banco de tejidos
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BANCO DE TEJIDOS
Laura SarmientoYennifer RojasOmar CasadiegoBrian Villamizar
Para que un banco de tejidos?
Entidad encargada de:I. ObtenerII. Procesar III. AlmacenarIV. Distribuir
Los diferentes tejidos a las diferentes instituciones que lo requieran
Clases de donantes
Donante vivo autólogo donante vivo alogènico Donante cadavérico
Pasos
1. Identificación donante potencial y remisión al banco de tejidos Nombre, apellido, edad y sexo Causa de la muerte Factores de riesgo para algunas
enfermedades Información clínica Lugar donde se encuentra el cuerpo Plan de traslado Información de contacto Responsable del hospital o funeraria
2. Establecer conveniencia La evaluación del donante debe incluir una entrevista con la familia u otra fuente
relevante estudio detallado de la historia médica y
comportamental examen físico completo los resultados de la autopsia resultados de los análisis de laboratorio
realizados.
3. Examen físico del donante potencial Búsqueda de tatuajes o pircing Búsqueda de drogadicción parenteral Lesiones en piel Riesgo y signos de VIH (condiloma
perianal, linfadenopatía diseminada, sarcoma de kapossi, candidiasis oral, etc)
Hepatitis Enfermedad sistémica
Pruebas serológicas Determinación de anticuerpos citotóxicos Determinación del grupo sanguíneo Determinación del antígeno D (Rh) Prueba de histocompatibilidad HLA Prueba serológica para la sífilis Detección de anticuerpos contra el virus de la Hepatitis C Detección del antígeno de superficie HBsAg Detección de anticuerpos totales contra el AntiHBc Detección de anticuerpos contra el virus HTLV 1 y 2 Detección de anticuerpos contra VIH 1 y 2 Detección de anticuerpos contra el Trypanosoma cruzi Detección de anticuerpos contra CMV Detección de anticuerpos contra EBV
Prueba Piel Cardiaco Osteomuscular
ocular
ABO X X X X
Rh X X X X
HLA X X X XSífilis X X X X
CHV X X X X
Ag HBs X X X X
Anti HBc X X X X
HTLV 1-2 X X X X
VIH 1-2 X X X X
Chagas X X X X
CMV X X X X
Selección, obtención, tratamiento, validación, almacenamiento y envío
Criterios médicos de selección Edad del donante Controles bacteriológicos Obtención de los tejidos
Criterios de exclusión Enfermedad o seropositividad del VIH; Enfermedad sistémica con efectos se veros sobre los tejidos que se trasplantarán Enfermedad personal o familiar de Creutzfeldt-Jakob y otras enfermedades priónicas Hepatitis viral Rabia Esclerosis lateral amiotrófica Esclerosis múltiple Otras enfermedades neurodegenerativas; Sepsis de origen viral, micótico o bacteriano; Tuberculosis activa
De acuerdo con lo establecido en el artículo 10 del Decreto 2350 de 2004, otros criterios de exclusión son:
Haber recibido transfusión de sangre o trasplante de órganos o tejidos en países conNotificación de EEB Haber recibido hormona de crecimiento de origen humano Habérsele practicado cirugía cefálica
Además, se deben considerar los siguientes aspectos:
Restricciones de edad para algunos tejidos Trauma o patología crónica del tejido Tumor o neoplasia del tejido Infección del tejido o médula ósea a extraer Tiempo específico de isquemia caliente antes de la extracción Función apropiada del tejido Envenenamiento con agentes tóxicos que son nocivos para el tejido en particular
Tiempos de isquemia caliente
Periodo que transcurre entre la detención de la circulación y el comienzo de la conservación en el cuarto frío
PIEL, TEJIDO OSTEMUSCULAR, CARDIOVASCULAR:
24 horas si se refrigera a 4°C 12 horas sin refrigerar en climas cálidos 15 horas sin refrigerar en climas fríos
TEJIDO OCULAR: el párpado se debe mantener cerrado
15 horas refrigerado a 4°C 6 horas no refrigerado
Tiempos de isquemia fríos
periodo de conservación en el cuarto frío
Tiempos de vida útil
Tiempo que transcurre desde el momento de la extracción o rescate hasta el momento en el que el tejido conserva las propiedades necesarias para transplante
PIEL: 10 años TEJIDO OSEO: 5 años TEJIDO CARDIOVASCULAR: 10 años TEJIDO OCULAR: conservación
teórica14 días, óptima 7 días en frigorífico 4ºC (primeras 72 h)- 31ªC
BANCO DE PIEL
La piel es el órgano más grande y más visible del cuerpo humano y uno de los más importantes. función de barrera participación en la termorregulación del
cuerpo humano función sensorial Excreción función inmune producción de melanina y vitamina D.
