 2003):
a) Amícticos: son los que no presentan cambios apreciables en el perfil del lago. Son
los lagos que se encuentran en latitudes polares y se caracterizan por tener una capa
de hielo en su superficie y una temperatura baja y constante en su interior.
b) Monomícticos fríos: son los que presentan una temperatura inferior a los 4 grados
Celsius, incluso durante la estación cálida. Durante la estación fría presentan una
capa de hielo sobre su superficie.
c) Monomícticos calientes: Son los que presentan temperaturas superiores a los cuatro
grados Celsius tanto en la superficie como en su interior. Tienen un periodo de
estratificación térmica en verano y otro de circulación durante la época fría.
d) Dimícticos: Son los que presentan dos periodos de estratificación térmica. Estos
son los ocurren durante los periodos de verano e invierno.
e) Oligomícticos: son los presentan siempre agua caliente a cualquier profundidad, y
periodos de circulación térmica muy raros. Generalmente se trata de lagos de zonas
tropicales.
f) Polimícticos: son los lagos con verios períodos de circulación térmica distribuidos a
lo largo del año. Son lagos de regiones intertropicales.
II.5.13.3 Conductividad
La conductividad eléctrica del agua permite determinar de modo aproximado, la salinidad
del agua, ya que la resistencia del agua al paso de la corriente elèctric a depende de la
concentración y tipo de iones disueltos, así como de tu temperatura (Andreu, 2002). El
agua pura tiene una conductividad eléctrica muy baja. El agua natural tiene iones en
disolución y su conductividad es mayor y proporcional a la cantidad y características de
esos electrolitos. Por esto se usan los valores de conductividad como índice aproximado de
concentración de solutos. Como la temperatura modifica la conductividad las medidas se
deben hacer a 20ºC. Un agua no contaminada, cumple con un valor de residuo seco, en
mg/L, entre 0.5 y 1.0 veces el valor de la conductividad, expresada en uS/cm (Marín,
2003).
La conductividad dependerá entonces de la disolución de rocas y materiales del terreno o
suelo con el que tenga contacto, y el tipo de sales presentes, el tiempo de disolución,
temperatura, gases disueltos, pH, y todos los factores que puedan afectar la solubilidad de
un soluto. Durante el periodo de mezcla de los lagos este valor de conductividad suele ser
mas bajo que durante el periodo de estratificación térmica, y las aguas anóxicas del fondo
pueden presentar valores más elevados de conductividad que las de la superficie. Un agua
residual puede presentar valores de conductividad mucho mas elevados, hasta un orden de
magnitud, por ejemplo aguas de industrias metalúrgicas, papeleras y vertidos no tratados de
rastros o mataderos (Marín, 2003).
30
II.5.13.4 Transparencia del agua
La presencia de partículas en suspensión y de sustancias disueltas en el agua, hace que la
medida que la luz penetra hacia capas más profundas, sea cada vez menor. Cuando existe
una mayor concentración de nutrientes en un sistema acuático, esto puede provocar un
mayor crecimiento de fitoplancton. En consecuencia, un mayor grado de eutrofización y un
descenso en la transparencia del agua, debido a la mayor abundancia del fitoplancton, que
absorbe o refleja la luz. El descenso en la transparencia también puede deberse a la
suspensión de sedimentos o de materiales en suspensión de origen alóctono (Andreu, 2002).
La transparencia debe medirse in situ, para lo cual existen dos métodos (Andreu, 2002):
- Cuantómetro o radiómetro: en donde se mide la cantidad de luz que llega a una
profundidad determinada de la masa de agua. Para calculas esta medida se utilizan
sensores subacuáticos que detectan la rtadiación fotosintética activa (PAR), los
cuales están conectados a un medidor.
- Disco de Secchi: en donde se introduce en el agua un disco de PVC pintado de
blanco o con cuadrantes. Este disco debe tener unos 20 cm de diámetro, con un
contrapeso para facilitar su hundimiento, y evitar que lo arrastren las corrientes de
agua. Este disco se engancha a un cable y se baja hasta que deja de verse, se anota
la profundidad que corresponde a Ds. Esta medida permite hacer un cálculo del
coeficiente de extinción (µ = 1.7/Ds). Este factor puede variar dependiendo del
sistema que se estè estudiando. Otra manera de hacerlo es sacando de nuevo el
disco Secchi para tomar una nueva medida de su profundidad y repetir esto varias
veces.
II.5.14 Contaminantes traza
Los contaminantes traza de importancia en el campo de la salud se definen como aquellos
cuyos estándares para el agua potable son generalmente de 1mg/L o menos. El plomo fue
el primer contaminante en trazas sometido a investigación debido al frecuente uso de
conectores de tubería construidos por este material. El zinc y el cobre fueron cuestionados
debido al uso de sales de cobre para el control de algas. Otros contaminantes pasan a través
de las cadenas alimenticias naturales a los humanos, especialmente por el consumo de
pescado (Sawyer el al. 2000).
II.5.15 Hidrocarburos Aromáticos Policíclicos (PAH)
En vista de las actividades de exploración y explotación petrolera que se realizan en la
región a estudiar, la determinación de la contaminación por hidrocarburos es importante, ya
que son contaminantes que aparte de presentar niveles de toxicidad, forman una película
superficial en los cuerpos de agua que dificulta los procesos de intercambio de oxígeno.
31
II.5.16 Microorganismos indicadores de Contaminación Microbiológica
a. Definición: Son microorganismos utilizados para evaluar las condiciones del agua,
contaminación fecal, presencia de patógenos potenciales o microorganismos deteriorantes,
condiciones sanitarias de procesamiento de un cuerpo de agua (Hurst, et.al, 1997).
b. Microorganismos indicadores
1. Coliformes Totales (Generales)
2. Coliformes Fecales
3. Escherichia coli
4. Otros
c. Coliformes (Totales, Generales)
Son bacilos (forma alargada o de bastón) Gram-negativo (se tiñen de rojo al utilizar la
tinción de Gram), aerobios (algunos crecen en presencia de oxígeno) y anaerobios
facultativos (algunos pueden crecer en presencia o ausencia de oxígeno).
Fuentes
Origen fecal y no fecal, suelo contaminado con heces, cuerpos de agua contaminados con
aguas residuales de origen domiciliar o industrial, etc.
d. Coliformes fecales
Son bacilos (forma alargada o de bastón) Gram-negativos (se tiñen de color rojo al utilizar
la tinción de Gram), falcultativos crecen a una temperatura de 44.5 C.
Fuentes
Son relativamente específicos para material fecal de humanos, mamíferos, insectos, aguas
residuales (servidas o negras) utilizadas para riego, entre otras.
e. Escherichia coli
La presencia de este microorganismo en el agua o ambiente, es indicativo de la
contaminación fecal de la muestra analizada.
Fuentes
Hombres y animales, suelo y aguas contaminadas con heces fecales, aguas residuales
utilizadas para riego de vegetales, entre otras.
II.5.17 Fitoplancton
Al conjunto de microorganismos que flotan en un agua natural se le llama plancton, el cual
incluye al zooplancton (plancton animal) y fitoplancton (plancton vegetal). Los principales
tipos de algas que se encuentran presentes en países templados son: diatomeas, las cuales se
presentan durante la época de primavera; clorofitas, que se hacen presentes durante el
verano; y cianofíceas durante el otoño. Algunos organismos de fitoplancton son
32
indicadores de eutrofización de cuerpos de agua, como especies de los géneros Anabaena
sp., Microcystis sp. y Lyngbya sp. (Roldán Pérez, 1992).
Dentro de las cianobacterias toxicas más comunes se encuentran especies pertenecientes a
los géneros Microcystis y Lyngbia las cuales han mostrado tener efectos tóxicos sobre los
vertebrados (Kujbida et al., 2009; Smith et al., 2008). El Cuadro 40 en anexos brinda
información sobre los principales organismos de fitoplancton encontrados en el presente
estudio.
La muestra se debe recoger directamente, sin filtración previa, en un recipiente de vidrio
preferentemente de color topacio. Para el muestreo en aguas superficiales puede rellenarse
el recipiente de manera directa sumergiéndolo unos 20 a 25 cms por debajo de la superficie.
Cuando se desee tomar muestras de profundidad, esto deberá realizarso con una botella
hidrográfica. El volumen a muestrear dependerá de la abundancia del fitoplancton, la cual
se puede estimar a groso modo observando la transparencia y la intensidad de color verde
del agua. Para aguas oligotróficas y /o pobres en plancton es necesario colectar hasta 5
litros de agua, aunque por regla general suele ser suficiente con una muestra de 0.25 – 0.5
L. En este estudio se realizó una variante, debido a que el algunas muestras tomadas en
otros estudios, se filtraton por una red para fitoplancton de 80 micrómetros 100 litros de
agua.
33
PARTE III
III.1 RESULTADOS
III.1.1 Localización de sitios de muestreo.
Tabla 1. Ubicación de los sitios de muestreo (medidos con GPS)
Latitud Longitud
1 Nombre Norte Oeste
2 Entrada del Golfete 15º 42.120 88º 55.367
3 Puntarenas 15º 44.144 88º 55.512
4 Centro del Golfete 15º 43.237 88º 53.608
5 Río Bonito 15º 42.438 88º 52.851
6 Río Chocón 15º 44.987 88º 52.441
7 Black Creek 15º 46.407 88º 52.395
8 Río Cáliz 15º 46.916 88º 52.358
9 Lagunita Salvador 15º 47.318 88º 51.569
10 Creek Jute 15º 47.280 88º 50.425
11 Salida del Golfete 15º 46.630 88º 49.336
12 Río Lámpara 15º 46.246 88º 47.973
13 Torno de la Virgen 15º 47.452 88º 46.310
14 Livingston 15º 49.323 88º 44.831
15 Camelias 15º 40.359 88º 57.606
16 Oleoducto 15º 40.258 88º 58.851
17 Fronteras, Puente 15º 39.400 88º 59.933
18 Centro del Lago 15º 30.364 88º 12.740
19 El Estor 15º 31.314 88º 20.039
20 Exmibal 15º 30.251 88º 22.391
21 Bocas Sur 15º 28.861 88º 22.002
22 Bocas Norte 15º 28.875 88º 22.275
23 Río Oscuro 15º 22.254 88º 20.252
24 Aldea Izabalito 15º 24.395 88º 08.259
25 Mariscos 15º 25.728 88º 04.777
26 Río San Marcos 15º 34.608 88º 00.055
27 Castillo de San Felipe 15º 38.148 88º 59.599
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
Figura 1. Sitios de muestreo ubicados en el Lago de Izabal y en Río Dulce. Imagen modificada de Google.
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
35
Figura 2. Sitios de muestreo ubicados en el Río Dulce. Imagen modificada de Google.
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
36
F
Figura 3. Sitios de muestreo ubicados en el Lago de Izabal. Imagen modificada de Google.
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
III.1.2 Parámetros fisicoquímicos de campo
Tabla 2. Potencial de Hidrógeno, pH, medido en 26 sitios de muestreo unibados en el
Lago de Izabal y Río Dulce.
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 7.86 7.15 7.05 6.66 7.18
2 Puntarenas 7.27 7.15 NM NM 7.21
3 Centro del Golfete 7.30 7.56 7.84 6.89 7.40
4 Río Bonito 7.49 7.65 8.06 7.40 7.65
5 Río Chocón 7.40 7.65 7.63 6.17 7.21
6 Black Creek 7.31 7.12 7.90 6.55 7.22
7 Río Cáliz 7.26 7.00 8.04 6.26 7.14
8 Lagunita Salvador 7.36 7.16 8.15 6.11 7.20
9 Creek Jute 7.71 7.51 8.04 6.31 7.39
10 Salida del Golfete 7.84 8.24 8.01 6.46 7.64
11 Río Lámpara 7.13 7.54 7.69 6.24 7.15
12 Torno de la Virgen 7.92 7.54 8.02 6.84 7.58
13 Livingston 7.50 7.39 8.02 5.21 7.03
14 Camelias 7.82 7.52 7.63 6.23 7.30
15 Oleoducto 7.52 7.51 7.95 5.98 7.24
16 Fronteras, Puente 8.10 7.97 8.01 5.80 7.47
17 Centro del Lago 8.43 8.28 8.26 7.32 8.07
18 El Estor 8.33 7.95 8.22 6.58 7.77
19 Exmibal 8.19 8.03 8.19 7.05 7.87
20 Bocas Sur 8.02 7.81 7.93 7.26 7.76
21 Bocas Norte 8.06 7.22 7.94 7.31 7.63
22 Río Oscuro 7.19 6.85 7.18 6.63 6.96
23 Aldea Izabalito 8.30 7.89 8.16 7.11 7.87
24 Mariscos 8.21 8.14 8.02 7.17 7.89
25 Río San Marcos 7.36 6.90 7.29 7.31 7.22
26 Castillo de San Felipe 8.30 8.21 8.08 7.11 7.93
Promedio 7.74 7.57 7.89 6.64 7.46
NM: No medido.
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
38
Tabla 3. Potencial de Oxido Reducción, medido en 26 sitios de muestreo ubicados en
Río Dulce y Lago de Izabal.
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete -58.2 -8.4 -2.1 23.6 -11.3
2 Puntarenas -23.7 -8.4 NM NM -16.1
3 Centro del Golfete -25.6 -32.3 -41.8 13.1 -21.7
4 Río Bonito -36.2 -37.5 -54.1 -30.1 -39.5
5 Río Chocón -30.0 -37.5 -29.9 22.2 -18.8
6 Black Creek -25.0 -6.9 -44.8 26.1 -12.7
7 Río Cáliz -23.0 -0.2 -53.9 44.8 -8.1
8 Lagunita Salvador -28.0 -9.0 -58.4 54.9 -10.1
9 Creek Jute -49.0 -29.7 -53.2 40.2 -22.9
10 Salida del Golfete -58.3 -72.3 -51.3 28.7 -38.3
11 Río Lámpara -16.1 -31.6 -33.2 44.0 -9.2
12 Torno de la Virgen -62.0 -31.2 -51.8 25.7 -29.8
13 Livingston -61.0 -22.9 -51.8 122.2 -3.4
14 Camelias -56.0 -41.0 -30.0 43.3 -20.9
15 Oleoducto -39.0 -40.0 -48.0 53.7 -18.3
16 Fronteras, Puente -72.0 -68.0 -51.5 81.1 -27.6
17 Centro del Lago -90.9 -63.4 -65.7 -18.7 -59.7
18 El Estor 85.4 -61.6 -63.2 24.4 -3.8
19 Exmibal -77.6 -65.5 -61.5 -4.2 -52.2
20 Bocas Sur -67.0 -53.4 -47.1 -15.3 -45.7
21 Bocas Norte -70.0 -19.9 -47.1 -17.8 -38.7
22 Río Oscuro -19.0 0.4 -4.0 47.7 6.3
23 Aldea Izabalito -85.0 -58.5 -61.2 -8.9 -53.4
24 Mariscos -72.0 -73.0 -54.8 -12.5 -53.1
25 Río San Marcos -40.0 12.0 -10.2 -19.0 -14.3
26 Castillo de San Felipe -85.0 -76.5 -55.3 -6.7 -55.9
Promedio -45.5 -36.0 -45.0 22.5 -26.1
NM: No medido.
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
39
Tabla 4. Temperatura del agua, medida en 26 sitios de muestreo ubicados en Río
Dulce y Lago de Izabal.
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 30.3 26.3 30.4 27.4 28.6
2 Puntarenas 30.0 26.3 31.5 NM 29.3
3 Centro del Golfete 30.6 25.8 30.5 28.3 28.8
4 Río Bonito 24.6 22.2 24.5 22.7 23.5
5 Río Chocón 29.5 24.6 31.1 27.7 28.2
6 Black Creek 29.2 24.2 33.5 28.2 28.8
7 Río Cáliz 30.2 25.4 32.4 29.0 29.3
8 Lagunita Salvador 29.8 26.2 31.5 27.0 28.6
9 Creek Jute 30.7 24.3 31.1 27.9 28.5
10 Salida del Golfete 30.3 26.8 30.4 27.0 28.6
11 Río Lámpara 30.4 25.6 31.1 27.3 28.6
12 Torno de la Virgen 30.3 26.2 30.5 27.1 28.5
13 Livingston 30.5 26.3 31.1 26.7 28.7
14 Camelias 30.3 25.8 29.8 25.3 27.8
15 Oleoducto 30.0 26.0 29.8 24.7 27.6
16 Fronteras, Puente 30.4 26.1 29.2 24.6 27.6
17 Centro del Lago 30.4 25.8 29.3 27.3 28.2
18 El Estor 31.1 26.4 30.1 24.4 28.0
19 Exmibal 31.6 25.5 31.3 25.9 28.6
20 Bocas Sur 25.1 22.6 29.3 24.3 25.3
21 Bocas Norte 25.1 22.1 29.4 24.2 25.2
22 Río Oscuro 26.8 23.6 29.0 24.7 26.0
23 Aldea Izabalito 32.5 26.4 30.3 27.0 29.1
24 Mariscos 32.2 26.6 29.9 26.9 28.9
25 Río San Marcos 30.0 24.6 30.1 28.9 28.4
26 Castillo de San Felipe 30.8 26.3 29.3 25.7 28.0
Promedio 29.7 25.3 30.2 26.4 27.9
NM: No muestreado
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
40
Tabla 5. Oxígeno Disuelto (mg/L), medido en agua superficial de 26 sitios de
muestreo ubicados en el Lago de Izabal y Río Dulce.
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 6.3 7.0 7.3 7.1 6.9
2 Puntarenas 5.9 NM 6.6 NM 6.2
3 Centro del Golfete 6.3 NM 6.7 7.8 6.9
4 Río Bonito 8.2 NM 8.1 7.9 8.1
5 Río Chocón 5.3 NM 6.1 7.5 6.3
6 Black Creek 6.0 NM 7.7 6.9 6.9
7 Río Cáliz 5.2 NM 7.7 6.8 6.6
8 Lagunita Salvador 4.9 NM 7.9 7.2 6.7
9 Creek Jute 6.5 NM 6.9 7.5 7.0
10 Salida del Golfete 6.9 NM 7.3 7.5 7.2
11 Río Lámpara 6.2 NM 6.5 6.5 6.4
12 Torno de la Virgen 6.2 NM 7.3 6.4 6.6
13 Livingston 7.2 NM 6.6 6.4 6.7
14 Camelias 6.3 5.2 7.0 6.7 6.3
15 Oleoducto 6.3 9.8 6.9 6.2 7.3
16 Fronteras, Puente 6.6 NM 6.2 5.7 6.2
17 Centro del Lago 7.3 6.3 6.6 6.4 6.7
18 El Estor 7.4 5.9 6.4 6.9 6.7
19 Exmibal 7.3 6.1 6.3 5.5 6.3
20 Bocas Sur 7.0 4.8 6.1 7.1 6.3
21 Bocas Norte 6.9 3.8 6.1 6.0 5.7
22 Río Oscuro 2.0 0.5 1.8 2.5 1.7
23 Aldea Izabalito 7.3 5.7 6.6 5.4 6.3
24 Mariscos 7.1 5.4 6.6 4.4 5.9
25 Río San Marcos 5.4 2.7 3.9 6.2 4.5
26 Castillo de San Felipe 7.2 5.5 6.8 6.9 6.6
Promedio 6.4 5.3 6.5 6.5 6.2
NM: No medido.
