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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TRABAJO DE TITULACIÓN
Previo a la obtención del Título de:
MEDICA VETERINARIA ZOOTECNISTA
TEMA:
Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum en
caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
Autor:
Fernanda Carolina Aspiazu Tigrero
Tutor:
Dr. Luis Salcedo Rosales
Vinces - Los Ríos - Ecuador
2015
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TRABAJO DE TITULACIÓN
Previo a la obtención del Título de:
MEDICA VETERINARIA Y ZOOTECNISTA
TEMA:
Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum en
caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
Autor:
Fernanda Carolina Aspiazu Tigrero
Tutor:
Dr. Luis Salcedo Rosales
TRIBUNAL DE SUSTENTACION
APROBADO POR:
-------------------------------------
Dr. Omar Reyes Echeverría M.Sc Presidente
---------------------------------- ---------------------------------- Dr. Rafael Aspiazu Pimentel Dr. Mario Mora Montes M.Sc
Primer vocal Segundo Vocal
---------------------------------------------------
Fernanda Carolina Aspiazu Tigrero
La responsabilidad y patrimonio intelectual del
contenido de este Trabajo de Titulación,
corresponde exclusivamente al autor, de la misma a
la Facultad de Ciencias para el Desarrollo de la
Universidad de Guayaquil.
DEDICATORIA
Este trabajo de investigación está dedicado todo mi Amor, Gratitud y Respeto a Dios que
me permitió realizarlo con éxito y me ayudo cada día brindándome salud, sabiduría y
fortaleza.
También de manera especial a mis PADRES, Rogelio Aspiazu y Peety Tigrero con su
apoyo incondicional y cariño estando conmigo durante todos mis años de estudios, que me
han dado el valor de cumplir una meta más en mi vida.
A mis hermanos, Ángel, Juan Carlos y Karla que con su cariño de todos los días me
supieron brindan apoyo incondicional en todos los momentos de mi vida.
AGRADECIMIENTO
Dejo constancia de mi agradecimiento a Dios y a la Universidad de Guayaquil y por su
intermedio a la Facultad de Ciencias para el Desarrollo habiéndome permitido formarme
profesionalmente y los docentes por brindarme conocimientos día a día.
Quiero agradecer también a mi tutor el Dr. Luis Salcedo Rosales por guiarme en cada paso
del desarrollo de la Investigación.
Y finalmente agradezco también de manera especial a mis amigos Dr. Omar Reyes,
Dr. Abel Mora y Dr. Emilio Wong por haberme brindado su amistad y apoyo durante mis
años de estudio.
I
INDICE GENERAL
I. INTRODUCCIÓN ...................................................... ¡Error! Marcador no definido.
1.1 Antecedentes ....................................................... ¡Error! Marcador no definido.
1.2 Justificación ........................................................ ¡Error! Marcador no definido.
1.3 Situación problematizadora ................................. ¡Error! Marcador no definido.
1.2.1 Descripción del problema. ................................ ¡Error! Marcador no definido.
1.2.2 Problema. ......................................................... ¡Error! Marcador no definido.
1.2.3 Preguntas de la investigación............................ ¡Error! Marcador no definido.
1.2.4. Delimitación del problema. ............................. ¡Error! Marcador no definido.
1.4 Objetivos ............................................................ ¡Error! Marcador no definido.
1.4.1 Objetivo general. ................................................. ¡Error! Marcador no definido.
1.4.2 Objetivos específicos. ......................................... ¡Error! Marcador no definido.
II. MARCO TEORICO .................................................. ¡Error! Marcador no definido.
2.1 Generalidades de los parásitos intestinales .......... ¡Error! Marcador no definido.
2.2 Parásitos ............................................................. ¡Error! Marcador no definido.
2.2.1 Parásitos externos. ............................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.2.2 Parásitos internos. ................................................ ¡Error! Marcador no definido.
2.3 Zoonosis Parasitarias........................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.4 Clasificación de los Parásitos .............................. ¡Error! Marcador no definido.
2.5 Ciclo biológico ................................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.6 Respuesta del hospedador frente a los parásitos ... ¡Error! Marcador no definido.
2.6.1 Especificidad parasitaria. ..................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.6.2 Acción de los parásitos sobre sus hospedadores. .. ¡Error! Marcador no definido.
2.7 Patogenicidad...................................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.8 Parásitos Gastrointestinales ................................. ¡Error! Marcador no definido.
2.9 Control y prevención ........................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.10 Diagnostico ....................................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.10.1 Examen microscópico. ....................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.10.2 Método de frotis directo. .................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.10.3 Método de Sedimentación. ................................. ¡Error! Marcador no definido.
2.10.4 Método de Enriquecimiento Cualitativo o Flotación. ......... ¡Error! Marcador no
definido.
2.10.5 Método de Concentración Formol-Éter (Técnica de Ritchie) ... ¡Error! Marcador
no definido.
II
2.11 Parásitos gastrointestinales zoonósicos .............. ¡Error! Marcador no definido.
2.11.1 Protozoos. .......................................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.11.2 Giardia lamblia. ................................................. ¡Error! Marcador no definido.
2.11.3 Helmintos. ......................................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.11.4 Nemátodos......................................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.11.5 Céstodos. ........................................................... ¡Error! Marcador no definido.
2.12 Parásitos gastrointestinales en seres humanos. ... ¡Error! Marcador no definido.
III. MARCO METODOLOGICO ................................. ¡Error! Marcador no definido.
3.1 Área de estudio ................................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.1.1 Localización. ....................................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo. .................. ¡Error! Marcador no definido.
3.1.3 Clima. .................................................................. ¡Error! Marcador no definido.
3.2 Universo ............................................................. ¡Error! Marcador no definido.
3.3 Muestra ............................................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.4 Tamaño de la muestra ......................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.5 Tipo de muestreo ................................................ ¡Error! Marcador no definido.
3.6 Metodología ........................................................ ¡Error! Marcador no definido.
3.6.1 Registro de datos. ................................................ ¡Error! Marcador no definido.
3.6.2 Toma de muestras. ............................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.6.3 Transporte de muestras. ....................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.6.4 Preparación de la placa. ....................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.6.5 Observación e identificación de la estructura de los huevos de parásitos. ....¡Error!
Marcador no definido.
3.7 Materiales ........................................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.7.1 De laboratorio. ..................................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.7.2 Biológicos. .......................................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.7.3 Químicos. ............................................................ ¡Error! Marcador no definido.
3.7.4 Para la toma de muestras...................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.8 Análisis estadístico.............................................. ¡Error! Marcador no definido.
3.8.1 Métodos............................................................... ¡Error! Marcador no definido.
3.9 Datos evaluados .................................................. ¡Error! Marcador no definido.
III
IV. RESULTADOS ........................................................ ¡Error! Marcador no definido.
4.1 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos¡Error! Marcador no definido.
4.2 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según sexo¡Error! Marcador
no definido.
4.3 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según sexo en los dos sectores
analizados ................................................................. ¡Error! Marcador no definido.
4.4 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según edad¡Error! Marcador
no definido.
4.5 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según edad en los dos sectores
analizados ................................................................. ¡Error! Marcador no definido.
4.6 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según raza¡Error! Marcador
no definido.
4.7 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según raza en los dos sectores
analizados ................................................................. ¡Error! Marcador no definido.
4.8 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según sectores analizados
................................................................................. ¡Error! Marcador no definido.
4.9 Sitios de mayor incidencia en la ciudad de Vinces¡Error! Marcador no definido.
4.10 Sitios de mayor incidencia en la parroquia Antonio Sotomayor¡Error! Marcador
no definido.
V. DISCUSIÓN............................................................... ¡Error! Marcador no definido.
VI. CONCLUSIONES .................................................... ¡Error! Marcador no definido.
VII. RECOMENDACIONES......................................... ¡Error! Marcador no definido.
VIII. BIBLIOGRAFÍA ................................................... ¡Error! Marcador no definido.
IX. ANEXO....................................................................¡Error! Marcador no definido.7
IV
INDICE DE CUADROS
Cuadro 1 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor. .......... 28
Cuadro 2 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según sexo.
................................................................................................................. 29
Cuadro 3 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según sexo
en los dos sectores analizados……………………………………………...30
Cuadro 4 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según
edad…………………………………………………………...……………31
Cuadro 5 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según edad
en los dos sectores analizados……………………………..……………….32
V
Cuadro 6 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según
raza………………………………………………………..………………..33
Cuadro 7 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según raza en
la ciudad de Vinces……………………………………………………………34
Cuadro 8 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según raza en
la parroquia Antonio Sotomayor………………………………………………35
Cuadro 9 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según
sectores………………………………………………………………………36
VI
RESUMEN
La investigación consistió en la determinación de la incidencia de parásitos
gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la cuidad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor, se
realizo mediante el método de laboratorio de frotis directo. Uno de los objetivos
específicos fue determinar la incidencia de acuerdo al sexo, edad y raza para lo cual se
examinaron 147 muestras de las que fueron 136 positivas que representó el 92,51 % y 11
negativas con el 12,22 %. Con respecto al sexo se analizaron 71 machos de los cuales
resultaron positivas representando el 52,21 % y de las 76 hembras 65 fueron positivas es
decir el 47,79 % a parasitosis gastrointestinal zoonósicas. Referente a la edad los animales
investigados menores a un año se estudiaron 67 de los cuales 61 muestras se presentaron
positivas con un 45,58 % y los mayores a un año se analizaron 80 caninos de las cuales
fueron positivas 75 muestras que fueron 55,15 %. De acuerdo a las razas investigadas los
caninos de razas pequeñas fueron 34 de las que resultaron positivas 30 que representan el
22,06 %, de las razas medianas 51 en estudio de las resultaron positivas 45 con el 56,96 %
y de las razas grandes 21 de las que fueron positivas 20 con el 14,71 %; Otro de los
objetivos específicos consistió en identificar geográficamente los sitios de mayor
incidencia donde el sector con mayor número de casos fue en la parroquia Antonio
Sotomayor.