OPCIONES TERAPEUTICAS
Grandes quemaduras
Ulceras de distinto origen
Oclusión de heridas como cubierta biológica transitoria.
Cierre de heridas como sustitutos de piel de largo plazo
Heridas crónicas no cicatrizadas o de cicatrización lenta
Aloinjertos de piel Donante cadavérico
• Documentación del donante • Revisión historia clínica• Identificación donante• Verificar resultados serologías• Verificar tubos para serología BST• Establecer secuencia de la extracción • Examen físico
PREPARACIÓN EXTRACCIÓN
Estado de la piel, ictericia, integridad, heridas, hematomas, traumatismos. Valoración idoneidad de los tejidos durante el procedimiento
Criterios de exclusión de piel Lesiones cutáneas Adicción a drogas por vía parenteral Toxicidad aguda de la piel Enfermedades cutáneas estructurales Radioterapia o quimioterapia previa. Neoplasias malignas. Nevus de apariencia cancerosa, nevus múltiples o nevus
gigantes. Piel difícil de extraer Infecciones tales como sepsis o bacteremia, neumonía
bacteriana, meningitis o encefalitis, sífilis, lepra, entre otras.
Criterios de selección para donantes de piel
Edad 14-75años Que no posea ninguno de los criterios
de exclusión Tiempo de isquemia caliente
Obtención del tejido
Area de trabajo
PIEL Se extraerá piel de zonas no visibles
Espalda Miembro inferior derecho Miembro inferior izquierdo
NOTA: en cada uno de éstos 3 campos se utilizará instrumental diferente y contenedores diferentes
Protocolo de extracción Identificación del donante Código de identificación del donante
Protocolo de extracción
Recogida del tejido
Documentación Nombre y dirección de la institución que
realizó la extracción Fecha, lugar, hora y persona responsable de
la extracción Nombre, edad, sexo del donante Número o código de identificación Tejido específico que se extrajo tipo de solución utilizada durante la
extracción Firma de la persona responsable
Procesamiento
Solución criopreservante
MEM (DMEM) ………………………400ml ALBÚMINA HUMANA AL 20%... .......50ml GLICEROL………… ………………….50ml
Congelamiento
Desde 4°C hasta -80 °C con un descenso de 1°C por min
almacenamiento nitrógeno en fase de vapor «cuaretena» Nitrógeno líquido
Descongelación Baño de maría
Autoinjerto donante vivo
El banco de piel autóloga tiene como finalidad la criopreservación de piel desvascularizada en lesiones tipo «degloving» de las extremidades para autotransplantar el paciente en un segundo tiempo quirúgico.
No tiene tiempo de isquemia caliente El tiempo de isquemia fria debe
efectuarse lo antes posible Se realiza una exéresis quirúrgica lo
más cuidadosa posible, limpiando bien la piel. Se lava con jabón quirúrgico sin antisépticos ni cepillado
El hospital deberá remitir a hoja de consentimiento informado para autotransplante firmada por el paciente.
Control de calidad Control microbiológico que permita identificar como mínimo lo siguiente:
Staphylococcus coagulasa positivo; Streptococcus b - hemolítico; Pseudomona sp.; Serratia sp.; Klebsiella sp.; Proteus sp.; Enterobacter sp.; Candida sp.
BANCO DE TEJIDO OSTEOMUSCULAR
Banco de Tejido Osteomuscular
Entidad encargada de:I. ObtenerII. Procesar III. AlmacenarIV. DistribuirHueso, cartílago, tendones, ligamentos, fascias, meniscos.
“Las propiedades biomecánicas de este tejido permiten su uso para reparar defectos puntuales o como grandes piezas que se utilizan para remplazo total de zonas de hueso que deben ser extraídas.”