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
41
Tabla 6. Oxígeno Disuelto (% de saturación), medido en agua superficial, en 26
sitios de muestreo ubicados en el Lago de Izabal y Río Dulce.
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 83.0 84.9 96.1 88.5 88.1
2 Puntarenas 78.9 NM 85.6 NM 82.3
3 Centro del Golfete 83.6 NM 90.2 98.8 90.9
4 Río Bonito 97.2 NM 97.0 93.5 95.9
5 Río Chocón 69.4 NM 82.1 95.1 82.2
6 Black Creek 78.5 NM 107.3 89.3 91.7
7 Río Cáliz 70.0 NM 105.8 88.9 88.2
8 Lagunita Salvador 65.5 NM 106.4 90.8 87.6
9 Creek Jute 87.1 NM 92.3 96.2 91.9
10 Salida del Golfete 91.7 NM 96.7 93.5 94.0
11 Río Lámpara 82.1 NM 86.1 82.2 83.5
12 Torno de la Virgen 82.9 NM 96.5 81.2 86.9
13 Livingston 91.5 NM 90.2 79.4 87.0
14 Camelias 83.4 63.4 91.7 81.2 79.9
15 Oleoducto 82.1 120.8 92.6 74.3 92.5
16 Fronteras, Puente 88.7 NM 81.2 67.8 79.2
17 Centro del Lago 97.2 78.3 85.7 80.7 85.5
18 El Estor 98.7 71.0 84.9 79.3 83.5
19 Exmibal 98.2 74.1 85.3 67.0 81.2
20 Bocas Sur 84.8 53.8 80.5 84.9 76.0
21 Bocas Norte 84.7 43.1 78.9 71.5 69.6
22 Río Oscuro 25.6 7.1 23.8 30.1 21.7
23 Aldea Izabalito 100.4 64.7 88.9 67.4 80.4
24 Mariscos 96.5 67.0 86.9 54.6 76.3
25 Río San Marcos 73.8 31.7 48.1 81.1 58.7
26 Castillo de San Felipe 96.6 67.7 88.5 84.7 84.4
Promedio 83.5 63.7 86.5 80.1 78.4
NM: No muestreado.
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
42
Tabla 7. Conductividad del agua en Río Dulce y Lago de Izabal (uS/cm)
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 198.90 38.20 225.00 127.50 147.40
2 Puntarenas 198.20 33.70 297.00 176.30
3 Centro del Golfete 201.00 38.60 832.00 323.00 348.65
4 Río Bonito 270.00 46.00 304.00 174.80 198.70
5 Río Chocón 41.50 40.40 569.00 261.00 227.98
6 Black Creek 23.90 22.80 266.00 72.00 96.18
7 Río Cáliz 29.50 27.10 444.00 111.30 152.98
8 Lagunita Salvador 31.20 20.20 632.00 156.90 210.08
9 Creek Jute 43.30 52.50 1409.00 338.00 460.70
10 Salida del Golfete 213.00 38.90 1204.00 309.00 441.23
11 Río Lámpara 206.00 54.70 1939.00 370.00 642.43
12 Torno de la Virgen 210.00 40.50 4430.00 1185.00 1466.38
13 Livingston 232.00 50.70 12300.00 3160.00 3935.68
14 Camelias 41.90 38.10 216.00 124.80 105.20
15 Oleoducto 41.80 38.20 213.00 123.50 104.13
16 Fronteras, Puente 198.30 38.00 210.00 122.30 142.15
17 Centro del Lago 197.60 39.60 50.00 125.60 103.20
18 El Estor 217.00 42.10 37.70 129.90 106.68
19 Exmibal 216.00 43.40 39.10 128.90 106.85
20 Bocas Sur 239.00 42.50 50.10 166.40 124.50
21 Bocas Norte 239.00 42.50 50.10 166.50 124.53
22 Río Oscuro 172.50 28.60 26.60 83.80 77.88
23 Aldea Izabalito 202.00 37.40 37.00 123.20 99.90
24 Mariscos 203.00 39.70 37.10 124.00 100.95
25 Río San Marcos 203.00 20.30 36.40 122.10 95.45
26 Castillo de San Felipe 198.90 38.30 37.00 121.40 98.90
Promedio 164.17 38.19 995.81 330.04 382.05
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
43
Tabla 8. Salinidad en partes por mil
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 0.0 0.0 0.1 0.1 0.1
2 Puntarenas 0.0 0.0 0.1 0.0
3 Centro del Golfete 0.0 0.0 0.4 0.2 0.2
4 Río Bonito 0.0 0.0 0.1 0.1 0.1
5 Río Chocón 0.0 0.0 0.3 0.1 0.1
6 Black Creek 0.0 0.0 0.1 0.0 0.0
7 Río Cáliz 0.0 0.0 0.2 0.0 0.1
8 Lagunita Salvador 0.0 0.0 0.3 0.1 0.1
9 Creek Jute 0.0 0.0 0.7 0.2 0.2
10 Salida del Golfete 0.0 0.0 0.6 0.1 0.2
11 Río Lámpara 0.0 0.0 1.0 0.2 0.3
12 Torno de la Virgen 0.0 0.0 2.4 0.6 0.8
13 Livingston 0.0 0.0 7.0 1.6 2.2
14 Camelias 0.0 0.0 0.1 0.1 0.1
15 Oleoducto 0.0 0.1 0.1 0.1
16 Fronteras, Puente 0.0 0.0 0.1 0.1 0.1
17 Centro del Lago 0.0 0.0 0.3 0.1 0.1
18 El Estor 0.0 0.0 0.3 0.1 0.1
19 Eximibal 0.0 0.0 0.3 0.1 0.1
20 Bocas Sur 0.0 0.0 0.4 0.1 0.1
21 Bocas Norte 0.0 0.0 0.4 0.1 0.1
22 Río Oscuro 0.0 0.0 0.0 0.0 0.0
23 Aldea Izabalito 0.0 0.0 0.0 0.1 0.0
24 Mariscos 0.0 0.0 0.0 0.1 0.0
25 Río San Marcos 0.0 0.0 0.0 0.1 0.0
26
Castillo de San
Felipe 0.0 0.0 0.0 0.1 0.0
Promedio 0 0.0 0.6 0.2 0.2
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
44
Tabla 9. Sólidos disueltos totales (TDS) en mg/L
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 176.0 36.0 107.8 60.7 95.1
2 Puntarenas 175.0 33.0 142.8 116.9
3 Centro del Golfete 178.0 37.0 407.0 155.3 194.3
4 Río Bonito 263.0 44.0 146.2 83.5 134.2
5 Río Chocón 37.0 39.0 276.0 125.5 119.4
6 Black Creek 21.0 22.0 127.5 34.0 51.1
7 Río Cáliz 27.0 25.0 106.7 52.9 52.9
8 Lagunita Salvador 28.0 19.0 307.0 74.9 107.2
9 Creek Jute 38.0 49.0 699.0 162.6 237.2
10 Salida del Golfete 186.0 38.0 594.0 148.5 241.6
11 Río Lámpara 183.0 52.0 973.0 178.2 346.6
12 Torno de la Virgen 186.0 40.0 2310.0 584.0 780.0
13 Livingston 201.0 50.0 6810.0 1621.0 2170.5
14 Camelias 37.0 37.0 103.2 59.4 59.2
15 Oleoducto 37.0 37.0 102.1 58.7 58.7
16 Fronteras, Puente 175.0 36.0 100.5 58.2 92.4
17 Centro del Lago 175.0 39.0 2620.0 59.7 723.4
18 El Estor 189.0 41.0 2640.0 61.8 733.0
19 Exmibal 188.0 42.0 2750.0 61.3 760.3
20 Bocas Sur 229.0 42.0 3520.0 79.5 967.6
21 Bocas Norte 229.0 42.0 52.0 79.5 100.6
22 Río Oscuro 161.0 28.0 29.0 39.6 64.4
23 Aldea Izabalito 173.0 36.0 39.0 58.6 76.7
24 Mariscos 175.0 38.0 39.0 59.0 77.8
25 Río San Marcos 87.0 20.0 37.0 58.1 50.5
26 Castillo de San Felipe 175.0 37.0 39.0 57.8 77.2
Promedio 143.4 36.9 964.5 162.9 326.9
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
45
Tabla 10. Profundidad en metros en el Río Dulce y Lago de Izabal
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 4.5 4.40 2.79 3.81 3.88
2 Puntarenas 3.32 3.13 3.00 3.15
3 Centro del Golfete 4.25 4.05 4.00 3.98 4.07
4 Río Bonito 1.04 0.96 0.70 0.95 0.91
5 Río Chocón 10 11.00 10.00 10.35 10.34
6 Black Creek 3.91 3.57 3.60 3.20 3.57
7 Río Cáliz 1.8 1.80 1.60 1.38 1.65
8 Lagunita Salvador 3.1 2.96 2.92 2.90 2.97
9 Creek Jute 3.12 2.92 2.90 2.81 2.94
10 Salida del Golfete 4.43 3.97 4.07 3.15 3.91
11 Río Lámpara 3.5 4.25 3.90 4.18 3.96
12 Torno de la Virgen 28.6 31.00 30.00 27.43 29.26
13 Livingston 5.54 2.26 2.00 1.92 2.93
14 Camelias 2.19 3.00 2.00 1.88 2.27
15 Oleoducto 2.58 3.64 3.30 1.79 2.83
16 Fronteras, Puente 15 10.00 12.80 14.50 13.08
17 Centro del Lago 15.08 15.00 20.00 15.24 16.33
18 El Estor 8.92 3.06 4.12 4.87 5.24
19 Exmibal 3.25 2.98 3.21 2.80 3.06
20 Bocas Sur 5.5 5.45 5.84 6.40 5.80
21 Bocas Norte 3.83 3.89 3.96 3.89
22 Río Oscuro 5.28 5.00 3.00 4.57 4.46
23 Aldea Izabalito 2.94 2.29 2.10 2.07 2.35
24 Mariscos 3.5 1.83 2.70 2.16 2.55
25 Río San Marcos 87 0.50 0.35 0.27 22.03
26 Castillo de San Felipe 4.72 3.15 9.70 10.36 6.98
Promedio 9.3228 5.23 5.56 5.48 6.40
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
46
Tabla 11. Visibilidad en metros
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 2.50 1.00 1.65 1.30 1.61
2 Puntarenas 1.38 1.38 0.90 1.22
3 Centro del Golfete 2.00 1.52 1.26 1.55 1.58
4 Río Bonito 1.04 0.40 0.70 0.95 0.77
5 Río Chocón 1.93 0.30 1.00 1.05 1.07
6 Black Creek 1.30 0.32 0.90 1.09 0.90
7 Río Cáliz 1.71 1.25 1.00 1.08 1.26
8 Lagunita Salvador 1.90 1.40 1.29 0.98 1.39
9 Creek Jute 1.90 1.62 2.10 1.37 1.75
10 Salida del Golfete 2.15 1.00 2.00 1.32 1.62
11 Río Lámpara 2.12 1.05 1.30 1.20 1.42
12 Torno de la Virgen 1.46 1.16 3.00 2.40 2.01
13 Livingston 2.26 1.16 1.35 1.92 1.67
14 Camelias 2.00 2.00 1.88 1.96
15 Oleoducto 2.50 1.82 1.60 1.97
16 Fronteras, Puente 3.64 2.73 1.66 2.68
17 Centro del Lago 3.72 2.00 1.64 2.00 2.34
18 El Estor 2.42 2.18 1.31 1.75 1.92
19 Exmibal 1.50 0.96 0.40 0.81 0.92
20 Bocas Sur 0.22 0.20 0.90 0.78 0.53
21 Bocas Norte 0.14 0.31 1.00 0.58 0.51
22 Río Oscuro 1.61 2.00 1.10 1.70 1.60
23 Aldea Izabalito 2.14 1.75 1.40 1.71 1.75
24 Mariscos 3.00 1.16 2.00 1.25 1.85
25 Río San Marcos 0.50 0.10 0.35 0.27 0.31
26 Castillo de San Felipe 3.07 1.75 1.68 1.90 2.10
Promedio 1.93 1.13 1.41 1.36 1.46
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
47
Tabla 12. Color del agua en Río Dulce y Lago de Izabal
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08
1 Entrada del Golfete Verde musgo Verde musgo Verde claro Verde
2 Puntarenas Verde musgo Verde musgo Verde
3 Centro del Golfete Verde musgo Verde musgo Verde musgo Verde
4 Río Bonito Verde Café Incolora Verde musgo
5 Río Chocón Café Café Verde musgo Verde
6 Black Creek Café oscuro Café Café Café
7 Río Cáliz Café Café oscuro Café claro Café oscuro
8 Lagunita Salvador Café Café oscuro Café claro Café oscuro
9 Creek Jute Verde Verde claro Verde claro Verde
10 Salida del Golfete Verde musgo Verde Verde Verde claro
11 Río Lámpara Verde musgo Café
12 Torno de la Virgen Verde musgo Verde musgo Verde oscuro Verde
13 Livingston Verde musgo Verde musgo Verde musgo Verde
14 Camelias Verde musgo Verde Verde Verde
15 Oleoducto Verde musgo Verde Verde Verde
16 Fronteras, Puente Verde Verde Verde
17 Centro del Lago Verde claro Verde oscuro Verde musgo Verde
18 El Estor Verde musgo Verde oscuro Verde musgo Verde oscuro
19 Exmibal Verde musgo Verde musgo Verde musgo Verde
20 Bocas Sur Café Café Verde Verde claro
21 Bocas Norte Café Café Verde Verde claro
22 Río Oscuro Café Café oscuro Café oscuro Café
23 Aldea Izabalito Verde musgo Verde musgo Verde claro Verde musgo
24 Mariscos Verde Verde musgo Verde claro Verde musgo
25 Río San Marcos Café Café Café Café
26 Castillo de San Felipe Verde musgo Verde Verde esmeralda Verde oscuro
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
48
Tabla 13. Temperatura Ambiente
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 26.70 23.50 32.40 32.00 28.65
2 Puntarenas 27.70 24.60 31.30 27.87
3 Centro del Golfete 29.10 24.80 30.70 28.50 28.28
4 Río Bonito 29.40 25.90 32.10 27.90 28.83
5 Río Chocón 30.00 25.20 30.90 29.80 28.98
6 Black Creek 34.10 24.60 30.90 29.10 29.68
7 Río Cáliz 33.40 25.70 31.60 30.30 30.25
8 Lagunita Salvador 31.00 26.40 31.70 29.60 29.68
9 Creek Jute 31.50 25.70 31.40 29.50 29.53
10 Salida del Golfete 31.20 25.50 31.10 28.80 29.15
11 Río Lámpara 31.70 25.90 31.60 29.60 29.70
12 Torno de la Virgen 35.00 27.10 31.60 28.60 30.58
13 Livingston 30.50 27.70 31.90 27.00 29.28
14 Camelias 32.00 22.30 28.50 27.60 27.60
15 Oleoducto 28.80 23.50 28.20 26.70 26.80
16 Fronteras, Puente 22.90 28.90 25.70 25.83
17 Centro del Lago 30.10 24.70 28.50 32.80 29.03
18 El Estor 29.70 25.10 28.30 23.40 26.63
19 Exmibal 30.50 24.30 28.00 23.80 26.65
20 Bocas Sur 32.40 23.60 28.60 30.30 28.73
21 Bocas Norte 33.20 23.50 29.10 28.70 28.63
22 Río Oscuro 31.00 21.80 28.90 26.40 27.03
23 Aldea Izabalito 31.10 24.00 28.70 25.80 27.40
24 Mariscos 30.20 25.00 28.80 25.60 27.40
25 Río San Marcos 29.50 23.80 29.10 28.30 27.68
26 Castillo de San Felipe 29.60 23.00 28.90 29.10 27.65
Promedio 30.776 24.62 30.07 28.20 28.41
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
49
Tabla 14. Porcentaje de Humedad
No. Nombre Octubre 06 Enero 07 Abril 07 Enero 08 Promedio
1 Entrada del Golfete 90 96 57 63 77
2 Puntarenas 92 98 57 82
3 Centro del Golfete 85 97 64 70 79
4 Río Bonito 83 90 63 73 77
5 Río Chocón 85 92 68 68 78
6 Black Creek 71 98 66 67 76
7 Río Cáliz 64 98 66 59 72
8 Lagunita Salvador 67 91 61 67 72
9 Creek Jute 74 98 65 66 76
10 Salida del Golfete 80 96 65 67 77
11 Río Lámpara 74 95 60 67 74
12 Torno de la Virgen 68 88 63 65 71
13 Livingston 78 84 67 76 76
14 Camelias 63 98 77 74 78
15 Oleoducto 86 98 80 81 86
16 Fronteras, Puente 96 76 78 83
17 Centro del Lago 72 91 78 54 74
18 El Estor 81 89 83 93 87
19 Exmibal 77 90 81 87 84
20 Bocas Sur 66 94 78 58 74
21 Bocas Norte 71 98 76 65 78
22 Río Oscuro 65 98 73 68 76
23 Aldea Izabalito 69 91 80 67 77
24 Mariscos 72 85 78 69 76
25 Río San Marcos 85 95 76 68 81
26 Castillo de San Felipe 85 96 75 61 79
Promedio 76 94 71 69 77
Fuente: Datos de campo, Proyecto FODECYT 25-2006.
50
III.1.3 Nutrientes
Tabla 15. Nitrógeno de Nitritos (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce.
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada Golfete 0.0015 0.0009 0.0015 0.0020 0.0015
2 Puntarenas 0.0018 0.0008 0.0019 0.0015
3 Centro del Golfete 0.0013 0.0010 0.0015 0.0013 0.0013
4 Río Bonito 0.0019 0.0025 0.0011 0.0010 0.0016
5 Río Chocón 0.0017 0.0087 0.0024 0.0018 0.0037
6 Black Creek 0.0054 0.0092 0.0025 0.0021 0.0048
7 Río Cáliz 0.0027 0.0016 0.0028 0.0021 0.0023
8 Lagunita Salvador 0.0070 0.0010 0.0022 0.0017 0.0030
9 Creek Jute 0.0013 0.0012 0.0014 0.0014 0.0013
10 Salida Golfete 0.0011 0.0008 0.0015 0.0014 0.0012
11 Río Lámpara 0.0024 0.0025 0.0027 0.0026 0.0026
12 Torno de la Virgen 0.0024 0.0015 0.0019 0.0013 0.0018
13 Livingston 0.0018 0.0017 0.0025 0.0013 0.0018
14 Camelias 0.0032 0.0017 0.0012 0.0021 0.0021
15 Oleoducto 0.0039 0.0034 0.0016 0.0024 0.0028
16 Puente 0.0027 0.0016 0.0010 0.0047 0.0025
17 Centro Lago 0.0057 0.0013 0.0013 0.0008 0.0023
18 El Estor 0.0044 0.0021 0.0015 0.0022 0.0026
19 Exmibal 0.0073 0.0034 0.0045 0.0019 0.0043
20 Bocas Sur 0.0022 0.0050 0.0037 0.0037 0.0037
21 Bocas Norte 0.0027 0.0043 0.0034 0.0035 0.0035
22 Río Oscuro 0.0023 0.0031 0.0041 0.0023 0.0030
23 Aldea Izabal 0.0047 0.0025 0.0014 0.0016 0.0026
24 Mariscos 0.0037 0.0020 0.0016 0.0012 0.0021
25 Río San Marcos 0.0034 0.0169 0.0059 0.0093 0.0089
26 Castillo 0.0022 0.0018 0.0011 0.0015 0.0017
Promedio 0.0031 0.0032 0.0022 0.0023 0.0027
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
51
Tabla 16. Nitrógeno de Nitratos (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce.