VII
Summary
The research consisted of determining the incidence of zoonotic gastrointestinal parasites:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum in dogs from
the city of Vinces and parish Antonio Sotomayor, was performed by the laboratory method
of direct smear. One of the specific objectives was to determine the incidence according to
sex, age and race for which 147 samples of which 136 were positive which represented
92,51 % and 11 negative with 12,22 % were examined. 71 regarding sex male which were
analyzed were positive representing 52,21 % and 76 females 65 were positive 47, 79 % to
gastrointestinal zoonotic parasitosis. Regarding age investigated animals under one year
were studied 67 samples of which 61 were presented with a 45,58 % positive and higher
than one year of which 80 dogs were analyzed 75 samples that were positive were
55,15 %. According to the races investigated small breed canines were 34 of which were
positive 30 representing 22,06 % of medium-sized breeds 51 were positive study of 45
with 56,96 % and large breeds 21 of 20 were positive with 14,71 %; Another specific
objective was to identify sites geographically higher incidence where the sector with the
highest number of cases was in the parish Antonio Sotomayor.
1
I. INTRODUCCIÓN
Las infestaciones parasitarias gastrointestinales en los caninos comprenden procesos
clínicos muy comunes, causando daños en la salud de las mascotas; caracterizadas por
producir sintomatologías intestinales inespecíficas, procesos que pueden ser agudos,
subagudos y crónicos; lo que puede llevar a la muerte del animal.
Al evaluar las parasitosis en términos económicos, se refleja la verdadera importancia que
tiene para un sector determinado; donde por lo general los conceptos que se toman en
consideración para efectuar dichas valorizaciones, son los gastos causados por atención
médica, hospitalización y medicinas.
Las condiciones de temperatura y humedad del medio favorecen el desarrollo de los
parásitos, por lo tanto es primordial un control adecuado de estos mediante la prevención;
ya que muchos de ellos son zoonósicos, causando enfermedades graves en los seres
humanos.
El tracto gastrointestinal de los caninos está expuesto de manera constante a la
colonización de varios agentes patógenos propios de cada especie; lo mismos que
favorecen la transmisión a los animales susceptibles ya que la epidemiología de las
parasitosis es muy variado; lo cual depende de la especie de parásito, área geográfica y
estado general del hospedador.
Los parásitos intestinales en caninos poseen una amplia distribución a nivel del globo
terráqueo, se debe resaltar que su frecuencia y prevalencia pueden variar de acuerdo a las
regiones, épocas del año, patrones culturales y técnicas de diagnóstico (Tortolero, Cazorla,
Morales, & Acosta, 2008).
Según la Organización Mundial de la Salud (OMS) en Ecuador la parasitosis humana
se distribuye principalmente en las zonas rurales de la región Andina, donde se estima que
la prevalencia oscila entre el 24,0 % y 53,0 % en caninos.
2
1.1 Antecedentes
Los parásitos intestinales se encuentran ampliamente distribuidos en la población canina y
los efectos de estos parásitos en la salud de las mascotas, son considerablemente mayores
en lugares donde los perros no reciben ninguna atención. Estas infecciones representan un
problema potencial en salud pública en diversas partes del mundo (Alfaro, 2013).
En la ciudad de Pasaje se realizó un estudio sobre parásitos gastrointestinales en
caninos donde se muestrearon 200 animales, de los cuales 121 resultaron ser positivos,
dando una infección porcentual de 60,5 %. (Marquez, 2014)
En el Sector de Carapungo de la Administración Zonal Calderón del Distrito
Metropolitano de Quito se realizó una investigación sobre parásitos gastrointestinales
zoonósicos donde se estudió 323 animales de las cuales resultaron positivas 291 con el
60,48 % (Chicaiza, 2010).
Según otra investigación realizada en la Ciudad de Cuenca se analizó 382 muestras
en caninos, donde se presentó 15,45 % de muestras positivas, de éstas el 13,61 %
corresponden a Nemátodos y el 1,83 % a los Céstodos (Lema, 2012).
3
1.2 Justificación
Las parasitosis en caninos producen el deterioro de la salud produciendo cuadros agudos y
crónicos causando sintomatologías como diarrea, anorexia, disminución del apetito,
interferencia en la absorción y conversión de nutrientes, obstrucción intestinal que pueden
provocar la muerte del animal. Dada la trascendencia de estas infestaciones, es necesario
que quienes forman parte de la Medicina Veterinaria se preocupe en diseñar y desarrollar
investigaciones encaminadas a solucionar los problemas más importantes de los sectores
de mayor riesgo, con el objeto de mejorar la calidad de vida de sus integrantes, priorizando
siempre el bienestar animal, que nos permita en base a los resultados obtenidos sugerir
campañas o programas de control.
Por lo tanto en este trabajo de investigación se determinó la incidencia de parásitos
gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor en caninos,
según raza, sexo, edad. Esto ayudará a establecer medidas de prevención, control y
erradicación, encaminadas a disminuir la transmisión y muerte de los perros por
enfermedades parasitaria
1.3 Situación problematizadora
1.2.1 Descripción del problema.
Las infecciones parasitarias gastrointestinales son causadas por diversas especies de
parásitos, produciendo en los caninos problemas nutricionales y de salud; además de que
pueden causarle la muerte; si no son tratadas adecuadamente. Así mismo producen un
problema económico considerable, por los gastos que representa, ya que son enfermedades
parasitarias zoonósicas.
1.2.2 Problema.
Alta incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos en caninos que causan
enfermedades que deterioran la salud de las mascotas, causando un problema de salud en la
ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor.
4
1.2.3 Preguntas de la investigación.
¿Cuál fue la incidencia de parasitosis en caninos en la ciudad de Vinces y parroquia
Antonio Sotomayor?
¿Cómo se distribuyó las infestaciones parasitarias en la población en estudio de los
caninos domésticos por edad, sexo y raza?
¿Cómo se ubicó geográficamente los resultados obtenidos?
1.2.4. Delimitación del problema.
La presente investigación se realizó en la Ciudad de Vinces y Parroquia Antonio
Sotomayor perteneciente a la provincia de Los Ríos, durante los meses diciembre de 2014
a febrero de 2015.
1.4 Objetivos
1.4.1 Objetivo general.
Determinar la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis,
Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de
Vinces y parroquia Antonio Sotomayor.
1.4.2 Objetivos específicos.
Evaluar la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis,
Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum mediante el método
de laboratorio de frotis directo.
Determinar la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara
canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum en caninos en
función de sexo, edad y raza.
Identificar geográficamente los sitios de mayor incidencia.
5
II. MARCO TEORICO
2.1 Generalidades de los parásitos intestinales
Los parásitos intestinales son aquellos que pueden vivir y parasitar el tracto gastrointestinal
de los animales. Existen varios tipos de parásitos que pueden infestar a los perros de los
cuales existen dos tipos diferentes que son los redondos y los planos o tenías; otro tipo de
parásitos importantes son los protozoos organismos unicelulares como la Giardia. Algunos
de estos parásitos son zoonósicos y por la tanto pueden infestar a las personas (Minovich,
Paduli, & Rossano, 2002).
2.2 Parásitos
Se define como parásito a todo ser vivo vegetal o animal, que pasa toda su vida o parte de
está a expensas de otro ser vivo conocido como huésped, del que se alimenta absorbiendo
sus nutrientes del cual tendrá una dependencia obligada (Saredi, 2002).
Son organismos que dependen de la energía de un huésped para poder sobrevivir.
Algunos parásitos se alimentan del huésped absorbiendo sangre y nutrientes para su propio
beneficio. Otros absorben parte de la comida que el huésped come estos pueden diseminar
enfermedades y causar muchos problemas de salud en mascotas y seres humanos pueden
ser de dos tipos parásitos externos e internos (Lacoma, 2004).
2.2.1 Parásitos externos.
“Son aquellos que viven fuera del organismo del animal con son las pulgas, piojos,
garrapatas, etc. Son fáciles de detectar con algunas excepciones, por ejemplo los agentes
productores de la sarna” (Fernandez, 2007).
2.2.2 Parásitos internos.
Los parásitos internos en general viven en el huésped por más tiempo que los externos. El
ciclo de vida de un parásito interno requiere que pasen algún tiempo en el cuerpo antes de
retirarse o morir. Algunos de ellos permanecen en el huésped por largo tiempo o parte de
su ciclo, afectando los tejidos, los sistema digestivo, vascular, pulmonar etc (Lacoma,
2004).
6
2.3 Zoonosis Parasitarias
Una zoonosis es una enfermedad que puede transmitirse de los animales vertebrados a los
seres humanos. La palabra se deriva del griego zoon (animal) y nosos (enfermedad). En
general se trata de enfermedades que existen normalmente en los animales vertebrados,
pero también afectan a los humanos (Yssik, 2010).
2.4 Clasificación de los Parásitos
Protozoos.
1. Protozoos intestinales
2. Protozoos hemáticos
3. Protozoos tisulares y otras localizaciones
Helmintos.
1. Nematelmintos o nemátodos
2. Platelmintos o céstodos
2.5 Ciclo biológico
Es el proceso mediante el cual se realizan una serie de transformaciones, de cambios y
metamorfosis, comenzando desde su fase de huevo o larva hasta alcanzar su total
desarrollo y madures sexual (Soulsby, 2001).