Usos del Tejido Osteomuscular
Cirugía ortopédica y traumatología
Cirugía maxilofacial e implantología
Otorrinolaringología
Cirugía urológica
Ligamentoplastia: Sustitución
Aporte óseo en fracturas: Regeneración
Cirugía tumoral: Sustitución
Aporte óseo: Sustitución luego de extraccion
Timpanoplastia: reparación tímpano
Tratamiento de la incontinencia urinaria: Injerto de fascia para reubicar vejiga
Comportamiento Biologico
V
Tomado de Fundacion Cosme y Damian: http://www.cydbank.org/index.php
Obtención de Tejido Osteomuscular
Selección del donanteVivo : en autoinjertos, remplazo de cadera por prótesis(cabeza femoral)Cadáver: grandes trozos óseos, y osteocondrales con o sin ligamentos
˂ 45 años Cartilagos, Meniscos y osteocondrales alograficos
˂ 55 años Tendones y Fascia lata
Cabeza de fémur y otros huesosSin restricción
Edad
Obtención de Tejido Osteomuscular
Selección del DonanteExamen físico e historia clínica
a) Segmentos esqueléticos grandes para ayuda estructural, el donante debe haber tenido un bajo riesgo de osteoporosis.
b) Segmentos metafisiarios y epifisiarios se obtienen para proporcionar una ayudaestructural, se debe considerar el cerramiento de las placas epifisiarias de crecimiento deldonante.
c) Se deben excluir donantes con irradiación local, infección del tejido, intoxicación aguda(cianuro, plomo, mercurio, oro) y osteoporosis establecida.
Obtención de Tejido Osteomuscular
Extracción del tejidoo Aviso a Médico equipo de guardia o Especifica características donante y tejidos a extraero Notifica al equipo hora inicio extraccióno Acuerda horario con transporte si desplazamientoo Verificación: instrumental quirúrgico, material fungible, medios
de preservación y antibióticos necesario en antequirófano
Pruebas analíticas: establecer el tipo de muestras que se va a remitir al laboratorio y las diferentes determinaciones que se van a efectuar sobre las mismas.
Evitar el riesgo de transmisión de enfermedades
Asegurar la idoneidad del tejido
Obtención de Tejido Osteomuscular Extracción del tejido
Tomado de: Francisco Javier Iglesias Muñoz. Establecimiento de Tejidos Humanos. Fundación Clínica San Francisco. León. 20 de Mayo de 2010
Procesamiento de Tejido Osteomuscular
Disección Los injertos extraidos se mantienen, a –4ºC, bajo estrictas normas
de asepsia Resultados definitivos de cultivos y de pruebas serológicas “Visto bueno” de seguridad Fase de limpieza y corte de
los injertos
Remoción de tejidos blandosInjertos limpios y cortados
Lavados a presión con agua estéril y/o sumergir en soluciones antimicrobianas
Tomado de Fundacion Cosme y Damian: http://www.cydbank.org/index.php
Almacenamiento del Tejido OsteomuscularAlmacenamientoEl tejido debe ser modificado o preservado para reducir su inmunogenicidad al trasplantarlos. Estos procesos de modificación son:
Congelamiento
Liofilización
Irradiación
– 85ºC y –160ºC
Deshidratación máxima
Extrae el 95% del agua
Se obtiene matriz ósea inorgánica
Esterilización 2ria Tx pierde
resistencia mecanica
Almacenamiento del Tejido Osteomuscular
Almacenamiento del Tejido Osteomuscular
Criopreservantes Dimetilsulfóxido (DMSO) y Glicerol Desciende el punto de congelación Regulan la cinética de deshidratación Estabilizan la membrana plasmática Reducen la lesión mecánica
+
Deshidratación irreversible
Cristales de Hielo
Almacenamiento de Tejido Osteomuscular
Se determina: Integridad tisular y viabilidad celular Límites de tolerancia en la utilización de
sustancias crioprotectoras Protocolos de almacenamiento debidamente
validados
Fecha de caducidad
Producto Final
Aloinjertos
Anatomía Procesamiento
Esterilización
Presentación
Cortical Fresco Procesado estéril
Polvo
Esponjoso Congelado Irradiado Particulado
Diafisiario Liofilizado Oxido de etileno
Gel
Osteocondral
Desmineralizado
Pasta
Bloques o tiras
Autoinjertos
Aspirado de médula ósea o de células osteogénicas procesadas
Hueso Esponjoso
Hueso cortical no vascularizado
Hueso vascularizado
Tomado de: Francisco Javier Iglesias Muñoz. Establecimiento de Tejidos Humanos. Fundación Clínica San Francisco. León.
Distribución del Tejido Osteomuscular
Transporte: asegurar que el tejido llega al destino sin que haya sufrido perdida significativa de las propiedades que lo hacen útil para trasplante.(T°, envasado.)
Decreto 2493 Art25: “Los componentes anatómicos serán distribuidos en el territorio nacional de manera tal que se garantice la equidad en la asignación de los componentes anatómicos sin discriminación alguna, por razones de origen familiar estrato socioeconómico, sexo, raza, lengua, religión, opinión política o filosófica.”