Muestreo 1 Muestreo 2
Muestreo
3 Muestreo 4
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada Golfete 0.0245 0.0149 0.0179 0.0670 0.0311
2 Puntarenas 0.0278 0.0388 0.1879 0.0849
3 Centro del Golfete 0.0171 0.0200 0.1592 0.0389 0.0588
4 Río Bonito 0.0180 0.0393 0.1483 0.0352 0.0602
5 Río Chocón 0.0297 0.0167 0.1734 0.1121 0.0830
6 Black Creek 0.1198 0.0352 0.1973 0.1571 0.1273
7 Río Cáliz 0.1138 0.0185 0.1784 0.1852 0.1240
8 Lagunita Salvador 0.1296 0.0174 0.1529 0.2058 0.1264
9 Creek Jute 0.0377 0.0334 0.1893 0.1702 0.1076
10 Salida Golfete 0.0434 0.0179 0.1942 0.1983 0.1135
11 Río Lámpara 0.0319 0.0158 0.2233 0.3671 0.1595
12 Torno de la Virgen 0.0229 0.0138 0.1822 0.1402 0.0898
13 Livingston 0.0530 0.0228 0.2025 0.1589 0.1093
14 Camelias 0.0221 0.0158 0.1603 0.1927 0.0977
15 Oleoducto 0.1017 0.0127 0.1261 0.1552 0.0989
16 Puente 0.1058 0.0148 0.1299 0.5922 0.2107
17 El Estor 0.1058 0.0184 0.1775 0.1965 0.1246
18 Exmibal 0.1116 0.0177 0.2260 0.4234 0.1947
19 Bocas Sur 0.0451 0.0280 0.3987 0.7891 0.3152
20 Bocas Norte 0.1099 0.0723 0.2597 0.8735 0.3289
21 Río Oscuro 0.0442 0.0198 0.2036 0.7085 0.2440
22 Aldea Izabal 0.1001 0.0144 0.1740 0.2302 0.1297
23 Mariscos 0.0336 0.0408 0.1351 0.2827 0.1231
24 Centro Lago 0.1294 0.0100 0.1206 0.0633 0.0808
25 Río San Marcos 0.0733 0.0467 0.2279 0.7441 0.2730
26 Castillo 0.1061 0.0157 0.2430 0.4815 0.2116
Promedio 0.0676 0.0243 0.1842 0.3028 0.1447
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
52
Tabla 17. Nitrógeno Total (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce.
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada Golfete 0.0434 0.6153 NM NM 0.33
2 Puntarenas 0.0556 0.7595 NM NM 0.41
3 Centro del Golfete 0.0379 0.2633 NM NM 0.15
4 Río Bonito 0.0432 0.7564 NM NM 0.40
5 Río Chocón 0.0440 0.7645 NM NM 0.40
6 Black Creek 0.2089 0.7371 NM NM 0.47
7 Río Cáliz 0.1965 0.5874 NM NM 0.39
8 Lagunita Salvador 0.2222 0.6324 NM NM 0.43
9 Creek Jute 0.0606 0.5633 NM NM 0.31
10 Salida Golfete 0.0796 0.9534 NM NM 0.52
11 Río Lámpara 0.0639 0.6429 NM NM 0.35
12 Torno de la Virgen 0.0481 0.5437 NM NM 0.30
13 Livingston 0.0730 0.3153 NM NM 0.19
14 Centro Lago 0.1932 0.3131 NM NM 0.25
15 El Estor 0.2014 0.3374 NM NM 0.27
16 Centro Lago 0.1932 0.3857 NM NM 0.29
17 El Estor 0.2014 0.4487 NM NM 0.33
18 Exmibal 0.2075 0.5111 NM NM 0.36
19 Bocas Sur 0.0481 0.3283 NM NM 0.19
20 Bocas Norte 0.2313 0.4879 NM NM 0.36
21 Río Oscuro 0.1037 0.6656 NM NM 0.38
22 Aldea Izabal 0.2354 0.8937 NM NM 0.56
23 Mariscos 0.0506 0.3611 NM NM 0.21
24 Río San Marcos 0.1871 0.3763 NM NM 0.28
25 Castillo 0.2202 0.6117 NM NM 0.42
26 Puente 0.1782 0.5404 NM NM 0.36
Promedio 0.1262 0.5537 NM NM 0.06
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
53
Tabla 18. Fósforo de Ortofosfatos (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce.
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4 Promedio
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008
1 Entrada Golfete 0.0172 0.0133 0.0181 0.0448 0.0234
2 Puntarenas 0.0204 0.0079 0.0188 N.M. 0.0157
3 Centro del Golfete 0.0142 0.0075 0.0344 0.0449 0.0252
4 Río Bonito 0.0175 0.0275 0.0182 0.0456 0.0272
5 Río Chocón 0.0148 0.0262 0.0185 0.0470 0.0266
6 Black Creek 0.0582 0.0240 0.0290 0.0446 0.0389
7 Río Cáliz 0.0295 0.0077 0.0270 0.0463 0.0276
8 Lagunita Salvador 0.0568 0.0056 0.0473 0.0460 0.0389
9 Creek Jute 0.0176 0.0039 0.0187 0.0473 0.0219
10 Salida Golfete 0.0151 0.0158 0.0219 0.0490 0.0255
11 Río Lámpara 0.0171 0.0022 0.0251 0.0497 0.0235
12 Torno de la Virgen 0.0151 0.0060 0.0224 0.0491 0.0232
13 Livingston 0.0179 0.0113 0.0228 0.0501 0.0255
14 Camelias 0.2250 0.0063 0.0261 0.0499 0.0768
15 Oleoducto 0.2540 0.0009 0.0224 0.0493 0.0817
16 Puente 0.0318 0.0019 0.0359 0.0496 0.0298
17 Centro Lago 0.5890 0.0022 0.0279 0.0530 0.1680
18 El Estor 0.0141 0.0047 0.0260 0.0500 0.0237
19 Exmibal 0.0525 0.0066 0.0317 0.0553 0.0365
20 Bocas Sur 0.0276 0.0217 0.0241 0.0652 0.0346
21 Bocas Norte 0.0310 0.0243 0.0232 0.0655 0.0360
22 Río Oscuro 0.0497 0.0157 0.0236 0.0561 0.0363
23 Aldea Izabal 0.0497 0.0008 0.0268 0.0521 0.0324
24 Mariscos 0.0460 0.0026 0.0355 0.0520 0.0340
25 Río San Marcos 0.0342 0.0745 0.0351 0.0733 0.0543
26 Castillo 0.0165 0.0035 0.0355 0.0538 0.0273
Promedio 0.0666 0.0125 0.0268 0.0516 0.0394
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
54
Tabla 19. Fósfoto Total (mg/L) en el Lago de Izabal y Río Dulce
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4 Promedio
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008
1 Entrada Golfete 0.2122 0.1170 NM NM 0.165
2 Puntarenas 0.1818 0.0928 NM NM 0.137
3 Centro del Golfete 0.1562 0.1117 NM NM 0.134
4 Río Bonito 0.1791 0.1571 NM NM 0.168
5 Río Chocón 0.1294 0.1985 NM NM 0.164
6 Black Creek 0.2175 0.1126 NM NM 0.165
7 Río Cáliz 0.2372 0.0620 NM NM 0.150
8 Lagunita Salvador 0.2496 0.0364 NM NM 0.143
9 Creek Jute 0.1598 0.0910 NM NM 0.125
10 Salida Golfete 0.1990 0.0712 NM NM 0.135
11 Río Lámpara 0.1959 0.1091 NM NM 0.152
12 Torno de la Virgen 0.1928 0.1139 NM NM 0.153
13 Livingston 0.2117 0.1236 NM NM 0.168
14 Centro Lago 0.3395 0.0937 NM NM 0.217
15 El Estor 0.2100 0.1126 NM NM 0.161
16 Exmibal 0.2272 0.0831 NM NM 0.083
17 Bocas Sur 0.1637 0.1963 NM NM 0.180
18 Bocas Norte 0.2153 0.2020 NM NM 0.209
19 Río Oscuro 0.2505 0.1139 NM NM 0.182
20 Aldea Izabal 0.2020 0.1042 NM NM 0.153
21 Mariscos 0.2395 0.1505 NM NM 0.195
22 Río San Marcos 0.2589 0.8223 NM NM 0.541
23 Castillo 0.1545 0.1805 NM NM 0.167
24 Camelias 0.1906 0.1430 NM NM 0.143
25 Oleoducto 0.2139 0.1360 NM NM 0.136
26 Puente 0.2404 0.0976 NM NM 0.098
Promedio 0.2088 0.1474 NM NM
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
55
III.1.4 Otros parámetros fisicoquímicos
Tabla 20. Sulfatos en Río Dulce y Lago de Izabal en mg/L
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada Golfete 50.91 30.62 NM NM 40.8
2 Puntarenas 73.55 37.11 NM NM 55.3
3 Centro del Golfete 76.95 34.51 NM NM 55.7
4 Río Bonito 52.05 51.39 NM NM 51.7
5 Río Chocón 42.42 118.88 NM NM 80.7
6 Black Creek 48.08 99.41 NM NM 73.7
7 Río Cáliz 55.44 46.84 NM NM 51.1
8 Lagunita Salvador 49.22 44.90 NM NM 47.1
9 Creek Jute 58.84 37.76 NM NM 48.3
10 Salida Golfete 83.17 39.05 NM NM 61.1
11 Río Lámpara 71.29 39.05 NM NM 55.2
12 Torno de la Virgen 53.18 47.49 NM NM 50.3
13 Livingston 53.18 62.42 NM NM 57.8
14 Centro Lago 50.91 40.35 NM NM 45.6
15 El Estor 47.52 37.76 NM NM 42.6
16 Exmibal 47.52 51.39 NM NM 49.5
17 Bocas Sur 44.36 114.34 NM NM 79.4
18 Bocas Norte 52.29 128.62 NM NM 90.5
19 Río Oscuro 40.16 30.62 NM NM 35.4
20 Aldea Izabal 54.87 37.11 NM NM 46.0
21 Mariscos 70.16 41.00 NM NM 55.6
22 Río San Marcos 65.63 285.03 NM NM 175.3
23 Castillo 63.93 NM NM NM 63.9
24 Camelias 49.78 49.44 NM NM 49.6
25 Oleoducto 53.74 479.74 NM NM 266.7
26 Puente 71.29 32.56 NM NM 51.9
Promedio 56.47 65.44 NM NM
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
56
Tabla 21. Demanda Química de Oxígeno (DQO) en los sitios de muestreo en el Lago de
Izabal y Río Dulce
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada Golfete 20.0 0.0 3.3 3.7 6.8
2 Puntarenas 19.0 25.2 2.3 15.5
3 Centro del Golfete 21.0 0.0 3.7 4.5 7.3
4 Río Bonito 18.0 0.0 0.0 0.0 4.5
5 Río Chocón 14.0 0.0 5.3 5.0 6.1
6 Black Creek 33.0 2.0 19.7 13.8 17.1
7 Río Cáliz 25.0 6.7 22.3 15.3 17.3
8 Lagunita Salvador 37.0 9.3 15.0 12.7 18.5
9 Creek Jute 15.0 3.0 9.3 6.5 8.5
10 Salida Golfete 17.0 8.0 8.3 9.3 10.7
11 Río Lámpara 13.0 2.0 9.7 30.0 13.7
12 Torno de la Virgen 14.0 2.7 13.0 29.2 14.7
13 Livingston 20.0 0.8 27.0 39.5 21.8
14 Camelias 20.0 3.2 3.3 24.0 12.6
15 Oleoducto 3.0 2.3 4.3 11.3 5.3
16 Puente 32.0 2.0 1.7 18.0 13.4
17 El Estor 30.0 0.0 2.3 21.8 13.5
18 Exmibal 26.0 1.8 6.3 5.5 9.9
19 Bocas Sur 26.0 2.2 0.3 2.2 7.7
20 Bocas Norte 24.0 2.5 1.3 2.3 7.5
21 Río Oscuro 27.0 0.0 7.3 7.5 10.5
22 Aldea Izabal 29.0 0.7 0.0 10.8 10.1
23 Mariscos 24.0 0.7 1.3 10.2 9.0
24 Centro del Lago 29.0 0.0 2.7 7.0 9.7
25 Río San Marcos 26.0 29.7 6.3 4.2 16.5
26 Castillo 24.0 0.5 2.3 4.5 7.8
Promedio 22.5 4.1 7.1 12.6 11.6
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
57
Tabla 22. Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO) en mg/L en el Lago de Izabal y Río
Dulce
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Número Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada Golfete 0.60 0.90 0.96 BLD 0.82
2 Puntarenas 0.75 0.95 0.34 BLD 0.51
3 Centro del Golfete 0.75 0.77 0.62 BLD 0.71
4 Río Bonito 0.75 1.10 1.55 0.74 1.03
5 Río Chocón 0.75 1.35 0.63 1.47 1.05
6 Black Creek 1.50 1.76 2.81 2.02
7 Río Cáliz 1.05 1.44 2.58 0.74 1.45
8 Lagunita Salvador 1.20 1.46 0.99 BLD 1.22
9 Creek Jute 0.60 0.92 0.95 BLD 0.82
10 Salida Golfete 0.90 0.71 0.50 8.83 2.73
11 Río Lámpara 0.75 1.34 0.72 BLD 0.94
12 Torno de la Virgen 0.60 1.01 0.48 BLD 0.70
13 Livingston 0.90 0.90 0.03 0.74 0.64
14 Camelias 0.75 1.17 0.49 BLD 0.60
15 Oleoducto 1.80 0.80 0.74 BLD 0.83
16 Puente 0.90 0.59 BLD BLD 0.49
17 Centro Lago 1.05 1.05 0.68 BLD 0.69
18 El Estor 0.00 0.72 0.72 BLD 0.48
19 Exmibal 1.35 0.83 1.43 2.21 1.45
20 Bocas Sur 0.90 0.90 1.04 BLD 0.95
21 Bocas Norte 1.35 1.56 1.08 BLD 1.00
22 Río Oscuro 0.90 1.46 5.33 BLD 2.56
23 Aldea Izabal 0.75 1.05 1.07 0.74 0.90
24 Mariscos 0.90 0.89 0.63 BLD 0.81
25 Río San Marcos 1.05 2.33 1.05 BLD 1.11
26 Castillo 0.75 1.04 -0.20 0.74 0.58
Promedio 0.91 1.11 1.03 BLD 1.02
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
58
III.1.5 Sólidos
Tabla 23. Sólidos Suspendidos en el Lago de Izabal y Río Dulce (mg/L)
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
No. Nombre
1 Entrada Golfete 2 7 NM 4 4
2 Puntarenas 6 3 NM 0 3
3 Centro Golfete 5 4 NM 3 4
4 Río Bonito 3 25 NM 2 10
5 Río Chocón 3 25 NM 6 11
6 Río Black Creek 3 17 NM 2 7
7 Río Caliz Final 2 3 NM 3 3
8 Lagunita Salvador 2 2 NM 3 2
9 Río Creek Jute 1 4 NM 3 3
10 Salida Golfete 2 3 NM 4 3
11 Río Lámpara 2 4 NM 3 3
12 Torno de la Virgen 3 13 NM 5 7
13 Livingston 1 11 NM 20 11
14 Camelias 14 9 NM 4 9
15 Oleoducto 2 4 NM 4 3
16 Puente 1 2 NM 3 2
17 El Estor 2 1 NM 3 2
18 Exmibal 16 5 NM 6 9
19 Bocas Sur 126 45 NM 13 61
20 Bocar Norte 145 54 NM 16 72
21 Río Oscuro 15 2 NM 2 6
22 Aldea Izabal 7 1 NM 2 3
23 Mariscos 1 4 NM 7 4
24 Centro del Lago 1 1 NM 8 3
25 Río San Marcos 13 335 NM 24 124
26 Castillo 1 0 NM 1 1
Promedio 14 22 NM 5.8 12
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
59
Tabla 24. Sólidos Disueltos en el Lago de Izabal y Río Dulce (mg/L)
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
No. Nombre Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada Golfete 139 409 NM 43 197
2 Puntarenas 130 92 NM 0 74
3 Centro Golfete 126 113 NM 228 156
4 Río Bonito 184 128 NM 90 134
5 Río Chocón 126 115 NM 225 155
6 Río Black Creek 120 83 NM 42 82
7 Río Caliz Final 100 76 NM 63 80
8 Lagunita Salvador 100 66 NM 32 66
9 Río Creek Jute 121 125 NM 185 144
10 Salida Golfete 129 109 NM 220 153
11 Río Lámpara 128 155 NM 225 169
12 Torno de la Virgen 122 118 NM 1024 421
13 Livingston 131 150 NM 2868 1050
14 Camelias 131 117 NM 70 106
15 Oleoducto 161 116 NM 27 101
16 Puente 115 74 NM 25 71
17 El Estor 123 120 NM 83 109
18 Exmibal 85 120 NM 79 95
19 Bocas Sur 151 128 NM 78 119
20 Bocar Norte 155 135 NM 149 146
21 Río Oscuro 111 201 NM 72 128
22 Aldea Izabal 107 137.3 NM 104 116
23 Mariscos 127 115 NM 113 118
24 Centro del Lago 119 112 NM 106 112
25 Río San Marcos 118 74 NM 116 103
26 Castillo 117 0 NM 120 79
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
60
Tabla 25. Sólidos Totales en el Lago de Izabal y Río Dulce (mg/L)
Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4 Promedio
Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008
Muestra
1 Entrada Golfete 112 165 181 109 142
2 Puntarenas 119 96 193 0 102
3 Centro Golfete 107 114 484 312 254
4 Río Bonito 163 131 233 144 168
5 Río Chocón 103 149 356 270 220
6 Río Black Creek 114 203 193 66 144
7 Río Caliz Final 76 198 290 92 164
8 Lagunita Salvador 85 123 351 127 172
9 Río Creek Jute 106 95 758 301 315
10 Salida Golfete 115 148 693 268 306
11 Río Lámpara 106 142 1054 280 396
12 Torno de la Virgen 122 90 2408 1111 933
13 Livingston 119 64 7382 3259 2706
14 Camelias 124 115 247 115 150
15 Oleoducto 121 181 0 89 98
16 Puente 98 141 0 94 83
17 El Estor 100 128 0 125 88
18 Exmibal 74 114 0 115 76
19 Bocas Sur 293 84 0 122 125
20 Bocar Norte 290 61 0 162 128
21 Río Oscuro 108 89 0 179 94
22 Aldea Izabal 111 96 0 93 75
23 Mariscos 91 132 0 119 85
24 Centro del Lago 104 118 0 122 86
25 Río San Marcos 113 194 0 137 111
26 Castillo 110 114 0 123 87
Promedio 122 126 570 305 281
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
61
III.1.6 Resultados Microbiológicos
Tabla 26. Recuento Total de Bacterias Anaeróbicas (RAP) en UFC / ml
No. Sitio Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008 Promedio
1 Entrada del Golfete 300 5700 24000 500 7625
2 Centro del Golfete 400 400
3 Río Bonito 7500 7500
4 Río Chocón 450 12700 15000 5000 8288
5 Black Creek 140 140
6 Río Caliz 1000 1000
7 Lagunita Salvador 6500 6500
8 Creek Jute 5000 5000
9 Salida del Golfete 200 930 200 5000 1582.5
10 Río Lámpara 4500 4500
11 Torno de la Virgen 14500 2100 4000 6867
12 Livingston 850 3600 33000 8700 11538
13 Camelias 2600 7800 5200
14 Oleoducto 2500 2500
15 Puente 3900 3900
16 Centro del Lago 50 50
17 El Estor 6500 6500
18 Exmibal 7100 7100
19 Bocas Sur 5500 5500
20 Bocas Norte 290 290
21 Río Oscuro 6000 6000
22 Aldea Izabalito 2200 2200
23 Mariscos 50 2800 1425
24 Río San Marcos 3500 3500
25 Castillo de San Felipe 500 56 31000 700 8064
Promedio 2431 4181 17867 3878 4527
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
62
Tabla 27. Recuento de coliformes Totales en UFC / mL
No. Sitio Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008
1 Entrada del Golfete 8300 10 130 120 NMP/ 100 ml
2 Centro del Golfete 210 NMP/ 100 ml
3 Río Bonito >2400 NMP/ 100 ml
4 Río Chocón 7200 20 2100 1100 NMP/ 100 ml