2.6 Respuesta del hospedador frente a los parásitos
2.6.1 Especificidad parasitaria.
La compatibilidad del parásito con el hospedador se basa en los mecanismos de
reconocimiento, que su origen y especificidad se deben al hospedador. Sin embargo las
bases moleculares de la especificidad parásito-hospedador son muy poco conocidas
(Soulsby, 2001).
7
La especificidad parasitaria podría definirse como la adecuación de las especies de
parásitos a ciertas especies de hospedadores o grupos de estos. Entendiéndose por
adecuación como el conjunto de características ecológicas, etológicas, fisiológicas y
bioquímicas que hacen posible la existencia de fenotipos compatibles entre un hospedador
individual y un parásito individual (Cordero, Campillo, & Vasquez, 1999).
2.6.2 Acción de los parásitos sobre sus hospedadores.
Los efectos son muy diversos en algunos casos representan una combinación de varias
sintomatologías, los parásito compiten con el hospedador por el alimento y puede ser causa
de la pérdida de apetito del hospedador, destrucción de tejidos, líquidos biológicos y
eliminación de toxinas (Soulsby, 2001).
2.7 Patogenicidad
Los mecanismos de patogenicidad parasitaria son: directos e indirectos, estableciéndose
distintas categorías dentro de cada grupo. Los efectos directos se producen como
consecuencia de la invasión, establecimiento, alimentación y multiplicación en el
hospedador; los indirectos tienen con frecuencia una influencia mayor que los directos en
la productividad y bienestar del hospedador (Andrews, 1999).
La patogenicidad está relacionada con la morbilidad y mortalidad, en algunos tipos
parásitos patógenos la presentación de las sintomatologías dependen de las características
del huésped, que puedan producir o no la enfermedad. Por esta razón existen portadores
sanos y parásitos oportunistas que se manifiestan en pacientes inmuno-comprometidos
(Saredi, 2002).
2.8 Parásitos Gastrointestinales
Los parásitos son capaces de causar sintomatología intestinal o localizarse en algún tramo
del tubo digestivo, son numerosos tanto protozoos como metazoos o helmintos. Algunos de
ellos tienen un papel patógeno, otros pueden ocasionar alteraciones intestinales y
complicaciones extra intestinales graves (Garcia, 2013).
8
2.9 Control y prevención
Las medidas recomendadas por lo general son, desparasitación de perros con tratamientos
preventivos apropiados, reducción del número de animales sin dueño, así como de
animales de compañía mal cuidados, prevención de la defecación de los animales de
compañía en pavimentos o áreas públicas, fomentar el concepto de responsabilidad de los
dueños de animales de compañía, educar al dueño de mascota sobre el potencial zoonósico
de los parásitos de perros y gatos (Sixtos, 2010).
2.10 Diagnostico
Los parásitos gastrointestinales pueden ser investigados al examinar muestras fecales con
las diferentes técnicas, como son: frotis directo, sedimentación, flotación esta última
técnica es la más utilizada en la práctica de clínica en animales de compañía.
2.10.1 Examen microscópico.
Al realizar el estudio de una laminilla con un frotis directo de heces, una flotación, o un
extendido de sangre, es conveniente hacerlo a profundidad para obtener un diagnóstico
confiable. Una laminilla fecal preparada es tridimensional: tiene largo, ancho y
profundidad. Los parásitos más pequeños como Giardia o coccidias pequeñas, se
encontraran en la primera capa. La siguiente capa hacia abajo contendrá los huevos
grandes, ooquistes y larvas en caso de estar presentes (Sixtos, 2010).
2.10.2 Método de frotis directo.
Este método es sencillo, rápido y económico no requiere mucho material, es utilizado para
el diagnóstico de los protozoarios intestinales y otros tipos de parásitos, se lo utiliza para la
identificación de quistes, huevos y larvas; se lo realiza utilizando muestras frescas de heces
y consiste en aplicar una gota de solución salina, otra de lugol en cada extremo en un porta
objeto con la misma cantidad de heces y se observa al microscopio (Todd, 2005).
9
2.10.3 Método de Sedimentación.
Es la más usada para identificación de huevos de alto peso, como los de F. hepática y
Paraphistomun, que tienden por ello sedimentar con facilidad, esto se basa en que el
tiempo de caída de los huevos es de 100 mm/min., de donde el tiempo de sedimentación no
debe sobrepasar los 5 minutos, la sensibilidad de TSR de lumbreras es de 65%, indicada
como una prueba sencilla, de bajo costo, útil para el diagnóstico y control terapéutico.
(Lumbreras, Cantella, & Burga, 2000)
2.10.4 Método de Enriquecimiento Cualitativo o Flotación.
Este método consiste en concentrar los elementos parasitarios por centrifugación para
ayudar a la flotación, por medio de una solución saturada de cloruro de zinc (ZnCl2) más
cloruro de sodio (NaCl), con una densidad aproximada de 1 500 rpm por dos minutos
(Raether, 1993).
2.10.5 Método de Concentración Formol-Éter (Técnica de Ritchie)
Consiste en concentrar únicamente los componentes los parásitos, eliminando las grasas
por acción del éter, a la vez conservando y fijando, quistes de protozoos, huevos de
helmintos por el formol, es un procedimiento muy sencillo de bajo costo por su
sensibilidad (Lumbreras, Cantella, & Burga, 2000).
2.11 Parásitos gastrointestinales zoonósicos
2.11.1 Protozoos.
Los protozoos son seres vivos unicelulares, eucarióticos, heterótrofos y depredadorese se
multiplican por mitosis o por reproducción sexual, al menos en un estadio de su ciclo
biológico además son móviles y utilizan distintos sistemas de locomoción son parcialmente
autótrofos; viven en ambientes húmedos o en medios acuáticos, ya sean aguas saladas o
aguas dulces (Rangel, 2011).
10
2.11.2 Giardia lamblia.
La Giardia es un parásito protozoario flagelado, de aspecto periforme que reside en el tubo
intestinal de perros, tiene dos formas: trofozoítos y quiste. El trofozoito es la forma móvil
con un largo de 15 µm, ancho de 8 µm (Barr, 1993).
2.11.2.1 Escala zoológica.
Reino: Sarcomastigophora
Filo: Mastigophora
Clase: Zoomastigophorea
Orden: Diplomonadida
Familia: Hexamitidae
Género: Giardia
Especies: Giardia lamblia (Levine & Corlis, 1980)
2.11.2.2 Características morfológicas.
Los Trofozoito es la forma activa, residente intestinal, con un largo de 12-17 µm; ancho de
7,6-10 µm a la microscopía se la conoce como una “cara sonriente” formada por dos
núcleos en el tercio anterior “ojos” los axonemas que pasan longitudinalmente entre los
núcleos “nariz” y cuerpos medianos de ubicación transversal en el tercio posterior “boca”
(Barr & Stephen, 1994).
El Quiste es el estadio inactivo, de morfología elipsoidal, resistente y responsable de
la transmisión, con un largo de 9-13 µm y ancho de 7-9 µm. contiene dos trofozoítos
formados no del todo separados, pueden verse los axonemas, fragmentos de los discos
ventrales y hasta cuatro núcleos, la resistente pared quística está formada por una capa
filamentosa externa y una capa membranosa interna, su grosor es de 0,3-0,5 µm. (Barr &
Stephen, 1994)
11
2.11.2.3 Ciclo Evolutivo.
La Giardia presenta un ciclo directo el huésped se infecta con la ingestión de quistes, los
cuales se localizan en el duodeno, luego de la exposición al ácido gástrico y enzimas
pancreáticas. Allí el quiste se abre liberando los dos trofozoítos desde su interior, los que
se separan y maduran con rapidez, fijándose al epitelio velloso (en el área glandular
intestinal). En los perros el parásito fue aislado desde el duodeno hasta el íleon; mediante
la prueba de endoscopia en animales sintomáticos. Los trofozoítos se multiplican en el
intestino, por fisión binaría, y luego se enquistan mediante un mecanismo y localización
que son desconocidos. Los quistes son expulsados con las heces 1-2 semanas después de la
infección (Barr & Stephen, 1994) . (Anexo 1)
2.11.2.4 Síntomas.
Generalmente esta enfermedad no presenta síntomas clínicos, sin embargo, son perros de
bajo peso que no responden a tratamientos con vitaminas o tónicos y que además, son
susceptibles a contraer otras enfermedades digestivas; no obstante, al realizarles un examen
coproparasitario, dan positivo al diagnóstico de quistes de giardia. En el caso de presentar
síntomas, el signo clínico más común es la diarrea, la cual puede tener diferentes
intensidades, puede ser aguda, de corta duración, intermitente o crónica. Las deposiciones
son pálidas, malolientes y esteatorreicas, debido a que el parásito induce una mala
absorción (Ochoa, 2011).
2.11.2.5 Tratamiento.
El fenbendazol en la actualidad es el único tratamiento autorizado para giardiosis en
perros, presenta la ventaja de no producir efectos adversos. Dosis: 50 mg/kg cada 24 horas
durante tres días, se puede utilizar en animales gestantes; el Metronidazol 22 mg/kg dos
veces al día durante 5-6 días, es relativamente seguro y eficaz pero no debe utilizarse en
animales gestantes. Este fármaco puede producir anorexia, vómito, letargia,
hepatotoxicidad, neutropenia y además puede inducir signos neurológicos, especialmente
en dosis elevadas (Moya, 2011).