Lista de espera (Red de donantes) Urgencia Clínica
Tejido cardiovascular
Trasplante de tejido cardiovascular
Definiciones
Válvulas cardíacas protésicas (VCP): Compuestos artificiales concebidos para reemplazar una válvula cardíaca humana, que constan de un orificio a través del cual fluye la sangre y de un mecanismo oclusor que cierra y abre el orificio.
PRÓTESIS MECÁNICAS
Modelo jaula-bola
Lowell Edwards(izquierda) y
Albert Starr (derecha)
Válvula de flujo central
Válvula bivalva de St Jude Medical. Vistas de tres planos. Angulo de apertura de 85 grados. Dos valvas semicirculares están conectados con la cubierta del orificio por un mecanismo de bisagra tipo mariposa. Las hojas pivotean durante la apertura, creando 3 áreas del flujo, 1 central y 2 periféricos.
Válvula aórtica de Carbomedics (modelo Top Hat)
VÁLVULAS BIOLÓGICAS
Nomenclatura biológica
El autoinjerto (autograft) se refiere a una translocación dentro del mismo individuo, ejemplo: de la válvula pulmonar hacia la posición de la válvula aortica.
• El tejido valvular autógeno involucra la fabricación de una válvula de tejido no valvular del propio paciente, ejemplo: el pericardio.
• El aloinjerto (allograft) se refiere al trasplante de un donante de la misma especie; ejemplo: válvula pulmonar o aortica del donante hacia la posición aórtica o pulmonar del receptor.
• El heteroinjerto (heterograft) o xenoinjerto (xenograft), es cuando la válvula es trasplantada de otras especies, ya sea válvula intacta, ej., válvula aórtica porcina, o un modelo de válvula de tejido heterógeno, ejemplo: pericardio bovino.
Válvula de autoinjerto
Ross Granville Harrison
Biólogo y anatomista estadounidense
Válvulas pericárdicas autógenas.
Válvulas de homoinjerto o aloinjerto
Válvulas porcinas de heteroinjerto.
Válvulas pericárdicas bovinas
Válvula pericardica bovina de Carpentier- Edwards
Bioprótesis sin soporte (stenless)
Proceso de obtención del tejido
EL DONANTE
Los tres tipos de donantes para tejidos cardiacos y vasculares son:
• Donantes vivos:
• Donantes multiorgánicos con diagnóstico de muerte según criterios neurológicos (muerte cerebral):
• Donantes cadáveres:
Criterios de exclusión de tejido cardiovascular:
a)Historia o evidencia de endocarditis, miocarditis, fiebre reumática y otras enfermedadesvalvulares del corazón;b)Trauma de tórax particularmente trauma penetrante (incluyendo inyección intra cardiaca);c)Enfermedad infecciosa cardiaca;d) Enfermedad cardiaca valvular;e)Cirugía cardiaca previa de la válvula.
Controles de calidad
En válvulas cardiacas:4.1 Medición del diámetro interno (en mm)4.2 Medición de la longitud (en mm)4.3 Características de las válvulas
Competencia del aparato valvular4.5 Número de cúspides (estructuras en el borde de la válvula)4.6 Presencia de fenestraciones (defectos lineales)4.7 Ateromas (placas de tejido)4.8 Calcificaciones (depósitos de color blanco)4.9
Controles microbiológicos:a) Clostridium sp;b) Streptococcus pyogenes (grupo A);c) Staphylococcus aureus;d) Enterococos sp;e) Bacilos gram negativos;f) Hongos sp.
BANCO DE OJOS
BANCO DE OJOSEl papel y la función de un banco de ojos es obtener, evaluar, almacenar, distribuir córneas de donantes adecuados y otros tejidos oculares, y los cirujanos oftálmicos que necesitan para llevar a cabo los procedimientos de acuerdo con un horario regular.
EL OJO
La córnea es un tejido avascular
altamente especializado que refracta y transmite la luz.
Es aproximadamente el 0,5-mm de espesor, de forma centralizada y 1-mm de espesor
periféricamente.
Está delimitado externamente por un epitelio escamoso no queratinizado, que
descansa sobre un estroma de tejido homogéneo relativamente pobre en agua
SELECCIÓN DE DONANTESL
La selección de donantes de córnea potenciales se realiza a través deuna evaluación general de la siguiente información.