5 Black Creek 20
6 Río Caliz 150 NMP/ 100 ml
7 Lagunita Salvador 2400 NMP/ 100 ml
8 Creek Jute 1100NMP/ 100 ml
9 Salida del Golfete 3000 20 600 >2400 NMP/ 100 ml
10 Río Lámpara 1100
11 Torno de la Virgen 8000 < 2 810
12 Livingston 9000 40 160 1100 NMP/ 100 ml
13 Camelias 6700 >2400 NMP/ 100 ml
14 Oleoducto 1100 NMP / 100 mL
15 Puente 1100 NMP/ 100 ml
16 Centro del Lago 7
17 El Estor >2400 NMP/ 100 ml
18 Exmibal >2400 NMP/ 100 ml
19 Bocas Sur 1100 NMP / 100 mL
20 Bocas Norte 120
21 Río Oscuro >2400 NMP/ 100 ml
22 Aldea Izabalito 210 NMP/ 100 ml
23 Mariscos 1500 210 NMP/ 100 ml
24 Río San Marcos 460 NMP/ 100 ml
25 Castillo de San Felipe 11000 < 2 950 120 NMP/ 100 ml
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
63
Tabla 28. Recuento de Coliformes Fecales UFC / ml
No. Sitio Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008
1 Entrada del Golfete 2200 < 2 40 64 NMP/ 100ml
2 Centro del Golfete 43 NMP/ 100ml
3 Río Bonito 2400 NMP/ 100ml
4 Río Chocón 200 < 2 70 460 NMP/ 100 ml
5 Black Creek < 3 NMP/ 100 ml
6 Río Caliz 75 NMP/ 100ml
7 Lagunita Salvador 460 NMP/ 100 ml
8 Creek Jute 150NMP/ 100ml
9 Salida del Golfete 100 < 2 40 2400 NMP/ 100ml
10 Río Lámpara 460 NMP/ 100ml
11 Torno de la Virgen 100 < 2 < 2
12 Livingston 100 20 20 460 NMP/ 100 ml
13 Camelias 1000 1100 NMP/ 100ml
14 Oleoducto 460 NMP / 100 mL
15 Puente 460 NMP/ 100 ml
16 Centro del Lago 3
17 El Estor 2400 NMP/ 100ml
18 Exmibal 2400 NMP/ 100 ml
19 Bocas Sur 460 NMP / 100 mL
20 Bocas Norte 28 NMP/ 100ml
21 Río Oscuro 2400 NMP/ 100ml
22 Aldea Izabalito 75 NMP/ 100ml
23 Mariscos 10 120 NMP/ 100 ml
24 Río San Marcos 150 NMP/ 100 ml
25 Castillo de San Felipe 500 < 2 20 75 NMP/ 100ml
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
64
Tabla 29. Recuento de Escherichia coli
No. Sitio Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008
1 Entrada del Golfete + + - 9 NMP/ 100 ml
2 Centro del Golfete 4 NMP/ 100 ml
3 Río Bonito 1100 NMP/ 100 ml
4 Río Chocón + + + 150 NMP/ 100 ml
5 Black Creek <3 NMP/ 100 ml
6 Río Caliz 9 NMP / 100 ml
7 Lagunita Salvador 210 NMP/ 100 ml
8 Creek Jute 75 NMP/ 100 ml
9 Salida del Golfete + + - 1100 NMP/ 100 ml
10 Río Lámpara 150 NMP/ 100 ml
11 Torno de la Virgen + - -
12 Livingston + + - 150 NMP/ 100 ml
13 Camelias + 460 NMP/ 100 ml
14 Oleoducto 240 NMP / 100 mL
15 Puente 120 NMP/ 100 ml
16 Centro del Lago < 3 NMP/ 100 ml
17 El Estor 1100 NMP/ 100 ml
18 Exmibal 1100 NMP/ 100 ml
19 Bocas Sur 240 NMP / 100 mL
20 Bocas Norte 9 NMP / 100 ml
21 Río Oscuro 1100 NMP/ 100 ml
22 Aldea Izabalito 23 NMP / 100 ml
23 Mariscos + 43 NMP/ 100 ml
24 Río San Marcos 93 NMP / 100 ml
25 Castillo de San Felipe + + + 14 NMP/ 100 ml
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
65
Tabla 30. Recuento de Enterococcus NMP / mL
No. Sitio Muestreo 1
Octubre 2006
1 Entrada del Golfete < 2
2 Centro del Golfete
3 Río Bonito
4 Río Chocón 22
5 Black Creek
6 Río Caliz
7 Lagunita Salvador
8 Creek Jute
9 Salida del Golfete < 2
10 Río Lámpara
11 Torno de la Virgen < 2
12 Livingston 13
13 Camelias 5
14 Oleoducto
15 Puente
16 Centro del Lago
17 El Estor
18 Exmibal
19 Bocas Sur
20 Bocas Norte
21 Río Oscuro
22 Aldea Izabalito
23 Mariscos < 2
24 Río San Marcos
25 Castillo de San Felipe 5
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
66
Tabla 31. Recuento de Colifagos
No. Sitio Muestreo 1 Muestreo 2 Muestreo 3 Muestreo 4
Octubre 2006 Enero 2007 Abril 2007 Enero 2008
1 Entrada del Golfete + + -
2 Centro del Golfete
3 Río Bonito
4 Río Chocón + 2 -
5 Black Creek
6 Río Caliz
7 Lagunita Salvador
8 Creek Jute
9 Salida del Golfete + + -
10 Río Lámpara
11 Torno de la Virgen + 1 -
12 Livingston + - -
13 Camelias +
14 Oleoducto
15 Puente
16 Centro del Lago
17 El Estor
18 Exmibal
19 Bocas Sur
20 Bocas Norte
21 Río Oscuro
22 Aldea Izabalito
23 Mariscos +
24 Río San Marcos
25 Castillo de San Felipe + 1 -
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
67
Tabla 32. Análisis de Salmonella en agua de sitios de muestreo en Río Dulce y Lago de
Izabal.
Muestreo 1
No. Sitio oct-06
1 Entrada del Golfete 0
2 Centro del Golfete 0
3 Río Bonito 10
4 Río Chocón 1
5 Black Creek 0
6 Río Caliz 0
7 Lagunita Salvador 1
8 Creek Jute 0
9 Salida del Golfete 4
10 Río Lámpara 1
11 Torno de la Virgen
12 Livingston 20
13 Camelias 3
14 Oleoducto 0
15 Puente 15
16 Centro del Lago 0
17 El Estor 3
18 Exmibal 10
19 Bocas Sur 1
20 Bocas Norte 0
21 Río Oscuro 10
22 Aldea Izabalito 0
23 Mariscos 1
24 Río San Marcos 0
25 Castillo de San Felipe 0
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
68
III.1.7 Índice de calidad del agua (ICA) en Río Dulce y Lago de Izabal
En la tabla 33 se presentan los resultados del índice de calidad del agua calculados a partir
de los resultados promedio de los parámetros nitrógeno de nitratos, fósforo de fosfatos, pH,
diferencia de temperatura entre agua y ambiente, sólidos disueltos totales, Demanda
Bioquímica de Oxígeno, coliformes totales y visibilidad (utilizada en lugar de turbidez, que
no pudo determinarse por problemas con el aparato de medición).
Tabla 33
Indice de Calidad del Agua (ICA) en los sitios de muestreo en Lago de Izabal y Río Dulce
Sitios de muestreo ICA Calidad
Entrada Golfete 80,37 B
Centro Golfete 82,02 B
Río Bonito 61,90 R
Río Chocón 70,84 B
Río Black Creek 85,24 B
Río Caliz Final 79,30 B
Lagunita Salvador 66,87 R
Río Creek Jute 77,87 B
Salida Golfete 65,60 R
Río Lámpara 71,11 B
Livingston 55,36 R
Camelias 70,86 B
Oleoducto 72,59 B
Puente 73,18 B
Centro del Lago 77,79 B
El Estor 85,58 B
Exmibal 65,14 R
Bocas Sur 63,95 R
Bocar Norte 65,41 R
Río Oscuro 54,58 R
Aldea Izabal 65,44 R
Mariscos 77,34 B
Río San Marcos 69,72 R
Castillo de San Felipe 79,60 B
E: Excelente; B: Bueno; R: Regular; M: Malo; P: Pésimo
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
69
III.1.8 Análisis de metales
Tabla 34. Concentraciones promedio de metales en sedimentos del Lago de Izabal
colectados en 2004, determinados por Espectrofotometría de Absorción Atómica en la
Universidad Federal de Río de Janeiro. (mg/Kg, peso seco).
Sitio Forma Zn Ni Mn Cr Pb Cd Cu Fe
Río Polochic, Bocas Norte T 77.46 107.2 341.4 88.18 22.42 0.34 23.24 26086.1
D 54.60 66.8 76.4 11.59 21.48 N.D. 16.23 14852.2
El Estor T 96.62 1648.2 507.4 1923.76 20.83 0.59 56.77 55289.0
D 80.91 1114.6 77.5 205.61 17.89 0.08 26.99 27793.0
Centro
Lago Izabal
T 101.93 333.6 610.8 159.36 49.03 0.50 49.03 69762.6
D 59.69 186.4 78.0 39.44 41.14 0.47 22.24 34159.5
Aldea Izabal T 41.34 166.4 463.5 472.84 4.36 0.32 20.00 40157.1
D 9.65 40.7 76.5 19.45 4.30 0.08 5.25 8304.2
Río San Marcos T 42.53 43.4 240.5 17.56 9.26 0.23 15.26 38447.7
D 11.15 6.9 77.0 2.05 6.95 0.00 4.80 10763.1
Río Oscuro T 29.56 180.7 226.3 544.97 14.48 0.26 7.77 25790.0
D 12.85 146.4 66.5 10.15 4.90 0.05 4.55 9216.0
T: Forma total; D: Forma disponible; N.D.: No determinado
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
Tabla 35. Determinación de metales en sedimentos colectados en Río Dulce, en enero de
2007, analizados por Espectrofotometría de Absorción Atómica en la Universidad Federal
de Río de Janeiro. (mg/Kg).
Sitio Hg Cr Zn Mn Pb Cd Cu Ni
Black Creek 73.64 NM 70.33 218.78 6.05 0.78 19.63 NM
Centro Golfete 69.35 NM NM NM NM NM NM NM
Lagunita
Salvador 64.73 43.01 98.41 541.92 1.08 0.61 19.88 83.75
Río Bonito NM 3.54 71.21 310.83 3.24 0.09 3.54 77.89
Río Oscuro NM 61.65 65.44 182.62 3.99 0.82 8.56 229.34
Bocas Norte NM 2.07 54.86 265.11 1.84 0.36 8.29 160.53
Creek Jute NM 21.77 8.40 42.85 3.59 1.58 18.30 2.31
Entrada
Golfete NM 4.67 85.15 1512.8 4.60 1.16 15.05 353.29
Exmibal NM 67.38 80.08 970.64 17.51 2.07 5.34 145.85
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
70
III.1.9 Análisis de Fitoplancton:
Tabla 36. Géneros de fitoplancton entrados en muestras de agua colectadas durante el
primer muestreo, realizado durante el mes de octubre de 2006, en Río dulce y Lago de
Izabal. Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
Mariscos
Castillo
de San
Felipe
Entrada
Golfete Camelias
Río
Chocón
Salida
Golfete
Torno
de la
Virgen
Livingston
Algas Identificadas CHLOROPHYTA (14)
Botryococcus braunii X
Chlorella X X X X X
Chlorococcum X X X X
Cladophora X
Closterium aciculare X X X
Closteriopsis
Coelastrum sp. X X
Cosmarium sp. X X X X X
Crucigenia sp. X X X X
Dictyosphaerium X X X X X X
Eudorina X X X X X X X
Gloeocystis X X X
Golenkinia
Hydrodictyon X
Micrasteria
Oocystis sp. X X X X X X
Pediastrum sp.
Sphaerocystis
Spirogyra
Staurastrum sp. X X X X X X X CYANOPHYTA (5)
Anabaena
Anacystis
Aphanocapsa sp.
Gleocapsa
Gomphosphaeria X X X X X X X X
Lyngbya X X X X X X X X
Merismopedia X X X X X X X Microcystis
aeruginosa X X X X X X X X
Spirulina
Tolypotrix X CHRYSOPHYTA (2)
Asterionella
Cyclotella X X X X X
Diatoma
Dinobryon
Fragilaria
Melosita sp.
Navicula
Stauroneis
Synedra X X X X X X X
Tabellaria PYRROPHYTA (1)
Peridinium sp. X
Total 12 11 14 15 11 14 11 12
71
Tabla 37. Géneros de Fitoplancton encontrados en muestras de agua colectadas durante el
segundo muestreo, realizado durante el mes de enero de 2007, en Río Dulce y Lago de
Izabal. Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
Mariscos Castillo de
San Felipe
Entrada
Golfete
Río
Chocón
Salida
Golfete
Torno de
la
Virgen
Livingston
Algas Identificadas
CHLOROPHYTA (9)
Botryococcus braunii X X X X X
Chlorella
Chlorococcum X
Cladophora
Closterium aciculare X X X X X X
Closteriopsis
Coelastrum sp.
Cosmarium sp. X X X X
Crucigenia sp.
Dictyosphaerium
Eudorina
Gloeocystis
Golenkinia
Hydrodictyon X X X
Micrasteria X
Oocystis sp.
Pediastrum sp. X X X X X X
Sphaerocystis
Spirogyra X
Staurastrum sp. X X X X X CYANOPHYTA (7)
Anabaena X X X X
Anacystis X X X
Aphanocapsa sp.
Gleocapsa X
Gomphosphaeria X
Lyngbya X X X X X
Merismopedia X X
Microcystis aeruginosa X X
Spirulina
Tolypotrix CHRYSOPHYTA (8)
Asterionella X X Cyclotella X Diatoma X X X Dinobryon X Fragilaria X Melosita sp. Navicula X X Stauroneis Synedra X X X Tabellaria X X X
PYRROPHYTA (0) Peridinum sp.
Total 7 10 13 5 10 10 11
72
Tabla 38. Géneros de Fitoplancton encontrados en muestras de agua colectadas durante el
tercer muestreo, realizado durante el mes de abril de 2007, en Río Dulce y Lago de Izabal.
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
Castillo de
San Felipe
Entrada
Golfete Río Chocón
Salida
Golfete
Torno de la
Virgen Livingston
Algas Identificadas CHLOROPHYTA (7)
Botryococcus braunii X X X X
Chlorella
Chlorococcum X X
Cladophora
Closterium aciculare X X
Closteriopsis X X X
Coelastrum sp.
Cosmarium sp.
Crucigenia sp. X
Dictyosphaerium
Eudorina
Gloeocystis
Golenkinia
Hydrodictyon
Micrasteria
Oocystis sp. X X X X
Pediastrum sp.
Sphaerocystis
Spirogyra
Staurastrum sp. X CYANOPHYTA (6)
Anabaena X X X
Anacystis X X X X
Aphanocapsa sp. X X
Gleocapsa X X
Gomphosphaeria X X X
Lyngbya
Merismopedia
Microcystis aeruginosa X X X X X
Spirulina
Tolypotrix CHRYSOPHYTA (3)
Asterionella
Cyclotella
Diatoma
Dinobryon
Fragilaria
Melosita sp. X X X
Navicula
Stauroneis X
Synedra X X X X
Tabellaria PYRROPHYTA (0)
Peridinum sp.
Total 6 6 14 5 8 5
73
Tabla 39. Géneros de Fitoplancton encontrados en muestras de agua colectadas durante el
cuarto muestreo, realizado durante el mes de enero de 2008, en Río Dulce y Lago de Izabal.
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
Bocas
Norte
Río
Oscuro
Centro del
Lago
Castillo de
San Felipe
Puente Río
Dulce
Entrada
Golfete Camelias
Algas Identificadas CHLOROPHYTA (4)
Botryococcus braunii Chlorella Chlorococcum Cladophora Closterium aciculare Closteriopsis Coelastrum sp. Cosmarium sp. Crucigenia sp. Dictyosphaerium Eudorina Gloeocystis Golenkinia X X X X X Hydrodictyon X Micrasteria
Oocystis sp.
Pediastrum sp. X X X
Sphaerocystis X
Spirogyra
Staurastrum sp. CYANOPHYTA (5)
Anabaena X X
Anacystis X
Aphanocapsa sp.
Gleocapsa
Gomphosphaeria
Lyngbya X X X X X
Merismopedia
Microcystis aeruginosa X X X X X
Spirulina X X
Tolypotrix CHRYSOPHYTA (2)
Asterionella
Cyclotella
Diatoma
Dinobryon
Fragilaria
Melosita sp.
Navicula X X X
Stauroneis
Synedra X X X X X X X
Tabellaria PYRROPHYTA (0)
Peridinum sp. Total 3 5 2 7 6 6 7
74
III.2 Discusión de Resultados
III.2.1 Parámetros de campo
III.2.1.1 Sitios de muestreo, profundidad, temperatura y porcentaje de humedad
ambientales
En la Tabla 1 se presentan las coordenadas geográficas de los 26 sitios de muestreo de que
constó el presente estudio. De los sitios de muestreo, 16 correspondieron a la parte de Río
Dulce, con 5 muestreos dentro del área de humedales del Biotopo Chocón Machacas (Rio
Chocón, Río Creek, Rio Cáliz, Lagunita Salvador y Creek Jute), mientras que 10 sitios de
muestreo se localizaron en la parte del Lago de Izabal, con Bocas Sur y Norte,
correspondiente a la desembocadura del Río Polochic, y Río Oscuro y Río San Marcos,
correspondiente a ríos que desembocan en el lago. En la Tabla 10 se pueden observar las
profundidades de los sitios durante los cuatro muestreos, siendo el Torno de la Virgen en
Río Dulce el sitio de mayor profundidad con 29.26 m de profundidad promedio durante los
cuatro muestreos. El sitio de mayor profundidad en el Lago de Izabal correspondió al
centro del Lago con una profanidad promedio de 16.33 m para los cuatro muestreos. El
sitio de muestreo con la menor profundidad correspondió al Río Bonito con 0.91 m de
profundidad promedio para los cuatro muestreos. Otros parámetros ambientales de
importancia en los sitios de muestreo son la temperatura ambiente, cuyos resultados se
presentan en la Tabla 13 y Porcentaje de Humedad que se presenta en la Tabla 14. En
cuanto a la temperatura ambiental, puede observarse que la mayor temperatura promedio se
observó en octubre de 2006 con 30.77ºC, mientras que la menor se observó en enero de
2007 con 24.6ºC, que correspondió también a la menor temperatura del agua. El mayor
porcentaje de humedad se observó en enero de 2007 con 94% y el menor en enero de 2008
con 69%.