12
2.11.2.6 Control y prevención.
Un tratamiento adecuado asociado a buenas medidas higiénico-sanitarias, lograra controlar
el proceso de la infección, además del tratamiento de aguas residuales y de consumo, la
detección y tratamiento de animales portadores y enfermos, así como el manejo adecuado
de los animales, son medidas para la aplicación de un buen programa de prevención
(Moya, 2011).
2.11.3 Helmintos.
El término helminto procede del griego helmins, que significa literalmente “gusano”. El
término gusano se emplea para designar a todo aquel organismo pluricelular, de pequeño
tamaño que se arrastra. Desde el punto de vista de la Parasitología, el término helminto se
emplea para referirse, principalmente a tres grupos concretos de invertebrados, que
corresponden a filos: Platelmintos, Nemátodos y Acantocéfalos. (Garcia, Muñoz, Aguirre,
Polo, & Refoyo, 2008)
Los helmintos son gusanos parásitos que viven dentro o fuera de sus hospedadores,
alimentándose de sus nutrientes. Estos parásitos a mayor cantidad producen más daños.
Existen de dos tipos los gusanos redondos, como las lombrices intestinales Ascaris
lumbricoides, planos como las tenias la Taenia solium y las Fasciola hepática. Sus ciclos
de vida son directos en algunos casos, como la lombriz intestinal que se adquiere por
ingestión de huevos en la tierra o por penetración activa de la larva por la piel, como es el
caso de Ancylostoma duodenale (Desiree, 2013).
2.11.4 Nemátodos.
Los nemátodos son gusanos redondos, no segmentados, especies libres y parásitas, cuya
morfología es básicamente semejante. El cuerpo es filiforme, con simetría bilateral, pero
las hembras de algunas especies desarrollan dilataciones corporales más o menos globosas.
El tamaño varía desde pocos milímetros hasta más de un metro de longitud. Poseen aparato
digestivo, sexos separados y ciclos vitales directos e indirectos (Cordero, Vazquez,
Fernandez, Snchez, & Hernandez, 1999).
13
2.11.4.1 Toxocara canis.
Es relativamente grande parasita el intestino delgado de los caninos. Estos vermes tienen
tres labios y un bulbo esofágico glandular (ventrículo) localizado en la unión del esófago y
el intestino, suelen tener alas cervicales y sus huevos poseen superficies salpicadas de
muescas (Bonwman, Lynn, & Eberhard, 2014).
2.11.4.2 Escala zoológica.
Reino: Animal
Filo: Nemátoda
Clase: Secernentea
Orden: Ascaridida
Familia: Toxocaridae
Género: Toxocara
Especies: Toxocara canis (Padilla & Cuesta, 2003)
Mundialmente hallado en el suelo y afectando principalmente a cachorros y a
animales salvajes. Los ambientes con altas temperaturas o con climas tropicales favorecen
la trasmisión de las especies de Toxocara. (Weese & Fulford, 2011)
2.11.4.3 Características morfológicas.
Los parásitos adultos machos tienen una longitud de 4-10 cm por 2-2.5 mm de diámetro y
las hembras de 5-18 cm de largo por 2.5-3 mm de diámetro. Son de color crema y sus
órganos reproductores internos son de color blanco, cuando se ve a través de la cutícula de
los ejemplares recién evacuados el intestino tiene un color gris o negro, los vermes tienen
un color más oscuro. (Bowman, Lynn, & Eberhard, 2004)
14
2.11.4.4 Ciclo Evolutivo.
El período prepatente para Toxocara canis es de 2-5 semanas, este parásito es encontrado
en el intestino eliminando grandes cantidades de huevos no embrionados en las heces. Los
huevos llegan a embrionar en el medio ambiente en aproximadamente 9-15 días en óptimas
condiciones de humedad y en temperaturas de 25-30º C; y en 35 días a 16.3 ºC, la larva no
llega a desarrollarse a temperaturas menores de 10ºC y muere a temperaturas por debajo de
los -15 ºC (Dovorak, Rovid, & Roth, 2008). (Anexo 1)
La fase infectante es L2, que permanece dentro del huevo, después de la primera
muda, hasta su ingestión por un hospedador. La liberación de las larvas L2 se produce en
el perro, pero también pueden intervenir hospedadores como los (roedores, aves, algunos
invertebrados) en cuyos tejidos se encapsulan y permanecen infectantes (Cordero et al,
1999).
2.11.4.5 Síntomas.
En el caso de cachorros las manifestaciones dependen del estado de salud, de la capacidad
de resistencia y del grado de infección. Las infecciones clínicas en cachorros comienzan a
manifestarse a los 18-20 días de edad y se presenta síntomas como distensión del abdomen,
diarreas alternantes o vómitos en los que pueden ver algún parásito, adelgazamiento,
anemia, menor resistencia y vitalidad, pelo sin brillo y piel arrugada (Ahumana, 1999).
También se puede observar neumonía inmediatamente después del nacimiento si el
cachorro fue infectado por vía intrauterina; los contagiados pueden morir entre 2-3 días
después. Las infecciones graves también pueden causar ascitis, degeneración lipídica del
hígado, neumonía bacteriana secundaria o malformación crónica. La miocarditis es una
complicación poco frecuente, las infecciones sintomáticas son poco comunes en los perros
adultos. Durante la migración de las larvas se pueden observar altos niveles de enzimas
hepáticas y se han descrito signos oculares, incluida celulitis orbital y patologías retinianas
multifocales. En los animales gravemente afectados se ha registrado híper reflectividad
propagada y atenuación de los vasos sanguíneos retinianos, la mayoría de los perros con
lesiones retinianas no parecen tener alteraciones visuales (Known, 2005).
15
2.11.4.6 Tratamiento.
Se utilizan diferentes sales de piperazina con buenos resultados contra la toxocariosis.
Dosis de 200 mg/kg son efectivas contra los estadios adultos pero tiene el inconveniente de
no tener acción sobre los estadios larvarios que se encuentran en los tejidos de las perras
gestantes. El tetramisol en dosis de 10 mg/kg por vía oral o subcutánea es efectivo en un
99 %, además es efectivos el Fenbendazol en dosis de 7,5 mg/kg (contra las formas
adultas) y el Nitroscanato en dosis de 25 mg/kg y 50 mg/kg (Rodríguez, Duménigo, Brito,
& Aguiar, 2006).
2.11.4.7 Control y prevención.
La prevención de la toxocariosis es factible y efectiva mediante, deshelmintización regular
de perros desde las tres semanas de edad repitiéndose tres veces con intervalos de dos
semanas y cada seis meses; prevenir la contaminación del suelo por heces de perro y gatos
de las áreas adyacentes a las casas. (Meza, 2011)
2.11.4.8 Ancylostoma caninum.
Los Ancylostoma son parásitos que se caracterizan por sus cabezas en forma de gancho, se
adhieren a la pared del intestino delgado de sus hospedadores con sus piezas bucales
causando daño al alimentarse de los tejidos llaman la atención por su hematofagia.
(Cordero et al, 1999).
2.11.4.9 Escala zoológica.
Reino: Animal
Filo: Nemátoda
Clase: Secernétidos
Orden: Strongyloide
Familia: Ancylostomatidae
Género: Ancylostoma Uncinaria
Especie: Ancylostoma caninum (Padilla & Cuesta, 2003).
16
2.11.4.10 Características morfológicas
El Ancylostoma caninum es un parásito del perro, zorro y gato, se localiza en el intestino
delgado fijándose a las mucosas por medio de la cápsula bucal. Los machos miden de
10-13 mm de largo y las hembras 13-20.5 mm, son de color gris o rojo dependiendo de la
cantidad de sangre succionada, la cavidad bucal tiene tres pares de dientes ventrales y un
par de dientes dorsales en forma triangular o lancetas en el fondo (Cordero et al, 1999).
Los huevos tienen la forma ovoide con polos redondeados, paredes laterales en forma
de barril, cápsula delgada y lisa, miden aproximadamente 56 – 65 µm de largo por
37 – 43 µm de ancho y son usualmente puestos en la fase de 2-8 células (mórula). (Quiroz,
2005)
2.11.4.11 Ciclo Evolutivo.
Los caninos infectados eliminan con la materia fecal alrededor de 20 000 huevos/día, los
cuales embrionan en condiciones favorables, temperaturas óptimas que oscilan entre los
20-30 °C en suelos húmedos, arenosos, sombreados, oxigenados; la eclosión puede ocurrir
al cabo de 48 horas, dando lugar a larvas de estadios 1-2 y 3. La larva L3 es filariforme,
infecciosa para perros y humanos hospederos accidentales y mide en promedio 660 µm de
longitud y 2 µm de grosor (Berrueta, 2015). (Anexo 1)
2.11.4.12 Síntomas.
La infección con Ancylostoma puede ser especialmente grave en perros, los gusanos
producen un anticoagulante en la saliva para poder chupar sangre sin que coagule la herida,
al cambiar de sitio, la herida que dejan sigue sangrando con las graves hemorragias. Se
produce anemia por pérdida de sangre que puede ser grave e incluso mortal, también
suelen darse vómitos y diarrea negra, palidez de las mucosas, pelo desgreñado y seco,
apatía. En animales jóvenes se perturba notablemente el crecimiento y el desarrollo, las
larvas migratorias en los pulmones pueden causar tos y neumonía (Junquera, 2015).
17
2.11.4.13 Tratamiento.
Se realiza con febantel 10-15 mg/kg oral una vez al día por tres días, o pamoato de pirantel
5-10 mg/kg oral una vez al día repetidos en tres semanas o fenbendazol 50 mg/kg oral una
vez al día por tres días (Balleztrino, 2010).