Historial médico y social
Edad, no hay limite de edad
examen post mortem
Serología para sífilis Detección de anticuerpos contra el
virus de la hepatitis C Detección del antígeno de superficie
del virus de la hepatitis B Detección de anticuerpos contra el
virus de la inmunodeficiencia humana 1 y 2
examen serológico inspección in situ del ojo donante
causa de la muerte hora de la muerte circunstancias de la muerte la historia clínica pasada reciente actividad y comportamiento que aumenta el
riesgo de enfermedades transmisibles.
Limite de tiempo para la extracción
El parpado se debe mantener cerrado, ya que esto y la refrigeración del cadáver puede prolongar el tiempo de extracción.
La extracción se acepta hasta 15 horas después de la muerte, si se aseguran las medidas protectoras
CRITERIOS DE EXCLUSIONHistoria De Retinoblastoma
Distrofia De Cornea
Queratocono
Uveítis
Cirugía De Cornea Incluyendo cirugía Con Laser
Ulceras
Infecciones De Ojo
Desordenes Congénitos O Adquiridos Del Ojo
Tecnicas de evaluación de córneas
TECNICAS DE EVALUACION DE CORNEAS
:
Evaluación En Lámpara De Hendidura
también llamada biomicroscopio, es un dispositivo óptico que se utiliza en oftalmología para la exploración de las estructuras de la
porción anterior del ojo
Evaluación Y Recuento De Células Endoteliales En Microscopio Especular
son necesarios para mostrar la morfología celular bueno, un recuento de células mínimo de 2000 células / mm ², y una ausencia
sustancial de pleomorfismo, o distrofia.
Paquimetria
es la medida del espesor del tejido corneal o grosor de la córnea, este examen puede ser realizado con diferentes métodos, por
ejemplo con ultrasonido. El método más moderno es a través de una tomografía, tridimensional de toda la extensión de la córnea y el
espesor en todos sus puntos
DECONTAMINACION DE OJOS DE DONANTES
Los ojos se enjuagan con agua del grifo y después se sumergieron en las soluciones
estériles siguientes
0,5% polivinilpirrolidona en H20 , pH 6,0 durante 2 minutos
0,1% de tiosulfato de sodio en la solución salina tamponada con fosfato (PBS) durante 1 minuto, y PBS, donde se dejan hasta que la escisión del botón corneo escleral se realiza
Este procedimiento ha sido descrito para reducir el porcentaje de ojos contaminados del 77% al
34%.
La tarea de reducir aún más la tasa de contaminación se deja a los antibióticos añadidos a las soluciones de almacenamiento de la córnea
ALMACENAMIENTOel almacenamiento corneal a 4 º C
se lleva a cabo en presencia de agentes deturgescent que, cuando
se añade a los medios de almacenamiento mantiene el
estroma pobre en agua y preservar la transparencia de la córnea
durante unos días.
Los medios más comúnmente utilizados corneales de
almacenamiento contienen dextrano y / o sulfato de condroitina como
agentes deturgescent.
Líquidos de almacenamiento también contener antibióticos (gentamicina sola o en combinación con
stretomicina) que, junto con la baja temperatura, impedir o limitar el crecimiento bacteriano.
Soluciones disponibles en el mercado también se
complementa con una serie de aditivos (fuentes de energía,
antioxidantes, componentes de estabilización de la membrana,
factores de crecimiento), pero su contribución específica para el almacenamiento corneal nunca
se ha aclarado.
ALMACENAMIENTOEl cultivo de órganos de almacenamiento consta de dos fases
un período de almacenamiento en medio de cultivo (EMEM modificada) sin
agentes deshidratantes,
una fase más corta de-hinchazón y el transporte en el
mismo medio suplementado con dextrano.
Cultivo de órgano de medios contiene penicilina, estreptomicina y nistatina (o
anfotericina B), para contrarrestar el crecimiento de contaminantes
microbiológicos.
Un periodo de almacenamiento de 35 días se puede lograr sin una pérdida
significativa de las células endoteliales.
CAMPOS DE APLICACIONLa córnea y otros tejidos relacionados con ella pueden obtenerse de diferentes
maneras:
Córnea para queratoplastia
Penetrante (preservada en Optisol-GS® a
4ºC y preservada en cultivo a 31ºC en medio E-
MEM)
Tejido Ocular para
queratoplastia Lamelar (Globo
ocular en cámara
húmeda a 4ºC y córnea en
Optisol-GS® a 4ºC)
Tejido Ocular para trasplante
de Limbo (Globo ocular
en cámara húmeda a 4ºC y
córnea en Optisol-GS® a
4ºC)
Esclera (en etanol al 70% a
temperatura ambiente)
La cultura de la donación y el trasplante …..un reto de todos.
GRACIAS