III.2.1.2 pH y Potencial de oxidoreducción
El pH es un parámetro importante en los ecosistemas acuáticos ya que afecta las formas
químicas y el impacto ambiental de los compuestos químicos en el agua. Así por ejemplo,
en el caso de los metales, estos pueden disolverse como iones a bajos valores de pH y
precipitar como hidróxidos y óxidos a valores de pH más altos, y luego redisolverse a
valores de pH muy elevados. En el caso del equilibro amonio-amoníaco, el pH a valores
altos lo desplaza a la forma amoníaco, la cual es tóxica a los peces. En el presente estudio
el agua del Lago de Izabal presentó características alcalinas en los muestreos de octubre de
2006, enero de 2007 y abril de 2007 (7.74, 7.57 y 7.89, respectivamente), mientras que en
enero de 2008, el valor promedio de 6.64 corresponde a pH ligeramente ácido (Tabla 2). En
enero de 2008 se observaron los menores valores de pH, con 5.21, 5.80 y 5.98 en
Livingston, Fronteras y Oleoducto, lo cual es anormal en el Lago de Izabal, como puede
observarse en el mes de enero de 2007, cuando la mayor parte de los sitios presentaron
valores alcalinos, habiendo sido el sitio en Río Oscuro y Río San Marcos, los únicos que
presentaron pH ligeramente ácido con 6.85 y 6.90, respectivamente. El pH básico
observado comúnmente en el Lago de Izabal, favorece la precipitación de fosfatos, como
también la precipitación de metales.
75
En conjunto con el valor promedio ácido del pH en enero de 2008, se observó también
durante el mismo mes un potencial de oxido-reducción promedio positivo (22.5), en
contraste con el valor promedio observado en los tros tres muestreos (-45.5, -36.0, -45.0 en
octubre de 2006, y enero y abril de 2007, respectivamente), que concuerda con el valor
alcalino del pH en esos meses (cuadro 3).
III.2.1.3 Temperatura
En la Tabla 4 pueden observarse los resultados de temperatura del agua obtenidos en los
cuatro muestreos efectuados. La temperatura es un parámetro fisicoquímico muy
importante para la ecología acuática, debido a que la solubilidad de los gases como el
oxígeno y el dióxido de carbono, importantes para la vida acuática, depende de la
temperatura, disminuyendo conforme la temperatura se incrementa. El metabolismo de
peces y plantas también depende de la temperatura del agua, así como el equilibrio de
especies químicas importantes, como el amoníaco, el cianuro de hidrógeno y el sulfuro de
hidrógeno. En el presente estudio se observó que el máximo de temperatura promedio para
todos los sitios de muestreo en abril de 2007, con 30.2ºC. El mínimo de temperatura del
agua se observó en enero de 2007 con 25.3ºC, seguido por enero de 2008, con 26.4ºC. En
cuanto a los sitios de muestreo, los extremos de temperatura promedio para los cuatro
muestreos fueron de 23.5ºC para Río Bonito y 29.3ºC para Río Cáliz y Puntarenas. El valor
máximo fue observado en Black Creek en abril de 2007 con 33.5ºC. Los resultados de
temperatura indican que entre enero y abril, la temperatura oscila en 4.7ºC, entre 25.3ºC y
30.3ºC, siendo una temperatura propia de lagos tropicales.
III.2.1.4 Oxígeno disuelto
Las Tablas 5 y 6 presentan los resultados de oxígeno disuelto expresados en unidades de
concentración (mg/L) y en porcentaje. El oxígeno disuelve muchos compuestos que
ocasionan olores y sabores desagradables en el agua, siendo además vital para la
supervivencia de los peces y otras formas de vida acuática. El oxígeno se disuelve en la
superficie del agua principalmente a partir de difusión desde la atmósfera, y a partir de la
fotosíntesis de las plantas acuáticas y el fitoplancton. Valores entre 5.0 y 8.0 mg/L son
considerado aptos para la vida acuática. Los peces necesitan niveles de al menos 5-6 mg/L
para crecer y reproducirse, mientras que a valores de 3-4 mg/L los peces dejan de
alimentarse y mueren a valores menores a 1 mg/L. En los casos en que existe
contaminación moderada, se observan con frecuencia valores de oxígeno disuelto de entre
4.5 y 6 mg/L, mientras que en agua moderadamente contaminada se observan valores de
oxígeno disuelto de 4.0 y 4.5 mg/L y de 4.0-4.5 mg/L en agua altamente contaminada.
Concentraciones menores a 4.0 mg/L corresponden a agua severamente contaminada
(Weiner, 2008).
En el presente estudio se encontraron niveles aceptables de oxigenación del agua superficial
en todos los meses, en casi todos los sitios, con excepción de Río Oscuro en los cuatro
muestreos (2.0, 0.5, 1.8 y 2.5 mg/L), Bocas Norte y Bocas Sur en enero de 2007 (3.8 y 4.8
mg/L, respectivamente), Río San Marcos en enero y abril de 2007 (2.7 y 3.9 mg/L,
respectivamente), y Mariscos en enero de 2008 (4.4 mg/L), lo cual es propiciado por alta
carga de materia orgánica que consume el oxígeno, posiblemente proveniente de material
76
vegetal inerte (Tabla 5). En el caso de Río Oscuro, los niveles encontrados correspondieron
a porcentajes de saturación de oxígeno entre 7.1 y 30.1% que no son aptos para la vida
acuática. Enero de 2007 presentó el menor valor promedio de oxígeno disuelto (5.3 mg/L
equivalente a 63.7% de saturación), mientras que el valor promedio más alto para todos los
sitios de muestreo se observó en octubre de 2007 con 6.5 mg/L (86.5%). Todos los sitios de
muestreo localizados en Río Dulce presentaron niveles de oxigenación aptos para la vida
acuática (superiores a 70% de saturación
III.2.1.5 Conductividad
Los resultados de conductividad se presentan en la Tabla 7. La conductividad es una
medida de los iones presentes en el agua. En el caso del presente estudio se observó la
mayor conductividad promedio en abril de 2007, con un valor de 995.8 uS/cm, valor
influido por los valores elevados observados en Livingston (12300 uS/cm), Torno de la
Virgen (4430 uS/cm), Río Lámpara (1939 uS/cm), Salida del Golfete (1204 uS/cm) y Creek
Jute (1409), que indicarían que existe intrusión de agua marina en el Río Dulce durante el
período de muestreo. Valores superiores a 1000 uS/cm fueron observados también en
enero de 2008 en el Torno de la Virgen y Livingston, que son los sitos que presentaron los
mayores valores promedio de conductividad para los cuatro muestreos. En enero de 2007
se observó el menor valor promedio de conductividad con 38.19 uS/cm, indicando que
existe mayor corriente del lago hacia la desembocadura del Río Dulce. Los resultados
indican que la conductividad del agua del lago es heterogénea en los sitios de muestreo.
III.2.1.6 Salinidad
La salinidad de las aguas influye en la distribución de los organismos. La salinidad es la
cantidad de residuo sólido por unidad de peso de agua (mg/Kg o mg/L), y la mayor parte
del residuo suele ser inorgánico. Los componentes de la salinidad pueden estar formados
por elementos de proporción constante (Cloro, carbonatos y sulfatos, Ca, Mg, Na y K) y
elementos de proporción variable (nitratos y fosfatos que varían de un lugar a otro y que
afectan la distribución y los ciclos de los organismos). Las aguas dulces se caracterizan por
tener menos de 0.36 mg/L de salinidad o 0.2mg/L de clorinidad, con un rango normal de 0
a 0.5 mg/L de salinidad. En el presente estudio se puede observar en la Tabla 8, en los
meses de octubre de 2006 y enero de 2007, la salinidad fue menor a 1 parte por mil (10
partes por millón, ppm), mientras que en abril de 2007 y enero de 2008, la salinidad
promedio para todos los sitios de muestreo fue de 0.6 y 0.2 partes por mil, respectivamente,
los cuales son valores superiores al promedio esperado para cuerpos de agua dulce.
Presentaron valores elevados, Livingston (7.0 y 1.6 partes por mil en abril de 2007 y enero
de 2008, respectivamente), Torno de la Virgen (2.4 y 0.6 partes por mil en abril de 2007 y
enero de 2008, respectivamente), y Río Lámpara (1.0 y 0.2 partes por mil en abril de 2007
y enero de 2008, respectivamente), debido a la cercanía con el Mar Caribe, que por ser agua
marina presenta contenido elevado de sales. Entre los sitios alejados de la desembocadura
de Río Dulce, las Bocas del Polochic Sur y Norte, presentaron ambas 0.4 partes por mil y
0.1 partes por mil en abril de 2007 y enero de 2008, indicando la contaminación
proveniente del Río Polochic.
77
III.2.1.7 Visibilidad o penetración de la luz
El grado de penetración de la luz en el agua está determinado por el tipo y cantidad de
materia suspendida y materia disuelta en el agua, y es conocida también como visibilidad o
transparencia. Las medidas de la cantidad de luz disponible a través de la columna de agua
son importantes para identificar las zonas capaces de sostener actividad fotosintética. Esta
es la región en donde se lleva a cabo la producción primaria y muestra un efecto marcado
sobre la actividad metabólica que se desarrolla en todo el cuerpo de agua. Es una medida
muy empleada en estudios limnológicos, que se encuentra muy afectada por las floraciones
algales. En el estudio se encontró que la penetración de la luz promedio para todos los
sitios de muestreo fue mayor durante el mes de octubre de 2003 (1.93 m), observándose
valores más constantes en los meses de enero de 2007 (1.13 m), abril de 2007 (1.41 m) y
enero de 2008 (1.36 m) según puede observarse en la Tabla 11. Estos valores son muy
diferentes a los encontrados en lagos de Guatemala menos contaminados, por ejemplo en el
Lago de Atitlán se han reportado valores de visibilidad de entre 8 y 9 m (Oliva, 2010). Los
sitios que presentaron la mayor visibilidad promedio fueron Fronteras, Puente (2.68 m),
Centro del Lago (2.34 m) y Torno de la Virgen (2.01 m), que se caracterizan por ser los
sitios de mayor profundidad en el Lago de Izabal y en el Río Dulce, y por lo tanto, tienen
menor influencia por la resuspensión de sedimentos. Los sitios que presentaron la menor
visibilidad promedio para los cuatro muestreos, fueron Bocas Sur (0.53 m) y Bocas Norte
(0.51 m) revelando la mayor suspensión y carga de contaminantes transportados por el Río
Polochic hacia el Lago de Izabal. Los valores de visibilidad en lagos y embalses suelen
oscilar entre 1 y 5 metros (Marín, 2003), por lo que los valores para el lago de Atitlán son
mucho mayores indicando que hay poca materia en suspensión y materia orgánica disuelta,
que pueda dar turbidez al agua del lago.
III.2.1.8 Color aparente
En aguas naturales de lagos y embalses, el color se debe a las sustancias que puedan estar
disueltas o en suspensión, así como a la materia orgánica procedente de la descomposición
de vegetales, los que proveen algunas veces coloraciones amarillentas. Suele existir una
relación entre el color y el pH del agua, de manera que cuando aumenta el valor del pH,
también aumenta el color del agua. Para el presente estudio se observó que existe
variabilidad entre los diferentes sitios de muestreo, debido a las diferentes características
fisicoquímicas encontradas (Tabla 12). Así por ejemplo, los ríos de mayor caudal (sitios en
Bocas del Polochic, Río Oscuro, Río San Marcos, Río Chocón) presentaron un color café
durante octubre de 2006 y enero y abril de 2007, revelando el arrastre de sedimentos. Por lo
general, los sitios de muestreo en el Río Dulce presentaron coloración verde, típica del río
en otros estudios (Pérez, 2003; Pérez, 2004; Basterrechea, 1993). El agua del Lago de
Iaabal presentó coloración verde o verde musgo (según criterio de los investigadores), por
lo que se puede decir que no se encontraba material disuelto o en suspensión que pudiera
afectar la coloración de la misma. También que el valor del pH no es suficientemente alto
como para provocar disolución de hierro o manganeso que pudieran dar coloración al agua.
78
III.2.1.9 Sólidos Disueltos totales
Los sólidos disueltos totales (SDT) en aguas naturales incluyen carbonatos, bicarbonatos,
cloruros, sulfatos, fosfatos y sales de nitrato. La presencia de sólidos disueltos con algunos
metales como hierro, cobre, manganeso y zinc puede darle un sabor desagradable al agua.
En la Tabla 9 se presentan los resultados de sólidos disueltos totales. Puede observarse que
los mayores valores promedio de sólidos disueltos fueron observados en abril de 2007
(964.5 mg/L) mientras los menores en enero de 2007 (36.9 mg/L), que correspondieron al
mínimo y máximo de conductividad observados en este estudio, indicando también que
existe intrusión de agua marina en el Río Dulce durante abril. Los valores promedio en
todos los sitios para los cuatro muestreos son muy diferentes en los sitios en las cercanías
de la desembocadura del Río Dulce, cuando se comparan con los observados en la mayor
parte de sitios de muestreo, durante abril de 2007.
III.2.2 Concentración de nutrientes y situación de la contaminación del Lago de Izabal
Los principales nutrientes en los ecosistemas acuáticos son los compuestos de nitrógeno,
fósforo y carbono, siendo su función proporcionar energía y soporte estructural a los seres
vivos. La productividad de los cuerpos de agua depende principalmente de las
concentraciones de compuestos de nitrógeno y fósforo. Estudios realizados en los últimos
años han mostrado que el Lago de Izabal ha presentado un incremento en los niveles de
compuestos de nitrógeno y fósforo (Pérez et al., 2004; Pérez, 2003), alcanzándose niveles
que se encuentran en rangos correspondientes a lagos eutróficos. Entre las consecuencias
de la contaminación por nutrientes, se encuentra el crecimiento de la planta exótica
Hydrilla verticillata que pobló las orillas del lago de Izabal desde el año 2002, sin que
hasta la fecha haya sido posible erradicarla.
III.2.2.1 Compuestos de nitrógeno
En las secciones siguientes se discute los resultados de concentraciones de nitrógeno de
nitritos y nitratos, y nitrógeno total:
III.2.2.1.1 Nitrógeno de nitritos y de nitratos
Todas las especies orgánicas de nitrógeno son una fuente potencial para la formación de
nitratos, los cuales representan la forma más asequible para su ingreso a la cadena trófica, a
través de las plantas y fitoplancton. En las aguas con niveles altos de oxígeno, el nitrito es
rápidamente oxidado a nitrato. Nitritos y nitratos son bastante móviles en los ambientes
acuáticos, ya que no se adsorben en el material particulado. Las concentraciones de
nitrógeno de nitritos son bajas por lo general en las aguas superficiales oxigenadas. En
cuanto a la salud humana, se considera que son peligrosas las concentraciones de nitratos o
nitritos superiores a 10 mg/L en el agua de consumo humano. Valores típicos para los
límites máximos de nitratos son de 100 mg/L de nitrógeno de nitratos y 10 mg/L de
nitrógeno de nitritos para aguas para uso agrícola, mientras que para consumo humano son
de 10 mg/L de nitrógeno de nitratos y 1.0 mg/L de nitrógeno de nitritos. Los niveles de
nitratos son importantes en el agua de consumo humano debido a que los nitratos pueden
79
ser reducidos a nitritos en la saliva y en el tracto intestinal de niños menores de seis meses,
produciendo metahemoglobina al oxidar el hierro de la hemoglobina en la sangre.
En la Tabla 15 se presentan los resultados de nitrógeno de nitritos en el Lago de IZabal y
Río Dulce durante el período de estudio. No se observaron diferencias marcadas entre
puntos de muestreo ni entre los meses de muestreo, habiéndose observado la máxima
concentración de nitrógeno de nitrito en el Río San Marcos en enero de 2007 con 0.0169
mg/L y la concentración máxima promedio por muestreos en enero de 2007, con 0.0032
mg/L. Los valores medios observados, son muy similares a los encontrados por
Basterrechea en 1991 (Basterrechea et al., 1992), Pérez en 1998 (Pérez, 2003) y Oliva en
2003 (Oliva et al., 2003). Los valores promedio por sitio de muestreo, oscilaron entre
0.001 y 0.009 mg/L, con el valor promedio máximo correspondiendo al Río San Marcos
con 0.0093 mg/L. Por lo general, los valores de nitrógeno de nitrito estuvieron por debajo
del límite máximo permisible de diferentes normas, entre ellas la de COGUANOR, que es
de 0.010 mg/L, con la única excepción del valor encontrado en el Río San Marcos en enero
de 2007. Los niveles de nitritos son normales para un lago, ya por lo general no superaron el valor
de 0.01 mg/L, lo cual indicaría una contaminación severa reciente por aguas residuales, como es el
caso de Livingston y Mariscos en mayo.
No se encontraron diferencias marcadas en las concentraciones promedio de nitrógeno de
nitratos en el proyecto, al compararse con las concentraciones encontradas por Basterrechea
en 1992, ya que la mayoría de los valores caen debajo de 1 mg/L (Tabla 16). Las mayores
concentraciones de nitrógeno de nitratos se observaron en enero de 2008 (concentración
promedio de 0.303 mg/L), con un máximo de 0.8735 mg/L para el sitio localizado en Bocas
del Polochic Norte. Así, se repitió lo observado por Pérez en enero de 1999, cuando el
nitrógeno de nitratos en el lago presentó los valores máximos en la mayoría de sitios de una
serie de muestreos realizados durante el período 1998-1999 (Pérez, 2003). Los valores
obtenidos para nitrógeno de nitratos en este estudio, se encuentran por debajo de los límites
máximos permisibles de varias normas para agua potable. COGUANOR y la Agencia de
Protección del Ambiente de los Estados Unidos (EPA), fijan un valor de 10 mg/L
(COGUANOR, 2000; EPA, 1986). Las concentraciones de nitrógeno de nitratos
encontradas en el presente estudio, indican que el lago de Izabal y Río Dulce se encuentra
en la clasificación de cuerpos de agua mesotróficos, según Roldán Pérez (2002), en cuya
clasificación los lagos mesotróficos presentan concentraciones de nitratos de 1.0-5.0 mg/L,
equivalentes a 0.2-1.1 mg/L de nitrógeno de nitratos, rango dentro del cual se encontraron
varios sitios de muestreo, durante abril de 2007 y enero de 2008, que presentaron
concentraciones promedio superiores (0.1842 mg/L y 0.3028 mg/L, respectivamente) a las
encontradas en octubre de 2006 y enero de 2007 (0.0676 mg/L y 0.0243 mg/L). Los sitios
ubicados en Bocas del Polochic son los que presentaron las mayores concentraciones
promedio de nitrógeno de nitratos para todos los muestreos (0.3152 y 0.3289 mg/L),
indicando que el Río Polochic continúa aportando la mayor carga de contaminación por
nitrógeno al Lago de Izabal.