2.11.4.14 Control y prevención.
Los estados preinfestantes no son resistentes a la desecación de forma que los terrenos y
locales que frecuentan los animales susceptibles deben mantenerse lo más secos posible, y
las heces deben eliminarse a cortos intervalos. Los suelos de las perreras deben
mantenerse a tratamiento con sal común o borato sódico 2 kg/10 m², que ayuda a matar las
larvas. Los suelos de las perreras y de los patios deben impermeabilizarse con hormigón u
otro material similar (Alfaro, 2013).
2.11.5 Céstodos.
Los céstodos o tenias son gusanos en forma de cinta que pueden alcanzar varios metros de
longitud, como los trematodos pertenecen al grupo de los platelmintos, se les conoce
también como gusanos cinta o gusanos chatos. La mayoría de los céstodos se componen de
una cadena de piezas, anillos o segmentos denominada estróbilo, unida a una cabeza
denominada escólex, situada en el extremo fino del cuerpo. Es decir el gusano va
aumentando de grosor de la cabeza hacia la cola, cada segmento se denomina también
proglotis, proglótido o metámero, las infecciones con gusanos cinta se denominan
cestodosis o teniasis. (Junquera, 2015)
La cabeza está dotada de ventosas y ganchos que les permiten fijarse a los tejidos del
hospedador, los segmentos más cercanos a la cabeza son más jóvenes que los más alejados
y se van desarrollando progresivamente según se alejan de la cabeza. Los céstodos son
hermafroditas y se auto fecundan, cada segmento contiene órganos reproductores
completos con testículos y ovarios, pero carece de los típicos sistemas circulatorio,
digestivo y nervioso. Como la mayoría de los céstodos viven en el tracto digestivo del
hospedador, absorben directamente los nutrientes a través de su piel. (Junquera, 2015)
18
2.11.5.1 Dipylidium caninum.
La Dipilidiasis es causada por una pequeña tenia el Dipylidium caninum; que posee un
ciclo de vida indirecto y que afecta a animales de zonas urbanas y rurales, es cosmopolita y
común en lugares en donde abundan las pulgas que interviene como hospedadores
intermediarios. (Cordero et al, 1999).
2.11.5.2 Escala zoológica
Reino: Animal
Phylum: Platyhelminthes
Clase: Céstoda
Orden: Cyclophyllidea
Familia: Dilylidiidae
Género: Dipylidium
Especies: Dipylidium caninum (Berger & Marr, 2006)
2.11.5.3 Características morfológicas.
Es un gusano plano cestode que mide entre 20-50 cm de color blanquecino y sus proglotis
tienen forma de semilla de melón, el escólex presenta un róstelo armado con 3-4 filas de
ganchos en forma de espina de rosa, con doble juego de aparato reproductor con poro
genital doble, los huevos son similares a los de la familia Taeniidae se eliminan incluidos
en cápsulas ovígeras (Drugueri, 2002).
Cuando los proglótidos grávidos pasan en las heces son blandos o rosados y miden
de 8-12mm de largo por 2-3 mm de ancho, se mueven con fuerza expulsando cápsulas de
huevos, cada cápsula contiene 3-20 huevos los mismos que son esféricos u ovales y miden
de 31-50 micras de largo por 27- 48 micras de ancho. (Flynn, 2007)
19
2.11.5.4 Ciclo Evolutivo.
Los proglotis salen del hospedador junto con las heces o de forma espontánea avanzan por
la región perianal, estos proglotis cuando están en contacto con el medio ambiente se
desecan y los huevos del Dipylidium caninum deben ser ingeridos por larvas de pulgas
(Ctenocephalidesspp. Pulexirritans) o piojos masticadores (Trichodectescanis). (Cordero,
y otros, 1999)
Los huevos se dirigen al intestino delgado de las larvas en donde queda libre el
hexacanto, este atraviesa la pared intestinal y se ubica en la grasa abdominal aquí se
desarrolla hasta la fase de cisticercoide luego de 2-3 semanas el cisticercoide está viable.
Los cisticercoides resultantes sobreviven a la metamorfosis de su hospedador hasta el
estado adulto, cuando el metacéstodo está completamente desarrollado, la pulga debe ser
ingerida por el hospedador definitivo, completando así su ciclo biológico. (Albornoz,
2000) (Anexo 1)
2.11.5.5 Síntomas.
La mayor parte de las infecciones son asintomáticas, el principal signo consiste en la
presencia de proglótidos, en la zona perianal, heces, piso y cama, los proglótidos son
móviles cuando están frescos y pueden ser confundidos con larvas de moscas. (Evans &
White, 1985)
La presencia de los proglótidos provoca prurito anal y deslizamiento del ano sobre el
suelo lo que puede confundirse con inflamación de las glándulas perianales. Las
infecciones severas pueden causar debilidad, pelos sin brillos, diarreas alternantes, fiebre
pérdida de peso etc. (Ahumana, 1999)
2.11.5.6 Tratamiento.
Se lo realiza utilizando prazicuantel cinco mg/kg por vía oral o subcutánea, otros fármacos
que se pueden utilizar es el Hidroclorurode Budamidina 25-50 mg/kg de peso vivo vía oral
600 mg/animal como máximo o el Nitroscanato 50 mg/kg de peso vivo vía oral. Los
benzimidasoles de amplio espectro eliminan mediante un solo tratamiento a los nemátodos
y cestodos (Salvador, 2012).
20
2.11.5.7 Control y prevención.
El control se realiza mediante la desparasitación a los animales contra parásitos externos e
internos de forma regular, la mejor prevención es controlar las pulgas en las mascotas y en
el medio ambiente (Drugueri, 2002).
2.12 Parásitos gastrointestinales en seres humanos.
En países como el nuestro, las enfermedades parasitarias son epidémicas y producen la
muerte e incapacidad a miles de personas cada año. Además pueden provocar infecciones
graves en los pacientes con sida o con un sistema inmunitario debilitado. (García, 2011)
Los parásitos son muy frecuentes y pueden vivir en el interior del cuerpo humano
durante años sin manifestar su presencia. Aproximadamente la mitad de la población de
los países desarrollados alberga, al menos un tipo de parásitos, cuya presencia produce
diversos trastornos a los que no se les encuentra explicación, tales como: fatiga crónica,
debilidad, falta de energía, erupciones en la piel, dolor corporal, estreñimiento, resfriados
frecuentes e inclusive gripe. En los niños pueden ser el origen de un bajo rendimiento
escolar, debido a la fatiga, el dolor permanente de cabeza e inclusive la anemia
(García, 2011).
21
III. MARCO METODOLOGICO
3.1 Área de estudio
3.1.1 Localización.
El estudio se realizó en la población canina de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio
Sotomayor.
3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo.
El cantón Vinces se encuentra en la parte sur occidental de la provincia de Los Ríos, está
ubicada en la margen izquierda del rio Vinces limitando al Norte con el cantón Palenque,
al Sur y Oeste con la provincia del Guayas y al Este con los cantones Baba, Puebloviejo y
Ventanas. Vinces está ubicado entre las coordenadas de 1 º 33´ S, 79 º 45´O .
(Freire, 2012).
La Parroquia rural de Antonio Sotomayor perteneciente al Cantón Vinces de la
provincia de Los Ríos, está localizada a una distancia de 13 km. de la Ciudad de Vinces,
tiene una extensión de 84,5 km² y sus límites son al: Norte: con Vinces, al Sur y Oeste con
la provincia del Guayas y al Este con Guare. (Freire, 2012) . (Ver Anexo # 3)
3.1.3 Clima.
Por estar cerca al Océano Pacifico las corrientes de Humbold (fría) y El Niño (cálida)
marcan dos periodos climáticos diferentes, de diciembre a mayo el clima es húmedo y
lluvioso y de junio a noviembre el clima es fresco, seco y agradable su temperatura
promedio es de 26 °C (Vera, 2010)
3.2 Universo
Población canina de la zona urbana de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
dan un total de 6 433 animales.
3.3 Muestra
Estuvo constituida por 147 animales.
22
3.4 Tamaño de la muestra
Formula a emplear para calcular el tamaño de la muestra:
n= tamaño de la muestra =?
e= margen de error = 8% =0.08
Z= nivel de confianza = 1.96
N= universo = 6 433 animales
p = probabilidad de ocurrencia = 0.50
q = probabilidad de no ocurrencia = 0.50
3.5 Tipo de muestreo
Se utilizó el muestreo aleatorio.
23
3.6 Metodología
3.6.1 Registro de datos.
En la presente investigación, se procedió a recolectar las muestras de heces recién
evacuadas de los caninos en cada zona en estudio, para lo cual se llenó la hoja de campo
para la obtención de datos con la ayuda de los propietarios. (Ver Anexo # 2, #3),
(ver Anexo # 4: foto # 1, # 3).
3.6.2 Toma de muestras.
Se toma una muestra de heces en una cantidad promedio de cinco gramos por animal, se la
deposito en recipientes estériles; procediendo a identificarlas con números, de acuerdo a la
muestras recogidas (Ver Anexo # 4: foto #2, #3).
3.6.3 Transporte de muestras.
Dichas muestras fueron transportadas en un termo a una temperatura de 4-8 ºC hacia el
laboratorio de la Facultad de Ciencias para el Desarrollo del Cantón Vinces, para luego ser
observadas en el microscopio e identificando los huevos de los parásitos en estudio
(Ver Anexo # 4: foto # 4).
3.6.4 Preparación de la placa.
En un porta objetos se colocaron por separado en cada extremo una gota de solución salina
fisiológica y otra de lugol; con un aplicador de madera se tomó una pequeña muestra de
heces y se la coloco en la gota de solución salina, haciendo una suspensión homogénea;
con el aplicador se retiraron las fibras y otros fragmentos gruesos; luego con el mismo
aplicador se colocó una muestra de heces a la gota de lugol, posteriormente se ubicó cubre
objetos en cada suspensión; para proceder a su análisis.
24
3.6.5 Observación e identificación de la estructura de los huevos de parásitos.
Se colocaba la placa en el microscopio para observarla a 40-80x, donde se verificó la
morfología de los huevos de los parásitos en estudio:
Los huevos del Toxocara canis se observaron de forma ovalada o esférica,
superficie rugosa, y de 72 a 85 μm.
Ancylostoma caninum los huevos son ovoidales, miden unas 40x65 micras, tienen
en el centro de 4 a 16 células con una envoltura fina.
Giardia lamblia los quistes presentan un tamaño de 15,4 μm de longitud y 9,7 μm
de ancho con una morfología ovalada. No se observaron en los análisis realizados.
Del Dipylidium caninum son esféricos, con una delgada membrana, miden de
30 - 40µm (Ver Anexo # 4: foto # 7).
3.7 Materiales
Los materiales que se utilizaron fueron los siguientes:
3.7.1 De laboratorio.
Lamina porta objeto
Laminas cubre objeto
Microscopio óptico
Mandil
3.7.2 Biológicos.
Muestras de heces de 147 caninos
25
3.7.3 Químicos.
Alcohol antiséptico
Solución salina fisiológica
Lugol
3.7.4 Para la toma de muestras.
Recipiente estéril
Hoja de registro
Cámara fotográfica
Termo
Esferos
Cinta adhesiva
3.8 Análisis estadístico
Se realizó una investigación no experimental transversal, aplicando un análisis estadístico
descriptivo no paramétrico a través de tablas, gráficos y se determinó estadígrafos de
tendencias central, como la media, estadígrafos de dispersión como la varianza (S2), el
coeficiente de desviación estándar, estableciendo los valores máximos y mínimos.
3.8.1 Métodos.
Se aplicaron los métodos teóricos deductivo-inductivo, análisis-síntesis; y muestreo a
través de la obtención de heces; para el laboratorio se realizó un estudio microscópico.
El método deductivo se utilizó en el análisis de los diferentes tipos de parásitos
investigados, el inductivo se utilizó para obtener los resultados, la síntesis en las
conclusiones y recomendaciones, el método de muestreo se lo aplico en la toma de
muestras.
26
Xi Sector urbano 21
57 muestras del Área 1: Antonio Sotomayor Hacha 18
Junquillo 18
Centro de Vinces 18
Nicaragua 18
90 muestras del Área 2: Ciudad de Vinces Las Palmitas 18
Los Mirtos 18
El Palmarin 18
Σxi 147
n = 2
Formulas:
Media
27
Varianza
Desviación Estándar
s = √73,5
s = 8,5
3.9 Datos evaluados
Las variables que se registraron y analizaron en el estudio fueron:
Raza del canino
Sexo del canino
Edad del canino
Sitios de mayor incidencia (plano referencial)
28
IV. RESULTADOS
4.1 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos
Para determinar la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos se analizó 147
muestras en la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor, resultando positivas 136
que representa el 92,52 % y 11 negativas que correspondieron al 7,48 % (Ver gráfico # 1).
Cuadro 1 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum en
caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor.
Muestras Casos %
Positivas 136 92,52
Negativas 11 7,48
Total 147 100,00
29
4.2 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según sexo
Los resultados que se observan en el cuadro dos, indican que de 136 muestras positivas, 71
machos dieron positivos, que corresponde a un 52,21 % de incidencia y en relación a la
hembras, 65 dieron positivas; es decir un 47,79 %. (Ver gráfico # 2) (Anexo # 5: Tabla
#1, #2).
Cuadro 2 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según sexo.
Muestras Total Casos según sexo
Machos % Hembras %
Positivas 136 71 52,21 65 47,79
Negativas 11 0 0,00 11 100,00
Total 147 71 48,30 76 51,70
30
4.3 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según sexo en los dos sectores analizados
De los sectores analizados según el sexo en la ciudad de Vinces se tomaron 90 muestras, resultando positivas en los machos 40 animales que
corresponden al 50,63 % y en las hembras hubo 39 casos positivos, lo que representa el 49,37 %.
Con respecto a la parroquia Antonio Sotomayor se analizaron 57 muestras, presentándose todas positivas; de las cuales 28 correspondían a los
machos; es decir el 49,12 % y en las hembras 29 que corresponde al 50,88 %. (Ver gráfico # 3; Anexo #5: Tabla #3).
Cuadro 3 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según sexo en los dos sectores analizados.
Muestras
Vinces Antonio Sotomayor
Casos según sexo Casos según sexo
Total Machos % Hembras % Total Machos % Hembras %
Positivas 79 40 50,63 39 49,37 57 28 49,12 29 50,88
Negativas 11 3 27,27 8 72,73 0 0 0,00 0 0,00
Total 90 43 47,78 47 52,22 57 28 49,12 29 50,88
31
4.4 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según edad
En lo que respecta a la edad; los caninos estudiados menores de un año fueron 67, de los
cuales 61 dieron positivo, que corresponde a un 44,85 %. Los perros estudiados mayores
de un año fueron 80; de estos 75 resultaron positivos, lo que representa el 55,15% de
incidencia. (Ver gráfico 4) (Anexo # 5: Tabla #4, #5).
Cuadro 4 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según edad.
Muestras
Total
Casos según edad
(<) 1 de un año % (>) de 1 año %
Positivas 136 61 44,85 75 55,15
Negativas 11 6 54,55 5 45,45
Total 147 67 45,58 80 54,42
32
4.5 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según edad en los dos sectores analizados
En relación a los animales menores de un año, en la ciudad de Vinces resultaron positivos 34 muestras, lo que corresponden al 43,04 % y
mayores de un año 45 muestras, es decir el 56,96 %.
Los caninos menores de un año en la parroquia Antonio Sotomayor fueron 27 positivos que corresponden al 47,37 % y los mayores de un año
fueron 30, con el 52,63 %. (Ver gráfico # 5 Anexo #5: Tabla #6).
Cuadro 5 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según edad en los dos sectores analizados.
Muestras
Vinces Antonio Sotomayor
Casos según edad Casos según edad
Total (<)1 de un año % (>) de 1 año % Total (<)1 de un año % (>) de 1 año %
Positivas 79 34 43,04 45 56,96 57 27 47,37 30 52,63
Negativas 11 6 54,55 5 45,45 0 0 0,00 0 0,00
Total 90 40 44,44 50 55,56 57 27 47,37 30 52,63
33
4.6 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según raza
Según las razas analizadas, los animales de razas pequeñas que se muestrearon fueron
34; de la cuales 30 fueron positivas representando el 22,06 %; respecto a los caninos de
razas medianas se estudiaron 92 presentándose 86 positivas que fueron el 63,24 % y de
las razas grandes se muestrearon 21, obteniéndose 20 positivas, que es el 14,71 %. %.
(Ver gráfico 6) (Anexo # 5: Tabla #7, #8).
Cuadro 6 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según raza.
Muestras Total
Razas pequeñas % Razas medianas % Razas grandes %
Positivas 136 30 22,06 86 63,24 20 14,71
Negativas 11 4 36,36 6 54,55 1 9,09
Total 147 34 23,13 92 62,59 21 14,29
34
4.7 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según raza en los dos sectores analizados
En la ciudad de Vinces con respecto a los caninos de razas pequeñas se analizaron 24 muestras, presentando 20 positivas con el 25,32 %; los de
razas medianas fueron 51 con 45 positivas, es decir 56,96 % y de las razas grandes se analizaron 15 muestras, resultando 14 positivas, que
corresponde al 17,72 %. (Ver gráfico # 7) (Anexo # 5: Tabla #9).
Cuadro 7 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según raza en la ciudad de Vinces.
Muestras
Vinces
Casos según raza
Total Razas pequeñas % Razas medianas % Razas grandes %
Positivas 79 20 25,32 45 56,96 14 17,72
Negativas 11 4 36,36 6 54,55 1 9,09
Total 90 24 26,67 51 56,67 15 16,67
35
En la parroquia Antonio Sotomayor con respecto a los caninos de acuerdo a las razas se analizaron 57 muestras y todas fueron positivas; de las
cuales, las razas pequeñas se estudiaron 10 con el 17,54 %; razas medianas 41 que fueron el 71,93 % y de las razas grandes seis que presentaron
el 10,53 %. (Ver gráfico # 8) (Anexo # 5: Tabla #10).
Cuadro 8 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según raza en la parroquia Antonio
Sotomayor.
Muestras
Antonio Sotomayor
Casos según raza
Total Razas pequeñas % Razas medianas % Razas grandes %
Positivas 57 10 17,54 41 71,93 6 10,53
Negativas 0 0 0,00 0 0,00 0 0,00
Total 57 10 17,54 41 71,93 6 10,53
36
4.8 Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según sectores analizados
De acuerdo a los sectores evaluados; hubo 136 muestras positivas; de las cuales en la
ciudad de Vinces salieron 79 positivas, que representa el 87,78 %; y en la parroquia
Antonio Sotomayor con 57 muestras con el 100 %. (Ver gráfico # 9)
(Anexo # 5: Tabla #11).
Cuadro 9 Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según
sectores.