III.2.2.1.2 Nitrógeno total
El nitrógeno total está constituido por todas las especies inorgánicas y orgánicas del
nitrógeno presente en el agua, por lo que proporciona información sobre la carga total de
80
nitrógeno disponible en un momento dado y que forma parte del ciclo de dicho elemento en
un cuerpo de agua. El nitrógeno total es un parámetro importante para el establecimiento de
límites para descargas de aguas residuales, además de proporcionar información sobre el
nutriente limitante en un lago.
Los resultados de concentraciones de nitrógeno total en el Lago de Izabal y Río Dulce, se
presentan en la tabla 17. Se presentan resultados solo para octubre de 2006 y enero de 2007,
ya que se tuvieron problemas con el equipo de medición en abril de 2007 y enero de 2008,
por lo que no pudo determinarse el nitrógeno total en esos meses. Los resultados obtenidos
son ligeramente menores a los encontrados por Basterrechea en 1991, quien obtuvo como
media para la estación de lluvias en ríos 1.174 mg/L y para la estación seca 0.746 mg/L
(Basterrechea et al., 1993), aunque es necesario considerar que en el presente estudio solo
se realizó una medición en la estación lluviosa, correspondiente a octubre de 2006, por lo
que los resultados no permiten concluir si ha existido disminución en los niveles de
nitrógeno desde 1991. Para el Lago de Izabal, Basterrechea encontró concentraciones de
nitrógeno total que oscilaban entre 0.750 mg/L a 1.400 mg/L, mientras que en este estudio
se encontraron medias de 0.1262 en octubre de 2006 y 0.5537 en enero de 2007, con
valores extremos de 0.0481 mg/L en Bocas Sur y 0.2354 mg/L en Aldea Izabal, en octubre
de 2006, y 0.3131 mg/L en el Centro del Lago y 0.8937 mg/L en la Aldea Izabal en enero
de 2007. Los niveles de nitrógeno total observados en el los sitios de muestreo en Bocas
Sur (0.5111 mg/L), Bocas Norte (0.4879mg/L), Río Oscuro (0.6656 mg/L), Aldea Izabal
(0.8937 mg/L), Mariscos (0.3611 mg/L), Río San Marcos (0.3763 mg/L), Castillo de San
Felipe (0.6117 mg/L) y bajo el Puente de Río Dulce (0.5404 mg/L), en enero de 2007,
indican que el lago presenta concentraciones de nitrógeno total correspondientes a un lago
en estado eutrófico, ya que según Machorro (1996) niveles entre 0.350 a 0.660 mg/L de
nitrógeno total corresponden a lagos eutróficos, lo cual se superó ampliamente en el
presente estudio. En el Biotopo Chocón Machacas, fueron encontrados niveles de
nitrógeno total elevados (desde 0.5633 mg/L en Creek Jute a 0.7645 mg/L en Río Chocón),
lo que indica que existe contaminación por nitrógeno en dicha área protegida.
III.2.2.2 Compuestos de fósforo
Las concentraciones de fósforo disuelto se encuentran por lo general en el rango de 0.01-
0.1 mg/L, excediendo pocas veces a 0.2 mg/L (Weiner, 2007). El comportamiento del
fósforo en ambientes acuáticos es gobernado principalmente por la baja solubilidad de la
mayoría de sus compuestos orgánicos, su adsorción a partículas de suelo y el hecho que es
un nutriente esencial para la mayor parte de las formas de vida. El fósforo es por lo general
el nutriente limitante en aguas naturales, debido a la baja solubilidad de sus compuestos. La
concentración de fósforo disuelto es por lo general suficientemente baja para limitar el
crecimiento de algas. Por otro lado, al ser un elemento esencial para el metabolismo, el
fósforo se encuentra presente siempre en los desechos animales y en las aguas residuales, lo
que contribuye a su abastecimiento a los cuerpos de agua. Las concentraciones elevadas de
fósforo en las descargas de aguas residuales son generalmente una de las principales causas
del florecimiento de algas y otros precursores de los procesos de eutrofización (Weiner,
2007). En aguas superficiales las concentraciones de fósforo son influidas por los
sedimentos, los cuales sirven como reservorio para el fósforo precipitado y adsorbido. El
intercambio entre fósforo disuelto y fósforo adsorbido, mediado por bacterias juega un rol
81
importante en la disponibilidad del fósforo para las algas y los procesos de eutrofización.
El fondo natural de fósforo total disuelto es de alrededor de 0.025 mg/L de fósforo,
mientras que para los fosfatos el nivel natural es de 0.01 mg/L. La solubilidad de los
fosfatos se incrementa a valores de pH bajos y disminuye a valores altos de pH.
III.2.2.2.1 Fósforo de ortofosfatos
En la Tabla 18 se presentan los resultados de fósforo de ortofosfatos observados en el Lago
de Izabal y Río Dulce. La mayor concentración promedio de fósforo de ortofosfatos en los
muestreos realizados se observó en octubre de 2006, con 0.0666 mg/L, mientras que en los
muestreos realizados en estación seca, la mayor concentración promedio se observó en
enero de 2008, con 0.0516 mg/L. Estos máximos son similares a los encontrados por Pérez
y colaboradores en 2003 cuando se observó una concentración promedio de 0.070 mg/L en
agosto (Pérez et al., 2003). Los sitios que presentaron las mayores concentraciones
promedio para todos los muestreos fueron Camelias (0.0768 mg/L), Oleoducto (0.0817
mg/L) en Río Dulce, y Río San Marcos (0.0543 mg/L). El sitio que presentó la mayor
concentración promedio fue el centro del Lago con 0.1680 mg/L, pero este valor incluye un
resultado anómalo de 0.5890 mg/L observado en octubre de 2006, posiblemente por
contaminación o resuspensión del sedimento en el sitio de muestreo. Aparte de este valor,
las mayores concentraciones puntuales, fueon observadas en Black Creek en el Biotopo
Chocón Machacas, en octubre de 2006, con 0.0582 mg/L, 0.0591 en Livingston en enero de
2008, 0.0745 y 0.0733 mg/L en el Río San Marcos, en enero de 2007 y enero de 2008,
respectivamente. Las Bocas del Polochic presentaron valores elevados de fósforo de
ortofosfatos en enero de 2008, con 0.0652 y 0.0655 mg/L. En general, los valores de
fósforo de ortofosfatos fueron mayores en el Lago de Izabal que en el Río Dulce, lo cual
indicaría que habría una precipitación en el lago antes de que el agua alcance el río. Al
igual que en el estudio realizado por Pérez y colaboradores en 2003, en esta investigación la
distribución de la contaminación por fósforo no presentó una tendencia definida, ya que
tanto en el Lago de Izabal como en el Río Dulce se observaron fluctuaciones en las
concentraciones de fósforo total y de fosfatos, observándose concentraciones elevadas en
todos los casos. Los afluentes continúan aportando cantidades apreciables de fósforo al Río
Dulce. La mayor parte de los sitios de muestreo, incluyendo la totalidad de los sitios de
muestreo en el mes de enero de 2008, presentaron concentraciones de fósforo de fosfatos
que caen dentro del rango de 0.030-0.100 mg/L de fósforo total correspondientes a lagos
eutróficos según Roldán Pérez (2002) y Wetzel, lo cual confirma el estado eutrófico del
Lago de Izabal, ya que a pesar de que los resultados de nitratos parecieran mostrar un
estado mesotrófico, el fósforo por ser el nutriente limitante de la productividad es el
determinante para la evaluación del estado eutrófico del lago.
III.2.2.2.2 Fósforo total
Las concentraciones de fósforo total en el Lago de Izabal y Río Dulce, se presentan en la
tabla 19. Se presentan resultados solo para octubre de 2006 y enero de 2007, ya que se
tuvieron problemas con el equipo de medición en abril de 2007 y enero de 2008, por lo que
no pudo determinarse el fósforo total en esos meses. Los niveles de fósforo total
observados son superiores a los encontrados por Basterrechea en 1991, en cuyo estudio se
observaron las concentraciones medias más elevadas en el río Polochic, con 0.087 mg/L,
82
mientras que en este estudio la mayor concentración media se observó en el Río San
Marcos con 0.541 mg/L, presentando todos los sitios, con excepción de Exmibal, valores
promedio superiores a 0.100 mg/L, lo que indicaría que la contaminación por fósforo se ha
incrementado notablemente en el Lago de Izabal y Río Dulce, como se había observado por
Pérez y colaboradores en 2003, cuando en agosto obtuvieron un valor promedio de 0.348
mg/L. Los sitios que presentaron los niveles más elevados de fósforo total fueron, además
del Río San Marcos, el Centro del Lago con 0.217 mg/L y Bocas del Polochic Norte, con
0.209 mg/L. El mayor valor observado en los muestreos, se presentó en el Río San Marcos
en enero de 2007, con 0.8223 mg/L. El límite máximo permisible de fósforo total para agua
potable de acuerdo con la OMS, es de 2.5 mg/L. Dicho valor no fue superado por ninguna
muestra. De acuerdo con Machorro (1996), los niveles de 0.020 a 0.100 mg/L de fósforo
total son indicativos de un estado eutrófico, habiéndose superado estas concentraciones
ampliamente en el presente estudio, lo cual clasifica al Lago de Izabal como un lago
eutrófico, lo que indica que presenta condiciones para floraciones algales y de plantas
acuáticas, como se ha observado por la presencia de la planta exótica Hydrilla verticillata.
Al igual que con el fósforo de ortofosfatos, se observaron mayores niveles de fósforo total
en los sitios en el Lago de Izabal que en los correspondientes a Río Dulce.
Las altas concentraciones de fósforo indican que este elemento es el que representa la
mayor contaminación del lago de Izabal y Río Dulce, al observarse niveles elevados en la
totalidad de los puntos de muestreo. Estas altas concentraciones pueden deberse al uso de
fertilizantes y a la descarga de aguas residuales al lago de Izabal y Río Dulce,
principalmente por la descarga del Río Polochic.
III.2.2.3 Sulfatos
Las concentraciones de sulfatos en el Lago de Izabal y Río Dulce, se presentan en la tabla
20. Se presentan resultados solo para octubre de 2006 y enero de 2007, ya que se tuvieron
problemas con el equipo de medición en abril de 2007 y enero de 2008, por lo que no pudo
determinarse el sulfato en esos meses. Los minerales de sulfato, forma oxidada del azufre,
se encuentran distribuidos ampliamente en la naturaleza, siendo la mayor parte de los
compuestos de sulfato fácilmente solubles en agua, con excepción de los sulfatos de calcio
y plata, que son moderadamente solubles, y los sulfatos de bario, mercurio, plomo y
estroncio que son insolubles. Casi tosas las aguas naturales contienen aniones sulfato, que
se encuentra como un componente importante de las aguas no contaminadas y está incluido
entre los seis mayores iones de las aguas superficiales, junto con Na+, Ca
+2, Mg
+2, Cl
- y
HCO3-2
. Los sulfatos sirven como fuente de oxígeno para las bacterias y bajo condiciones
anaeróbicas, las bacterias reductoras de sulfatos lo reducen a H2S, el cual precipita como
sales insolubles, o es incorporado en los organismos vivos. La reducción a H2S provoca
olores fétidos en aguas que reciben altos contenidos de sulfatos, especialmente provenientes
de aguas residuales o en humedales. La oxidación de los sulfuros retorna el azufre a la
forma sulfato.
En enero de 2007 se observó la mayor concentración promedio de sulfatos (65.44 mg/L)
debido a los mayores niveles observados en el Río San Marcos (285.03 mg/L), Bocas Norte
(128.62 mg/L), Bocas Sur (114.34 mg/L) y Río Chocón (118.88 mg/L) superiores a los
máximos observados en octubre de 2006, de 83.17 mg/L en la Salida del Golfete, 76.95
83
mg/L en el centro del Golfete y 73.55 mg/L en Puntarenas. Los niveles de sulfatos ponen
en evidencia el mayor contenido de sales del Lago de Izabal y Río Dulce, comparado con
otros lagos de Guatemala, ya que por ejemplo en el Lago de Atitlán se encontró
recientemente un máximo valor promedio de sulfatos en octubre de 2009 de 36 mg/L.
Algunos de los valores encontrados en este estudio están por encima de 250 mg/L que se
considera que es la concentración mínima palatable para sulfatos, que por otra parte, se
considera una sustancia no tóxica para la vida acuática.
III.2.2.4 Demanda Química de Oxígeno y Demanda Bioquímica de Oxígeno
En cuanto a la Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO), en casi la totalidad de los casos se
observaron concentraciones menores a 2 mg/L (Tabla 22). Esto indica que a pesar de la
descarga de aguas residuales directamente sobre el Lago de Izabal y Río Dulce, la dilución
de contaminantes sigue siendo importante, por lo que este factor de materia orgánica
oxidable por los microorganismos no consume una gran cantidad del oxígeno disuelto de
los cuerpos de agua de estudio. Los resultados de Demanda Química de Oxígeno (DQO) se
presentan en la Tabla 21. Puede observarse que el mayor valor medio para los muestreos
fue observado en octubre de 2006, con 22.5 mg/L, por ser estación lluviosa. En cuanto a
los sitios de muestreo, los mayores valor promedio fueron observados en Livingston, con
21.8 mg/L y en Lagunita Salvador, con 18.5 mg/L.
III.2.2.5 Sólidos
Los resultados de los sólidos suspendidos, sólidos totales disueltos y sólidos totales en el
Lago de Atitlán y Río Dulce, durante los cuatro muestreos se presentan en las tablas 23, 24
y 25, respectivamente. En los casos de los sólidos suspendidos y sólidos totales disueltos,
se tuvo problemas con las muestras colectadas en abril de 2007, por lo que no pudieron
determinarse esos parámetros.
El término sólidos se refiere a materia que se encuentra suspendida (sólidos insolubles) o
disueltos (sólidos disueltos) en el agua. Los sólidos pueden afectar la calidad del agua de
varias formas y en el caso de la vida acuática, los sólidos suspendidos pueden causar
abrasión, o pueden aglomerarse en las branquias de los peces, pueden perjudicar el desove
y reducir la fotosíntesis al bloquear la penetración de la luz solar. Por otra parte, las aguas
duras, principalmente debido a las concentraciones de calcio y magnesio disueltos, reducen
la toxicidad de los metales a la vida acuática.
En el caso de los sólidos suspendidos, puede observarse en la tabla 23, que los mayores
valores fueron observados en los tributarios del lago de Izabal, Bocas Sur y Bocas norte
(con 126 y 145 mg/L en octubre de 2006) y Río San Marcos (335 mg/L) en enero de 2007,
que corresponden también a los sitios que presentaron las mayores concentraciones
promedio para los tres muestreos en que se realizaron mediciones de sólidos suspendidos,
con 61, 72 y 124 mg/L. La concentración promedio en el Centro del Lago fue baja con 3
mg/L. Los valores observados en Bocas del Polochic y Río San Marcos pueden afectar a la
vida acuática por bloqueo de la luz solar y refleja la contaminación que arrastran dichos
ríos.
84
Los resultados de los sólidos disueltos se presentan en la Tabla 24. Como es de esperarse
por la cercanía del océano Atlántico, los sitios en Torno de la Virgen y Livingston fueron
los que presentaron las mayores concentraciones promedio de sólidos disueltos, con 421 y
1050 mg/L, respectivamente, indicando el alto contenido de sales. En los sitios ubicados en
el Lago de Izabal, las concentraciones de sólidos totales promedio se encontraron entre 95
mg/L en El Estor y 146 mg/L en Bocas Sur, siendo inferiores a los niveles encontrados en
el Río Dulce, que presentó 153 mg/L en la Salida del Golfete y 197 mg/L en la entrada del
Golfete. Los niveles encontrados en varios tributarios y humedales del Río Dulce, fueron
los inferiores, con 66 mg/L en Lagunita Salvador y, 80 mg/L en Río Caliz final y 82 mg/L
en Río Black Creek.
Los resultados de los sólidos totales se presentan en la Tabla 25. Los sólidos totales son los
sólidos remanentes luego de evaporar el agua de una muestra no filtrada. Incluyen los
sólidos que pueden separarse por filtración (sólidos suspendidos totales y sólidos disueltos
totales), por lo que proporcionan información de la materia total presente en el agua. En
este estudio, los mayores valores promedio para todos los sitios de muestreo se observaron
en abril de 2007, con 570 mg/L, mientras que el menor valor promedio fue observado en el
muestreo realizado en estación lluviosa, octubre de 200, con 122 mg/L, lo que pone en
evidencia la dilución por las lluvias. Los sitios que presentaron las mayores
concentraciones de sólidos totales fueron el Torno de La Virgen y Livingston (933 y 27087
mg/L respectivamente), por su cercanía con el Océano Atlántico, que les confiere mayores
concentraciones de sólidos disueltos, por la intrusión marina. En los sitios ubicados en el
Lago de Izabal, Bocas Norte (128 mg/L) y Bocas Sur (125 mg/L), que transportan el agua
del Río Polochic y Río San Marcos (111 mg/L), que recorre un área ganadera, fueron los
sitios que presentaron las mayores concentraciones promedio para todos los muestreos, lo
que evidencia la carga de sólidos que aportan al Lago de Izabal. El resto de sitios de
muestreo en el lago presentaron niveles de sólidos totales promedio, menores a 100 mg/L.
En el Río Dulce, las concentraciones de sólidos totales se encontraron entre 102 y 396
mg/L en Entrada al Golfete y Río Lámpara, respectivamente.
III.2.3 Contaminación bacteriológica
Los resultados de Recuento Total de Bacterias en agua del Lago de Izabal y Río Dulce se
presentan en la Tabla 26. Según puede verse, todos los sitios investigados presentaron
niveles elevados de este parámetro, con máximos de 33000, 31000 y 24000 UFC/mL eb
Livingston, Castillo de San Felipe, y Entrada del Golfete en abril de 2006. El grupo de
bacterias coliformes fue utilizado como indicador de contaminación de origen ambiental
y/o humano-animal. E. coli fue utilizada como indicador de contaminación de origen fecal.
Los coliformes pueden ser utilizados como indicadores biológicos de descargas orgánicas
por escorrentías y materiales fecales. La presencia de estos microorganismos indica que
existen malas condiciones sanitarias provocadas por actividades antropogénicas e
intervención animal (Rheinheimer, 1977).
Los resultados de este estudio evidencian la necesidad de incrementar la inversión en
infraestructura sanitaria que contribuya a mejorar la calidad del agua de origen domiciliar,
industrial y agrícola que se descargan en el Lago de Izabal y Río Dulce, con el fin de
disminuir el grado de deterioro y contaminación en ambos cuerpos de agua.
85
La Tabla 27 presenta los resultados de coliformes totales, habiéndose obtenido los
resultados correspondientes a octubre de 2006, enero y abril de 2007, en UFC/mL,
encontrándose en octubre de 2006, niveles elevados, superiores a 1000 UFC/mL en todos
los sitios muestreados, con un máximo de 11000 UFC/mL en el Castillo de San Felipe,
seguido por Livingston y Torno de la Virgen, con 9000 y 8000 UFC/mL, respectivamente,
revelando que existen altos niveles de contaminación bacteriológica tanto en el Río Dulce
como en el Lago de Izabal. En enero y abril de 2007 los niveles de coniformes totales
disminuyeron. En enero de 2008, se determinaron los niveles de coliformes totales en
NMP/mL, obteniéndose valores elevados, especialmente en El Estor, Exmibal, Río Bonito,
Lagunita Salvador y Río Oscuro, en que se obtuvo valore superiores a 2400 NMP/100mL,
evidenciando la contaminación bacteriológica extendida en Río Dulce y Lago de Izabal. La
misma tendencia se observó en los resultados de coliformes fecales (Tabla 28),
presentándose valores superiores a 2400 NMP/100 mL en Río Bonito, Salida del Golfete,
El Estor, Exmibal y Río Oscuro, revelando los altos niveles de contaminación causados por
la disposición inadecuada de las heces humanas.