Muestras Total % Vinces % Antonio Sotomayor
Positivos 136 92,52 79 87,78 57 100,00
Negativos 11 7,48 11 12,22 0 0,00
Total 147 100,00 90 100,00 57 100,00
37
4.9 Sitios de mayor incidencia en la ciudad de Vinces
16 Casos +
16 Casos +
16 Casos +
16 Casos +
16 Casos +
15 Casos +
Total de casos 79 +
38
4.10 Sitios de mayor incidencia en la parroquia Antonio Sotomayor
Junquillo
Sector Urbano
Hacha
21 casos +
18 casos +
18 casos +
Total de casos 57 +
39
V. DISCUSIÓN
En la presente investigación realizada la incidencia fue de 92,52 %, lo que difiere con
Revelo (2004) quien obtuvo en la ciudad de Quito una incidencia del 28,75%; lo cual se
debe a que las condiciones medioambientales son diferentes; ya que en esta ciudad existen
temperaturas menores, lo que es un factor que limita la proliferación de los parásitos.
Esta alta incidencia (92,52%) presentada en esta investigación concuerda con Márquez
(2014); quien reportó una incidencia alta, del 60,5 % en la ciudad de Pasaje; lo cual se
debe a que estas dos investigaciones fueron realizadas en ciudades que tienen condiciones
climáticas similares.
En cuanto a la incidencia según el sexo, los machos presentaron incidencias del 52,21 % y
las hembras de 47,49%; lo que concuerda con (Márquez 2014) que reporto una incidencia
de machos del 60,00 % y hembras 61%, además concuerda con (Ajila), quien obtuvo en
machos 32,9 % en las hembras 26,5 %; lo que demuestra que no existe diferencia de acuerdo
al sexo para estas enfermedades parasitarias; esto se debe a que las vías de transmisión
tanto machos como hembras son las misma; por lo que la posibilidad de adquirir la
infestación es igual en ambos sexos.
Según los rangos de edades, los caninos mayores a un año presentaron incidencia del
55,15 %; lo cual difiere de lo reportado por Giraldo (2005); quien manifiesta en su
investigación, que los grupo de animales con mayor prevalencia de infección por parásitos
intestinales son los menores de un año con 33,3 %, y que un factor que puede influir en el
alto porcentaje de parasitismo en cachorros es el hecho de que la inmunidad comienza a
manifestarse a partir de la quinta semana de edad; pero cabe mencionar con referencia a la
alta incidencia de los animales en estudio en esta investigación según los mayores de un
año se debió que su población en investigada fue mayor.
40
Con respecto a las razas los animales con mayor susceptibilidad fueron los de razas
medianas que presentaron el 63,24 %; lo que no concuerda con Márquez (2014) que
describe en su investigación a los animales de razas grandes con una incidencia del 67,3
%; por lo tanto se manifiesta que la alta incidencia según razas se debió a que en ambas
investigaciones en los dos grupos según razas fue mayor la población en estudio; entonces
cabe aclarar que la incidencia de parasitosis se debe al contacto de las mascotas con el
suelo.
Según los sectores investigados en la ciudad de Vinces se reportó el 92,52 % de incidencia
comparándolo con lo que se presentó en la parroquia Antonio Sotomayor donde fue del
100 %. Como se puede observar la incidencia alta coincide con estas infestaciones
parasitarias, debido a la condición del medio ambiente y el manejo sanitario de los caninos;
este último dependiendo de las condiciones socio-económicas de dichos sectores.
41
VI. CONCLUSIONES
Con base a las evidencias de campo y resultados encontrados, se deducen las siguientes
conclusiones:
Se determinó la alta incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos en
caninos en la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor fue del 92,51 %; la
misma que se considera muy elevada.
Se estableció que no existió diferencia en la incidencia de acuerdo al sexo.
En los caninos mayores a un año se presentó una mayor incidencia 55,15 % debido
a que esta población en estudio fue mayor, por lo que influyo para que esta
incidencia sea más elevada.
Los caninos de razas medianas presentaron mayor incidencia a parásitos
gastrointestinales zoonósicos con el 63,24 %.
Se pudo determinar que los dos sectores en estudio presentaron altas incidencia de
parasitosis.
42
VII. RECOMENDACIONES
Que se continúen realizando investigaciones sobre las enfermedades parasitarias
zoonósicas en perros.
Evaluar las incidencias de los parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara
canis, Ancylostoma caninum, guardia lamblia, Dipylidium caninum, de acuerdo al
sexo, edad y raza.
Realizar investigaciones en humanos sobre enfermedades parasitarias zoonósicas
transmitidas por caninos.
Fomentar campañas de educación para concientizar a la comunidad sobre la
importancia de las enfermedades parasitarias zoonósicas.
Aplicar protocolos de campañas de desparasitaciones en los sectores investigados,
como medidas de prevención y control de parasitosis en caninos.
43
VIII. BIBLIOGRAFÍA
Ahumana. (20 de Diciembre de 1999). Principales parásitos internos en el perro y gato.
Mundo Ganadero. Obtenido de magrama.es:
http://www.magrama.es/ministerio/pags/bibliotecas/revistas/pdf
Albornoz. (2000). Universidad Central del Ecuador. Ecuador.
Alfaro. (10 de Octubre de 2013). Prevalencia de Ancylostoma caninum en Canis lupus
familiaris. Obtenido de ri.ues.edu.sv:
http://www.ri.ues.edu.sv/1518/1/13101280.pdf
Andrews. (1999). The Life Cycle of Fasciola hepatica. CAB INTERNATIONAL.
Balleztrino, C. B. (4 de Julio de 2010). Frecuencia de Gatroenteritis por Ancylostoma.
Obtenido de researchgate:
www.researchgate.net/.../277801411_Frecuencia_de_gastroenteritis_por_A...
Barr. (1993). Enfermedades Infecciosas y. Editorial Intermedica.
Barr, & Stephen. (1994). Enfermedades Infecciosas y Parasitologia en caninos y felinos.
Editorial intermedia.
Berenguer, J. G. (2007). Manual de Parasitologia. Barcelona: Imprecion grafica Rey S.L.
Berger, & Marr. (2006). Parasites. Brown .
Berrueta, D. T. (2 de Mayo de 2015). Larva Migrans Cutanea. Obtenido de
facmed.unam.mx/deptos:
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/parasitologia/larva-migrans-
cutanea.html
Bonwman, Lynn, & Eberhard. (2014). Parasitología para Veterinarios. España: Barcelona.
Bowman, Lynn, & Eberhard. (2004). Parasitología para Veterinarios. Barcelona: Elsevier
España S.A; .
Caraballo, Jaramillo, & Loaiza. (2007). Medicina Veterinaria y Zootecnia. Revista CES,
24.
Castillo, R. C. (30 de enero de 2011). Estudio de prevalencia de Giardia sp. en caninos.
Obtenido de dspace:
dspace.unl.edu.ec/.../ESTUDIO%20DE%20LA%20PREVALENCIA%20
Chicaiza, M. R. (2 de agosto de 2010). Estudio de la prevalencia de parásitos
gastrointestinales zoonosicos. Obtenido de repositorio.utc.edu.ec:
http://repositorio.utc.edu.ec/bitstream/27000/799/1/T-UTC-1158.pdf
44
Cordero. (2001). Parasitología veterinaria. España: Cuarta edición.
Cordero et al. (1999). Parasitología. España: Aravaca.
Cordero, Campillo, & Vasquez. (1999). Parasitologia Veterinária . España: Graw .
Cordero, Rojo, Martinez, Sanchez, Hernandez, Navarrete, y otros. (1999). Parasitología
Veterinaria. España: Veterinaria.
Cordero, Vazquez, Fernandez, Snchez, & Hernandez, N. (1999). Parasitología. España:
Aravaca.
Desiree. (31 de octubre de 2013). Helmintos. Obtenido de atlasparasitologiabiosanis.:
http://atlasparasitologiabiosanis.blogspot.com/
Dovorak, Rovid, & Roth. (2008). Handbook for zoonotic diseases of companion animals.
Ames.
Drugueri, L. (1 de Agosto de 2002). Tecno-campo foro. Obtenido de zoetecnocampo:
http://www.zoetecnocampo.com/forop/Forum1/HTML/000046.html
Evans, & White. (1985). A Complete Guide to Dog. Henston: Interpet Publishing.
Fernandez, E. (31 de Enero de 2007). Parasitos em las mascotas. Obtenido de
perrosdeluruguay.com: http://www.perrosdeluruguay.com/parasitos.htm
Flynn. (2007). Parasites of Dogs. Baker .
Freire. (3 de Febrero de 2012). Plan Estratégico. Obtenido de municipalidadvinces.gob.ec:
http://www.municipalidadvinces.gob.ec/vinces/.../12-k-planes-y-programas?
Garcia. (2013). Sintomas de parasitos gastrointestinales en perros. Obtenido de
ehowenespanol.com: http://www.ehowenespanol.com/sintomas-parasitos-
intestinales-perros-sobre_69843/
García, D. K. (26 de abril de 2011). Parasitosis frecuente en niños y en adultos. EL
Telegrafo.
Garcia, Muñoz, Aguirre, Polo, & Refoyo. (12 de Enero de 2008). Introducción a los
Helmintos. Tremátodos. Obtenido de http://darwin.bio.ucm.es/:
http://darwin.bio.ucm.es/revistas/index.php/redu ca-biologia/article/view/8/34
Gingrich, Scorza, Clifford, Olea, & Lappin. (11 de Mayo de 2010). Intestinal parasites of
dogs on the Galapagos Islands. Obtenido de Vet Parasitol:
www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20176441
Guzmán. (2007). Prevalencia de Parasitos intestinales en caninos. Revista CES, 26.