No se observa una diferencia marcada entre los niveles de contaminación bacteriológica en
los sitios en el Río Dulce y el Lago de Izabal, mientras que anteriormente se había
encontrado que existía mayor contaminación bacteriológica en Río Dulce en 2003 y 2004
(Pérez, 2003; Pérez, 2004), principalmente en los puntos de muestreo cercanos a centros
poblados o en los que se realizaban actividades ganaderas, como Río Bonito, Creek Jute,
Rìo Lámpara. Es importante destacar la gran cantidad de bacterias en el Torno de la
Virgen, el cual a pesar de no estar directamente frente a un centro poblado es un punto
donde converge el agua de diferentes fuentes de la parte alta de la cuenca.
Los resultados de E. coli se presentan en la Tabla 29. Esta bacteria se identificó en la
mayoría de los sitios en los que se registró el crecimiento de estos indicadores. En el
muestreo realizado en enero de 2008, se determinó la E. coli utilizando el método del
número más probable, encontrándose elevados niveles de contaminación por la bacteria en
Río Bonito, Salida del Golfete, Exmibal, Río Oscuro, con niveles de 1100 NMP/100 mL.
Los niveles más bajos fueron encontrados en el centro del Lago de Izabal y en Black Creek
(< 3 NMP/100 mL). Las tablas 30, 31 y 32 presentan los resultados de enterococos,
colifagos y Salmonella, respectivamente. Es importante considerar que los resultados
positivos de enterococos y Salmonella, ponen en evidencia la contaminación del agua del
Lago de Izabal y Río Dulce, por patógenos que ponen en serio riesgo la salud de las
poblaciones humanas en la cuenca. La presencia de colifagos es indicadora de la presencia
de coniformes.
Las causas de la contaminación por bacterias de origen fecal en el Río Dulce y el Lago de
Izabal, son la falta de sistema de drenajes, no hay plantas de tratamiento de aguas residuales
de origen agroindustrial o domiciliar, o si las hay no están funcionando, numerosos centros
poblados ubicados en el área no cuentan con los servicios básicos mínimos (agua potable,
centros de salud, infraestructura para la disposición adecuada de los desechos orgánicos e
inorgánicos, drenajes, sistemas de disposición de excretas, adecuadas a la región, plantas de
tratamiento de agua para consumo humano y de aguas residuales) (Pérez et al., 2004). Las
actividades ganadera y agrícola extensivas en la región, tienen también un impacto directo
en la calidad del agua de los cuerpos objeto de este estudio, tal es el caso de Río Bonito y
86
Río San Marcos, en cuyas desembocaduras se encuentran fincas ganaderas. Las aguas
contaminadas con bacterias fecales constituyen un riesgo importante para la salud de los
pobladores que aún no tienen acceso al agua potable y además no cuentan con sistemas
apropiados para la disposición de excretas.
Las aguas residuales sin tratar que se vierten directamente al Lago de Izabal y Río Dulce
constituyen un riesgo para la salud de los pobladores del área, que hacen uso de de estos
cuerpos de agua, ya que en ambos cuerpos de agua se obtuvieron resultados positivos para
bacterias patógenas como E. coli. E. coli es también conocida como la bacteria responsable
de la “diarrea del viajero” que afecta a numerosos turistas que visitan Guatemala.
Entre las actividades económicas que son damnificadas por los niveles de contaminación
bacteriológica, se encuentran el ecoturismo, la pesca y la agricultura, ya que la
contaminación afecta a los turistas, y contamina el pescado, además que los productos
agrícolas son contaminados al utilizarse agua del Lago de Izabal, Río Dulce y afluentes
para riego.
Estos y otros factores hacen necesaria y urgente la acción para el rescate de estos cuerpos
de agua por parte de los sectores gobierno, empresarial, organizaciones no gubernamentales
ubicadas en el lugar, así como de los pobladores del área y turistas, tanto para el manejo de
los cuerpos de agua como motor de actividades económicas, como para la conservación de
las áreas protegidas en la zona. Desde los estudios efectuados por Basterrechea (1992) a la
fecha al presente, se ha evidenciado el deterioro cada vez más acelerado de que están
siendo objeto tanto el Lago de Izabal como Río Dulce, especialmente por los niveles de
contaminación bacteriológica y por fósforo.
III.2.4 Indice de Calidad del Agua (ICA)
La tabla 33 presenta los Indices de Calidad del Agua (ICA) en los sitios de muestreo en el
Lago de Izabal y Río Dulce. El ICA no pudo determinarse en los sitios ubicados en
Puntarenas y Torno de la Virgen, por falta de datos de un parámetro de calidad del agua.
Como puede verse en los resultados, el agua en la mayoría de sitios de muestreo puede
considerarse buena para cumplir con funciones de mantenimiento del ecosistema acuático,
aunque los índices para varios de estos sitios se encuentran en el borde para que su calidad
sea considerada como regular, como el caso de Río Chocón y Río Lámpara, que están en el
límite mínimo de calidad del agua considerada como buena. Los sitios que presentaron los
peores Índices de Calidad del Agua fueron Río Bonito (61.90), Livingston (55.36), Salida
del Golfete (65.60), Exmibal (65.14), Bocas del Polochic Sur (63.95), Bocas del Polochic
Norte (65.41), Río Oscuro (54.58) y Aldea Izabal (65.44). La mayoría de estos índices de
calidad fueron afectados principalmente por la mala calidad bacteriológica del agua, ya que
en varios sitios se obtuvieron niveles de coliformes fecales elevados, que disminuyen el
valor del Índice de Calidad del Agua notablemente, al tener el factor de mayor peso (0.17),
en el cálculo del índice.
87
III.2.5 Metales en sedimentos
Las tablas 34 y 35 presentan los resultados de metales en sedimentos del Lago de Izabal y
Río Dulce. La tabla 34 corresponde metales en forma total y disponible analizados en
sedimentos colectados previamente al proyecto en el Lago de Izabal, en 2004, analizados
para tener un parámetro de comparación, mientras que en la tabla 35 corresponde a metales
analizados en sedimentos del Lago de Izabal y Río Dulce, colectados en enero de 2007. Los
metales fueron analizados por Espectrofotometría de Absorción Atómica, en el Laboratorio
de Radioisótopos del Instituto de Biofísica Carlos Chagas Filho, de la Universidad Federal
de Río de Janeiro.
Para iniciar la discusión es importante menciona que la geología de la cuenca del Lago de
Izabal se caracteriza por ofiolitas al norte del lago y depósitos de carbonato conteniendo
Pb-Zn a 100 Km al oeste del lago (Machorro, 1996), los cuales explican parcialmente la
presencia de plomo y zinc en los sedimentos. Por otra parte, las descargas de aguas
residuales no tratadas al Río Polochic podrían ser también responsables por los niveles de
plomo elevados (49.0 mg/kg, en el centro del lago) encontrados en los sedimentos
colectados en 2004, como ocurre en otros ríos de Guatemala que reciben aguas residuales
sin tratamiento.
En el sedimento de El Estor colectado en 2004 se encontró níquel en concentración de 1648
mg/Kg, siendo de los sitios muestreados en 2004, el sitio más cercano a la mina Exmibal.
No existe información suficiente para atribuir a la actividad minera el elevado valor de
níquel en esta muestra, ya que como puede verse en los resultados de los sedimentos
colectados en 2007, se encontró un nivel inferior de níquel en el sitio Exmibal (145.85
mg/Kg), que está localizado frente a la descarga de agua residual de la minera. Los niveles
de cadmio se encontraron entre 0.23 y 0.59 mg/Kg en 2004 y de 0.09 a 2.07 mg/Kg en
2007, correspondiente los máximos a El Estor en 2004 y a Exmibal en 2007, por lo que
podría tener relación con la actividad minera en el área. El cromo también presentó los
valores máximos en El Estor en 2004 (1923.8 mg/Kg) y en Exmibal en 2007 (67.38
mg/Kg). Es importante considerar que los sitios de muestreo de sedimentos en 2007 fueron
diferentes a los de 2004, lo cual explicaría las diferencias en los niveles de concentración.
El máximo valor del plomo se encontró en Exmibal en 2007 (17.51 mg/Kg) superando
ampliamente los otros sitios, aunque puede explicarse también por la geología de la cuenca.
Los otros metales tóxicos no presentaron concentraciones elevadas, encontrándose en
niveles que han sido reportados en otros lagos de Guatemala, como el Lago Petén Itzá
(Oliva, 2008) y el Lago Atitlán (Oliva, 2010). Por otra parte, las proporciones de
concentración disponible para la mayoría de metales tóxicos, son elevadas con respecto la
concentración total del metal, lo cual indicaría facilidad para su ingreso a la cadena trófica
(Tabla 34). En la mayoría de los casos, los máximos de concentración para metales tóxicos
correspondieron a los mismos sitios, El Estor y el Centro del Lago de Izabal para níquel,
cromo y plomo, en 2004, y Exmibal para plomo, cromo y cadmio en 2007, lo cual sugiere
que la actividad minera podría haber incidido en los mayores niveles de metales en dicha
área.
88
III.2.6 Fitoplancton
En el presente estudio se encontró, para el mes de octubre de 2006, presencia de
organismos de clorofitas (Chlorophyta) como Botryococcus, Chlorella, Chlorococcum,
Cladophora, Closterium, Coelastrum, Cosmarium, Crucigenia, Dictyosphaerium,
Eudorina, Gloeocystis, Hydrodictyon, Oocystis y Staurastrum. Especies de cianofítas
(Cyanophyta) como Gomphosphaeria, Lyngbya, Merismopedia y Microcystis, diatomeas
(Chrysophyta) con los géneros Cyclotella y Synedra y presencia de dinofítas (Pyrrophyta)
como Peridinium. Para este mes se presentaron en total 22 diferentes géneros de algas, de
las cuales 14 son clorofitas, 5 cianofitas, 2 crisofitas y una pirrofita (Tabla 36).
Durante el mes de enero de 2007, se encontraron los siguientes organismos: clorofitas como
Botryococcus, Chlorococcum, Closterium, Cosmarium, Hydrodictyon, Micrasteria,
Pediastrum Spirogira y Staurastrum. Especies de cianofitas como Anabaena, Anacystis,
Gleocapsa, Gomphosphaeria, Lyngbya, Merismopedia y Microcistis. Se encontraron
crisofitas como Asterionella, Cyclotella, Diatoma, Dinobryon, Fragilaria, Navicula,
Synedra y Tabellaria. Se observó un total de 24 géneros de fitoplancton, de los cuales 9
corresponden a clorofitas, 7 a cianofitas y 8 a crisófitas (Tabla 37).
En el mes de abril de 2007 se observó la presencia de cloritas como Botryococcus,
Chlorococcum, Closterium, Closteriopsis, Crucigenia, Oocystis y Staurastrum. Especies
de cianofitas como Anabaena, Anacystis, Aphanocapsa, Gleocapsa, Gomphosphaeria y
Microcistis. Del género crisofitas se observó presencia de Melosira, Stauroneis y Synedra.
Durante este mes se observó un total de 16 géneros, de los cuales 7 fueron clorofitas, 6
cianofitas y 3 crisofitas (Tabla 38).
Durante el mes de enero de 2008, los géneros presentes para las clorofitas fueron:
Golenkinia, Hydrodictyon, Pediastrum y Sphaerocystis. Para las cyanofitas los géneros
observados fueron: Anabaena, Anacystis, Lyngbya, Microcystis y Spirulina. En este
muestreo solo se presentaron 11 géneros de algas, distribuidos de la siguiente manera: 4
géneros de clorofitas, 5 géneros de cianofitas y 2 géneros de crisófitas (Tabla 39.
Al analizar los resultados se pueden la división clorofila fue la que presentó la mayor
diversidad en todos los sitios de muestreo, al haber presentado la mayor cantidad de
géneros identificados. De ellos, Cosmarium y Staurastrum son indicadores de buena
calidad de agua. Cosmarium se identificó durante el muestreo realizado en octubre de 2006
en 5 de los 8 sitios muestreados, mientras que Staurastrum se observó en casi todos los
sitios muestreados. Durante el segundo muestreo, realizado en enero de 2007 Cosmarium
fue observado en 4 sitios mientras que Staurastrum se observó en 5 de los 8 sitios
muestreados. En abril de 2007, Cosmarium no se observó en ningún sitio, y Staurastrum
solo se identificó en el río Chocón. En enero de 2008, no se observó ninguno de los dos
géneros en los sitios de muestreo, lo que indica el deterioro de la calidad del agua en los
muestreos 3 y 4, al ser Staurastrum un género muy sensible a los cambios en las
condiciones del agua, por lo que puede utilizarse como indicador de la calidad del agua,
mientras que Cosmarium solo se desarrolla en presencia de aguas limpias.
89
Las cianofitas se encuentran frecuentemente en aguas que presentan detritos orgánicos.
Algunos de los organismos representativos que fueron identificados en este estudio
pertenecen a los géneros Anabaena, Gomphosphaeria, Lyngbya y Microcystis, entre otros.
De estos géneros, los que se presentaron en casi todos los muestreos fueron Lyngbya y
Microcystis. Estos organismos son indicadores de mala calidad del agua, ya que Lyngbya
se asocia a fuentes de nitrógeno y Microcystis es un indicador de contaminación orgánica.
Microcystis estuvo presente en los cuatro muestreos realizados. Estos organismos son
responsables de florecimientos en aguas contaminadas y le confieren al agua una coloración
verde-azul, olor a pepino cuando están frescos, y un olor séptico cuando se descomponen.
El género Microcystis, se encuentra normalmente en la mayoría de lagos, sin embargo si se
producen florecimientos puede ser un peligro para los organismos que consumen el agua,
ya que se ha comprobado su actividad hepatotóxica, al producir las cianotoxinas
Mycrisytinas –LA y –LR (Kujbida, 2009). Los florecimientos de cianofitas, como el
observado en el Lago de Atitlán recientemente (Oliva et al., 2010), pueden deberse a
cambios de temperatura del agua, y al exceso de nutrientes (especialmente fosfatos), y se
observan como manchas de color verde sobre el agua, lo cual no fue observado en ninguno
de los sitios de muestreo durante el período de estudio. La elevada cantidad de algas
cianofíceas (Microcystis y Anacystis) observada, indica un proceso incipiente de
eutrofización del Lago de Izabal, lo cual también fue mencionado por Machorro (1996).
Entre las diatomeas, pertenecientes a las crisofitas, la que se presentó en todos los
muestreos fue Synedra. Este género es tolerante a aguas con porcentajes moderados de
contaminación orgánica.
Es importante considerar los géneros presentes, ya que unos de ellos son indicadores de
buena calidad del agua, que al desaparecer demuestran el deterioro de la calidad del agua,
al ser sustituidos por géneros que son tolerantes a grandes concentraciones de nutrientes y
descargas orgánicas, especialmente las cianofitas.
90
PARTE IV.
IV.1 CONCLUSIONES
IV.1.1 Los niveles de nitrógeno de nitratos y fósforo de fosfatos encontrados en la mayoría
de sitios de muestreo en el Lago de Izabal, Río Dulce y humedales del Biotopo Chocón
Machacas, corresponden a cuerpos de agua eutróficos, indicando el deterioro de la calidad
del agua en las últimas décadas.
IV.1.2 Los parámetros de campo, temperatura, pH, conductividad y oxígeno disuelto,
encontrados en el presente estudio son normales de ecosistemas acuáticos estuarino-costeros,
mostrándose buenos niveles de oxígenación en el agua superficial en la mayoría de sitios de
muestreo y pH alcalino correspondiente a la geología de la cuenca.
IV.1.3 Se encontraron niveles normales de metales tóxicos Pb, Cd, Zn, Cr, Ni, Cu, Hg en
sedimentos del lago de Izabal y Río Dulce, en forma disponible y en forma total, que pueden
ser explicados por la geología de la cuenca. Se encontraron niveles de Ni, Pb y Cd arriba de la
media en el sitio en El Estor, superiores a los encontrados en el sitio de muestreo frente al sitio
Exmibal.
IV.1.4 No se encontraron Hidrocarburos Aromáticos Policíclicos en concentración detectable
en el agua del lago de Izabal y Río Dulce, por lo que la contaminación por dichos compuestos
no es significativa a la fecha.
IV.1.5 Los niveles de nitrógeno y fósforo encontrados en los principales afluentes del lago
de Izabal, Río Dulce y humedales del Biotopo Chocan Machacas, indican que la carga de
nutrientes que aportan al Lago de Izabal y Río Dulce, presentan un impacto negativo
significativo, al provocar niveles de nutrientes correspondientes a cuerpos de agua
eutróficos en el Lago de Izabal y Río Dulce.
IV.1.6 Los niveles de contaminación bacteriológica en el lago de Izabal y Río Dulce, con
altas concentraciones de coniformes fecales y la presencia de microorganismos patógenos,
hacen que el agua del Lago de Izabal y Río Dulce no sea apropiada para consumo o baño,
especialmente en los sitios cercanos a los poblados.
IV.1.7 Los sitios que presentaron los peores Índices de Calidad del Agua fueron Río Bonito
(61.90), Livingston (55.36), Salida del Golfete (65.60), Exmibal (65.14), Bocas del
Polochic Sur (63.95), Bocas del Polochic Norte (65.41), Río Oscuro (54.58) y Aldea Izabal
(65.44), debido principalmente a la mala calidad bacteriológica del agua.
IV.1.8 Los sitios que presentaron mayor contaminación fisicoquímica en el Lago de Izabal
y Río Dulce, durante el período de estudio, fueron el Bocas del Polochic, Oleoducto,
Camelias, Río San Marcos y Livingston.
IV.1.9 El Río Oscuro, presenta una naturaleza distinta al resto de tributarios al presentar
valores de pH ácidos, niveles de oxígeno disuelto bajos y una coloración distinta a los otros
ríos, que motiva su nombre.
91
IV.1.10 Las clorofitas son los organismos de fitoplancton más diversos al haber prsentado
la mayor cantidad de géneros en el agua de Río Dulce y lago de Izabal.
IV.1.11 De las clorofitas, Staurastrum que es un organismo indicador de buena calidad del
agua, se observó en el muestreo de octubre de 2006, enero de 2007 en varios sitios, no
habiéndose observado durante el cuarto muestreo lo que evidencia el mayor deterioro de la
calidad del agua en enero de 2008, ya que estas algas no soportan cambios en su hábitat.
IV.1.12 Las cianofitas son las algas que presentaron mayor cantidad de géneros, después de
las clorofitas. Las que se presentaron en casi todos los muestreos son Lyngbya y
Microcystis.
IV.1.13 La presencia elevada en el Lago de Izabal de cianofitas pertenecientes a los géneros
Anabaena, Lyngbya y Microcystis, indican del deterioro de la calidad del agua del Río
Dulce y lago de Izabal, en los sitios de muestreo analizados, ya estos organismos son
tolerantes a concentraciones elevadas de nutrientes y materia orgánica.
92
IV.2 RECOMENDACIONES
IV.2.1 Como aspectos prioritarios para la conservación y mejoramiento de la calidad del
agua del Lago de Izabal y Río Dulce, debe considerase el tratamiento de aguas residuales,
la instauración de programas de capacitación para agricultores y de educación ambiental
para las comunidades asentadas en la cuenca, la cual debe comprender la cuenca del Río
Polochic por el aporte de contaminantes hacia el Lago de Izabal.
IV.2.2 Mantener un programa de monitoreo, trimestral, para observar las tendencias en los
niveles de contaminación y tomar las medidas preventivas y correctivas que permitan la
disminución de la contaminación en el Lago de Izabal y Río Dulce.
IV.2.3 Se recomienda incluir en los monitoreos de calidad del agua la determinación de
cianotoxinas producidas por las cianobacterias, para evaluar el riesgo toxicológico del agua
del Lago de Izabal, al existir elevada presencia de los géneros Microcystis sp. y Lyngbya
sp., reconocidos porque algunas especies de los mismos, producen cianotoxinas.
IV.2.4 deben realizarse investigaciones sobre los niveles de metáles tóxicos en organismos
acuáticos, como peces y ostras, para evaluar el riesgo toxicológico del consumo por turistas
y la población humana de la cuenca.
IV.2.5 Se recomienda que se realicen estudios paleolimnológicos en el Lago de Izabal, para
evaluar los cambios ambientales ocurridos en la cuenca, como herramienta para la toma de
decisiones en relación con la contaminación y el uso del suelo.
93
IV.3 REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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270.
99
IV.4 ANEXOS
IV.4.1 INFORMACIÓN DE ORGANISMOS DE FITOPLANCTON
Sumario de las algas encontradas en el Río Dulce y Lago de Izabal, durante los muestreos realizados de
octubre de 2006 a enero de 2008.
Género de plancton
DIVISIÓN CHLOROPHYTA
Botryococcus
braunii
Fuente: Guillén, 2008.
Botryococcus es un alga que forma colonias. Puede
desarrollarse de forma masiva cuando hay disueltas
pequeñas cantidades de fósforo inorgánico en el
agua. Cuando su crecimiento es explosivo, puede
llegar a cubrir el agua de un color amarillo
(Guillén, 2008). Botryococcus braunii puede
utilizarse para fabricar hidrocarburos, que pueden
llegar a representar hasta el 86% de su peso seco
(Guillén, 2008).
Chlorella
Fuente: C. M. Sean Carrington. 1997.
Chlorella es un género de algas verdes unicelulares,
de la división Chlorophyta. A través de la
fotosíntesis se multiplica rápidamente requiriendo
solo dióxido de carbono, agua, luz solar, y
pequeñas cantidades de minerales, para
reproducirse. Chlorella puede crecer fácilmente por
los altos niveles de nitratos y fosfatos y luz solar
directa. Disminuir los contenidos de P y de NO3, y
aumentando la cantidad de sombra puede ayudar a
resolver el problema del crecimiento exponencial.
Viven bien en aguas contaminadas con materia
orgánica. Pueden ser indicadoras de contaminación
con agua de mar, por ser resistentes a la salinidad.
Cuando se presentan en gran número producen olor
de moho en el agua.
Chlorococcum
Fuente: Instituto de Bioquímica
Vegetal y Fotosíntesis.
Se encuentra en cuerpos de agua corriente dulce o
salada, permanentes o estacionales. Pueden vivir
en aguas de alta salinidad. Son resistentes a la
contaminación. Pueden vivir heterotróficamente en
ambientes sin luz, donde se mantienen verdes.
100
Cladophora
Es un alga verde, cosmopolita, de la división
Chlorophyta, de tipo esférico, muy densa que le
permite rodar por el fondo o flotar. Se encuentra en
temperaturas de 5 a 28 grados Celsius, con pH de
6.0 a 8.5 en aguas blanda a dura. Es un alga
compite muy bien con las otras algas tomando parte
de los nutrientes de las que éstas se alimentan. Son
algas frecuentes en aguas duras, son resistentes a
los desagües que contienen cromo. En gran número
producen olor de grama en el agua. Se le puede
encontrar en lagos de poca profundidad.
Closterium
aciculare
Fuente: Guillén 2008
.
Fuente: Guillén 2008.
Fuente: Guillén 2008.
Para poder vivir bien y reproducirse Closterium
aciculare necesita que haya amonio en el agua,
NH4+, sin cuya presencia su vida no sería posible.
Vive en lagunas y charcas, con cierta cantidad de
materia orgánica. Se trata de una especie bastante
frecuente que habita tanto en aguas corrientes como
estancadas y que soporta bastante bien la
contaminación (Guillén, 2008).
Closteriopsis
Fuente: Rhodes, 2004.
Es un alga verde del género Clorophyta y de la
familia Chlorellaceae, (Rhodes, 2004).
101
Coelastrum sp.
Fuente: Guillén, 2008.
Son frecuentes en aguas con altas concentraciones
de sales minerales resultantes de la estabilización
de la materia orgánica. Se encuentran en ambientes
con poco oxígeno, así como salinidad muy alta
(Guillén, 2008).
Cosmarium sp1
Fuente: Guillén, 2008.
Cosmarium botrytis es un alga cosmopolita que
vive en pequeños charcos, bordes de estanques e
incluso sobre las rocas húmedas (Guillén, 2008).
Cosmarium sp 2
Fuente: Guillén, 2008.
Cosmarium tetraophthalmum es un désmido, alga
verde, que vive en aguas limpias (Guillén, 2008).
Crucigenia sp 1
Fuente: Y. Tsukii.
Crucigenia generalmente vive en agua dulce y algo
cargada de materia orgánica (Guillén, 2008).
Dictyosphaerium
Fuente:http://protist.i.hosei.ac.jp/pdb/ima
ges/Chlorophyta/Dictyosphaerium/sp_1
b.html
Son formas de agregados coloniales, algas verdes
que viven en lugares en los que el agua se estanca.
Toma la luz del sol y los nutrientes disueltos en el
agua. Dictyosphaerium es una género de algas, de
la familia Dictyosphaeriaceae. Dictyosphaerium es
un género de hongos clasificadas en el grupo
"Hyphomycetes", aunque no se sabe mucho en
cuanto a su toxicidad, se sabe que tiene el potencial
para causar feohifomicosis. Se desarrolla en agua
dulce y hábitats terrestres, como saprobios común
de materias de la lignocelulosa sumergido (Guiry,
M.D. y Guiry, G.M. 2007).
102
Eudorina
Fuente: Guillén, 2008.
Es un alga verde, de la división Chlorophyta, de la
familia Volvocaceae. Forma colonias de 32
individuos, capaces de moverse en el agua gracias a
los flagelos que tiene. Parede una célula verde casi
esférica con dos largos filamentos con los que se
desplaza y tiene una pequeña mancha ocular roja.
Eudorina vive en las aguas superficiales de
estanques y lagos (Guillén, 2008).
Gloeocystis
Fuente: Jason Oyadomari.
Son algas clorophyceas de vida colonial, que
presentan varios cloroplastos de tamaño pequeño.
Habitan aguas limpias, formando parte del
fitoplancton (Guillén, 2008). Vive asociada a
Spirogyra y Cladophora (Pedro González
Guerrero)
Golenkinia
Fuente: Jason Oyadomari.
Es un alga verde de la división Chlorophyta.
Hydrodictyon
Fuente: Guillén, 2008.
Fuente: Guillén, 2008.
Hydrodictyon es tan frágil que sólo puede vivir en
aguas estancadas, limpias generalmente o
moderadamente contaminadas, se encuentra
dispersa aunque a veces puede desarrollarse de
forma masiva. Hydrodictyon reticulatum es una
alga verde que vive en aguas estancadas limpias o
moderadamente contaminadas y forma pequeñas
estructuras casi transparentes en forma de saco
(Guillén, 2008).
103
Micrasterias sp 1
Fuente: Guillén, 2008.
Micrasterias rotata es un alga verde del grupo de
los désmidos (Guillén, 2008).
Oocystis sp 1
Fuente: Guillén, 2008.
Oocystis es una de las numerosas algas verdes que
pueden vivir flotando formando parte del plancton
en las aguas dulces que se encuentran embalsadas
(Guillén, 2008).
Pediastrum sp 1
Fuente: Guillén, 2008.
Pediastrum gracillimum, es un alga, un conjunto de
individuos que forman una colonia y que flota
formando parte del plancton de las lagunas de
aguas limpias (Guillén, 2008).
Sphaerocystis
Fuente: Jason Oyadomari.
Sphaerocystis es un género común de aguas
naturales, y se encuentra distribuido en una gran
variedad de lagos, tanto de aguas duras como de
aguas blandas (Guillén, 2008).
Spirogyra
Fuente: Guillén, 2008.
Spirogyra es un alga filamentosa que forma masas
de aspecto algodonoso y que, generalmente, flotan
en el agua. Se trata de una de las algas más
comunes que habita tanto en aguas corrientes como
en aquellas que están estancadas (Guillén, 2008).
104
Staurastrum sp 1
Fuente: Guillén, 2008.
Fuente: Guillén, 2008.
Fuente: Guillén, 2008.
Staurastrum es uno de los géneros de algas que
habitan en los lagos y generalmente se presentan en
aguas duras. Staurastrum vive en aguas limpias de
cursos de agua lenta o charcas transparentes y
frescas. Son algas clorofíceas. Muchos désmidos
son excelentes bioindicadores debido a su
extremada sensibilidad frente a los cambios en su
medio; puede llegar a ser muy abundante en ellas
(Guillén, 2008).
DIVISIÓN CYANOPHYTA
Anabaena
Fuente: publicfiles.dep.state.fl.us -
/dear/labs/biology/hab/images/microgra
phs of cyanobacteria/
Es un alga Cyanophyta, es un género de
cianobacterias del orden Nostocales de
reproducción asexual y que es autótrofa por tener
una clorofila dispersa, común en agua dulce
(también se encuentran en aguas saladas y en
hábitats terrestres). Soporta condiciones
ambientales extremas (temperaturas de 73 °C). Es
una cianobacteria que produce floraciones tóxicas
(De León, 2001).
Anacystis
Fuente: Dr. Robert Calentine
Anacystis es una cianobacteria del género de alga
verde-azul de la clase Cyanophycea. Se encuentra
en aguas poco profundas o someras (Guillén,
2008).
105
Aphanocapsa sp 1
Fuente: cyclot.hp.infoseek.co.jp
Fuente:http://protist.i.hosei.ac.jp/pdb/ima
ges/Prokaryotes/Chroococcaceae/Aphan
ocapsa/Aphanocapsa.html
Es una Cyanophycea. La mayoría de las especies
crece en periphyton, bentos y metaphyton en aguas
naturales estancadas o corrientes de biotopos
(generalmente con agua clara). Es común en lagos
(Komárek & Hauer).
Gleocapsa
Fuente: Guillén, 2008.
Gloeocapsa es otra cianobacteria que da lugar a
formaciones coloniales esféricas. En la naturaleza,
Gloeocapsa crece formando masas mucilaginosas
amorfas que habitan sobre superficies rocosas
húmedas, también puede desarrollarse en el medio
acuático formando parte de las comunidades
flotantes. La mayor parte de ellas habitan en zonas
de montaña y algunas sólo se desarrollan sobre
substratos calizos mientras que otras lo hacen sobre
rocas silíceas (Guillén, 2008).
Gomphosphaeria
Fuente: Guillén, 2008.
esta pequeña especie junto con otro reducido grupo
de algas y cianobacterias es capaz de soportar
condiciones extremas de salinidad. El género
Gomphosphaeria comprende menos de una decena
de especies y pueden vivir en lagunas y cursos
fluviales de diferente naturaleza (Guillén, 2008).
Lyngbya
Fuente: http://www2.uca.es/grup-
invest/microbentos/PAGES/flyngbia.ht
m
Cianobacteria Lyngbia, se debe al continuo aporte
de nutrientes hacia un cuerpo de agua Está asociada
a fuentes de nitrógeno, prefiriendo orientaciones N
y NO (Guillén, 2008).
106
Merismopedia
Fuente: Guillén, 2008.
Merismopedia son algas microscópicas o más
raramente macroscópicas, que forman una placa de
células cuadrada o rectangular, con subcolonias que
se mantienen adyacentes. El género Merismopedia
es frecuente en aguas contaminadas, donde pueden
predominar solo en ciertas épocas (Guillén 2008).
Microcystis
aeruginosa
Fuente: Hans W. Paerl (Univ of North
Carolina, USA) & Jef Huisman (Univ of
Amsterdam, Netherlands):
„Blooms like it hot', Science, 4 April
2008.
La presencia de Microcystis es, en general, un
indicador de contaminación orgánica. Puede
reproducirse intensamente y prefiere los periodos
lluviosos.
El género Microcystis produce una hepatotoxina
que es inhibidora de la fosfatasa proteica tipo 1 y 2
(Chorus & Bartram, 1999) y cuya ingestión en altas
concentraciones ocasiona la muerte de animales.
Puede causar efectos acumulativos crónicos, como
tumores hepáticos. Durante el florecimiento de
estas especies, el aspecto del agua puede provocar
un rechazo para el hombre como consumidor, sin
embargo los animales no hacen este tipo de
distinciones, provocando intoxicaciones con
cianotoxinas. Las floraciones de cianobacterias son
fenómenos naturales que ocurren en cuerpos de
agua con altos niveles de nutrientes, alta
temperatura y condiciones de vientos escasos o
nulos. Estos fenomenos tienen gran importancia
ecologica y sanitaria, debido especialmente a la
sintesis de toxinas como metabolitos secundarios.
Se han encontrado floraciones de Microcystis
aeruginosa, una cianobacteria potencialmente
toxica de amplia distribucion mundial (De León,
2001).
Spirulina
Fuente: Guillén, 2008.
Spirulina suele vivir en zonas de aguas casi
estancadas y ricas en materia orgánica.
Actualmente algunas especies de Spirulina se
consumen como suplemento dietético por su alto
contenido en vitamina B12 y proteínas, aunque se
conoce que fueron ya empleadas hace siglos en la
alimentación por los aztecas quienes las extraían de
las lagunas próximas a sus poblaciones. A veces, si
las condiciones son favorables, se pueden
desarrollar de forma masiva (Guillén, 2008).
107
Tolypothrix
Fuente: Jason Oyadomari.
Crecen principalmente sumergidas, en el litoral de
embalses de agua no contaminada, o entre algas y
plantas acuáticas, en manantiales, arroyos, piscinas
y otros. Son ecológicamente limitadas, crecen en
páramos, pantanos alcalinos, en zonas de piedra
caliza. Muchas especies son conocidas en biotopos
tropicales (Komárek & Hauer)
DIVISIÓN CHRYSOPHYTA
Asterionella
Fuente: Guillén, 2008.
Asterionella es una diatomea, un alga individual.
Asterionella forma parte del plancton en lagos y
estanques y en ocasiones se desarrolla tanto que
crea colonias en el agua. No es una especie muy
común, le gusta vivir en zonas de agua de
corrientes lentas o en lagos y embalses, no es muy
exigente con su medio y puede habitar en aguas con
ligeros índices de contaminación orgánica, pero
siempre en medios algo alcalinos (Guillén, 2008).
Cyclotella
Fuente: Guillén, 2008.
Cyclotella es también una diatomea de agua dulce,
presenta forma de disco. Presenta estructuras
esféricas que se observan en el interior como si
fuesen burbujas, las que corresponden a vacuolas
cargadas de aceites y son empleadas por estos
organismos, como sustancias de reserva, como
flotadores, lo que permite a estas diatomeas situarse
en las zonas superficiales del agua en donde pueden
recibir luz con más facilidad (Guillén, 2008).
Diatoma
Fuente: Guillén, 2008.
Diatoma es una diatomea, que no soporta la más
mínima contaminación y por eso vive en los
arroyos pequeños o remansos poco profundos, de
agua fresca y oxigenada (Guillén, 2008).
Dinobryon
Fuente: Guillén, 2008.
Dinobryon es un alga flagelada, se asienta sobre la
superficie de otras algas filamentosas, para
acomodarse sobre el costado de Spirogyras y
Zygnemas, y tomar la luz del sol. (Guillén, 2008).
Dinobryon
sertularia
Dinobryon sertularia vive en zonas de aguas
estancadas ricas en sustancias nutritivas (Guillén,
2008).
108
Fragilaria
Fuente: Guillén, 2008.
Fragilaria es una diatomea que está presente tanto
en el agua dulce como en la salada. Por lo general
se asocia formando colonias que tienen aspecto de
cinta. Los cloroplastos se disponen en la parte
central de los diferentes individuos formando una
banda más oscura en esta zona (Guillén, 2008).
Melosira sp 1
Fuente: Guillén, 2008.
El género Melosira también es indicador de aguas
contaminadas por materia orgánica. Cuando este
género aparece en casi todos los sitios de muestreo,
confirma la contaminación por materia orgánica en
un lago. Es una de las diatomeas filamentosas más
comunes que habitan en las aguas continentales de
todo el planeta. Muchas de las especies de
Melosira son excelentes bioindicadores de la
calidad del agua (Guillén, 2008).
Navicula
Fuente: Guillén, 2008.
El género Navícula puede hallarse cubriendo, en
forma de capa de color pardo, piedras sumergidas.
Algunas especies son sedimentarias. Pueden crecer
en ambientes oscuros y carentes de CO2 porque
están constituidas de sustancias muy energéticas y
fácilmente digeribles. Se les conoce como especies
indicadoras de aguas limpias.
El género Navicula es uno de los más extensos
dentro de las algas diatomeas, vive tanto en aguas
dulces como saladas y son características de él, los
cloroplastos cilíndricos situados en los costados.
Pueden vivir en aguas limpias pero también en las
ligeramente contaminadas (Guillén, 2008).
Stauroneis
Fuente:http://133.25.19.145/PDB/images/
Heterokontophyta/Raphidineae/Stauron
eis/phoenicenteron/sp_04.html
Es una diatomea naviculiode. Se encuentra en
cuerpos de agua corriente dulce o salada, permanentes o estacionales (Salusso, M. 1996).
109
Synedra
Fuente: Guillén, 2008.
Synedra vive aislada y se desplaza libremente en el
agua. Se trata de especies que son bastante
tolerantes a aguas con porcentajes moderados o
medios de materia orgánica y, por tanto, poco
exigentes con la calidad de las aguas en las que
habitan. Las diatomeas del género Synedra son
relativamente comunes en casi todos los cursos de
agua, Synedra vive en aguas de distinta naturaleza
y soporta bien las cargadas de materia orgánica
(Guillén, 2008).
Tabellaria
Fuente: Guillén, 2008.
Tabellaria fenestrata es una diatomea que habita en
lagos de montaña, generalmente prefiere las aguas
ácidas y no tolera bien la contaminación (Guillén,
2008).
DIVISIÓN PYRROPHYTA
Peridinum sp.
Fuente:http://virtual.yosemite.cc.ca.us/r
anderson/Marine%20Invertebrates/dino
phyt.htm
Peridinium es un organismo fotosintético, los
dinoflagelados incluyen también formas que son
parásitas y que dependen de los nutrientes
orgánicos para poder sobrevivir y otros que
combinan ambos tipos de nutrición. Algunos
dinoflagelados son responsables de las mareas rojas
y acumulan en su interior potentes toxinas que
afectan seriamente a los moluscos filtradores e
indirectamente a los consumidores de estos
moluscos (Guillén, 2008).
IV.4.2 Mapas temáticos por parámetro medido, durante el desarrollo del proyecto.
Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
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Fuente: Datos experimentales, Proyecto FODECYT 25-2006.
PARTE V
V.1 INFORME FINANCIERO