45
Junquera, P. (29 de Junio de 2015). Parasitipedia.net. Obtenido de Parasitipedia.net:
http://parasitipedia.net/index.php?option=com_content&view=article&id=1463&It
emid=1594
Known, A. (2 de mayo de 2005). Centers for Disease Control and Prevention (CDC).
Obtenido de cdc.gov/parasites:
http://www.cdc.gov/parasites/toxocariasis/index.html
Lacoma, T. (14 de agosto de 2004). Parásitos internos y externos. Obtenido de
ehowenespanol.com: http://www.ehowenespanol.com/parasitos-internos-externos-
sobre_93489/
Lema, G. F. (5 de enero de 2012). “Prevalencia de Helmintos Gastrointestinales. Obtenido
de dspace.ucuenca.edu.e:
http://dspace.ucuenca.edu.ec/bitstream/123456789/383/1/TESIS.pdf
Levine, & Corlis. (1980). A newly resived classification of the protozoa. J. Protozool.
Loya, M. L., & Ruiz, G. V. (2013). identificacion de pulgas. Obtenido de dspace:
www.dspace.uce.edu.ec/bitstream/25000/2363/1/T-UCE-0014-51.pdf
Lumbreras, .., Cantella, & Burga. (2000). Diagnostico Fasciolosis. Rev. Med. Peruana , 31.
Lumbreras, Cantella, & Burga. (2000). Sedimentación Rápida Para Investigar Huevos De
Fasciola Hepatica. Med Peruana , 174.
Marquez, G. (8 de enero de 2014).
Martínez, P. (9 de Julio de 2012). Análisis de la Gestión Comunitaria en la Parroquia
Antonio Sotomayor. Obtenido de dspace.ucuenca.edu.ec:
http://dspace.ucuenca.edu.ec/bitstream/123456789/1496/1/tsoc82.pdf
Mejia, V. (6 de mayo de 2012). Determinacion del Dipylidiun caninum. Obtenido de
repositorio.utc.edu.ec/bitstream/:
http://repositorio.utc.edu.ec/bitstream/27000/655/1/T-UTC-0521.pdf
Meza, O. (2011). Larva migrans viceral. Ceprouna, 4-7.
Minovich, Paduli, & Rossano. (2002). Libro de Medicina Felina Práctica. Paris: Editor
Aniwa PuBlishíng.
Moya, T. S. (martes de Septiembre de 2011). editorial de los veterinarios. Obtenido de
argos.portalveterinaria.com:
http://argos.portalveterinaria.com/noticia/6748/articulos-archivo/giardiosis-en-
mascotas-y-humanos:-una-zoonosis-emergente.html
Ochoa, R. (5 de agosto de 2011). Estudio de la prevalencia de Giardia. Obtenido de
ESTUDIO%20DE%20LA%20PREVALENCIA%20DE%20Giardia:
46
http:///E:/ESTUDIO%20DE%20LA%20PREVALENCIA%20DE%20Giardia%20s
p.%20EN%20CANINOS%20(Canis%20familiaris)pdf
Ordonez, V. E. (2012). Determinacion de DIPYLIDIUM CANINUM. Obtenido de
repositorio: repositorio.utc.edu.ec/bitstream/27000/655/1/T-UTC-0521.pdf
Padilla, & Cuesta. (2003). Nematodos. Madrid: Díaz de Santos S.A.
Quiroz. (2005). Parasitología y Enfermedades Parasitarias de Animales Domésticos.
Mexico: Noriega, editor.
Raether, M. D. (1993). Manual de Parasitologia veterinária. Ciudad de los Angeles:
Editorial GRASS IATROS.
Rangel, M. (9 de Junio de 2011). Con la tecnología de Blogger. Obtenido de
itelmicro.blogspot.com: itelmicro.blogspot.com/2011/06/protozoarios.html
Reyes, A. C. (2003 ). Microbiologia y parasitologia para estudiantes de medicina. En A. C.
Reyes, Generalidades sobre Nematodes. (pág. 573). Mexico: Mendez Editores,
Mexico, D.F.
Rivera, Z. (2 de junio de 2011). Determinacion de incidencia de Toxocara canis. Obtenido
de dspace.utb.edu.ec/bitstream: http://dspace.utb.edu.ec/bitstream/49000/148/6/T-
UTB-FACIAG-MVYZ-000001.pdf
Rodríguez, Cob, & Domínguez. (19 de junio de 2001). Frecuencia de parásitos
gastrointestinales en animales domésticos diagnosticados en Yucatán, México.
Obtenido de imbiomed.com.mx:
http://www.imbiomed.com.mx/1/1/articulos.php?method=showDetail&id_articulo
=3604&id_seccion=136&id_ejemplar=411&id_revista=22
Rodríguez, Duménigo, Brito, & Aguiar. (2006). Toxocara canis y Síndrome Larva Migrans
Visceralis. REDVET, 1-2.
Rubi, G. d. (21 de enero de 2004). Ancylostoma doc. Obtenido de ejournal.unam.mx/vet:
http://www.ejournal.unam.mx/vet_mex/vol33-03/RVM33304.pdf ...
Salvador, O. (3 de Junio de 2012). Attribution Non-commercia. Obtenido de
es.scribd.com: http://es.scribd.com/doc/98080221/dypilidium-caninum#scribd
Saredi. (2002). Manual Práctico de Parasitología Médica. Laboratórios Andromarca.
Sixtos, M. C. (2010). Procedimientos y técnicas para la realización para estudios
coproparasitarios. Mexico: Virvac.
Soulsby, J. (2001). Parasitologia y enfermedades parasitarias en animales . Mexico:
Interamericana.
47
Todd, T. (2005). Gastroenterología en animales pequeños . Argentina: Intermedica.
Tortolero, Cazorla, Morales, & Acosta. (2008). Prevalence of Enteric Parasites in
Domiciliary Dogs From La Vela City Falcon State, Venezuela. Revista Científica,
313.
Vera, D. J. (2010). UNIDAD DE ATENCION AMBUATORIA VINCES. Vinces.
Villa, D. M. (8 de enero de 2013). Parasitologia. Obtenido de
microbiologiaunvime.wikispaces.com:
microbiologiaunvime.wikispaces.com/.../Generalidades+Parasitología+U..
Weese, & Fulford. (2011). Companion Animal Zoonoses. Ames: Wiley-Blackwell.
Yssik. (9 de Diciembre de 2010). clasificacion de zoonosis. Obtenido de
zoonosisparasitaria: http://zoonosisparasitaria.blogspot.com/
IX. ANEXOS
ANEXO 1. CICLO BIOLOGICO DE LOS PARASITOS INVESTIGADOS
Fuente: (www. mevepa.cl/moduJes.php?name=news&f¡le=article&sid=673)
Ciclo del Toxocara canis
Fuente: http://www.dpd.cdc.gov/dpdx
Ciclo del Ancylostoma caninum
Fuente: http://www.tutorzone.com
Ciclo del Dipylidium caninum
Fuente: Laboratorios Farmacéuticos Bayer
ANEXO 2. HOJA DE REGISTRO DE RECOLECCION DE MUESTRAS
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
MES:_______________
FECHA # DE
MUESTRA
PROPIETARIO SECTOR SEXO EDAD RAZA RESLTADOS
TIPOS DE PARASITOS
H M Toxocara
canis
Ancylostoma
caninum
Giardia
lamblia
Dipylidium
caninum
Negativos
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
HOJA DE REGISTRO DE LOS RESULTADOS SEGÚN LOS PARAMETROS
INVESTIGADOS
Según Edades
Sector___________
Toxocara
canis
Ancylostoma
caninum
Giardia
lamblia
Dipylidium
caninum
Negativo
Menores de 1 año
Mayores de 1 año
Según Razas
Sector___________
Toxocara
canis
Ancylostoma
caninum
Giardia
lamblia
Dipylidium
caninum
Negativo
Mestizos
Razas pequeñas
Razas medianas
Razas grandes
Según Sexo
Sector___________
Toxocara
canis
Ancylostoma
caninum
Giardia
lamblia
Dipylidium
caninum
Negativo
Hembras
Machos
ANEXO 3. MAPA DEL SITIO EN ESTUDIO
ANEXO 4. FOTOS
Foto 1. Registro de datos de los dueños de los caninos muestreados.
Foto 2.Toma de muestras al canino.
Foto 4. Materiales para la identificación de los parásitos.
Foto 3. Rotulación de las muestras
Foto 5. Procedimiento de la técnica de frotis directo.
Foto 6: Observación de los parásitos en el laboratorio.
Foto 7: Identificación de los diferentes tipos de parásitos
Toxocara canis Ancylostoma caninum
Dipylidium caninum
ANEXO 5. TABLAS
Tabla 1. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor. Evaluación
del análisis estadístico según sexo.
Tipos de Parásitos Total Machos % Hembras %
Toxocara canis 47 18 25,35 29 38,16
Ancylostoma caninum 49 29 40,85 20 26,32
Giardia lamblia 0 0 0,00 0 0,00
Dipylidium caninum 40 24 33,80 16 21,05
Ninguno 11 0 0,00 11 14,47
Total 147 71 100,00 76 100,00
Media 29,4 14,2 - 15,2 -
Mínimo 0 0 - 0 -
Máximo 49 29 - 29 -
Desv. Estándar 22,41 13,54 - 10,76 -
Varianza 502,3 183,2 - 115,7 -
Tabla 2. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según sexo.
Muestras Total Casos según sexo
Machos % Hembras %
Positivas 136 71 100,00 65 85,52
Negativas 11 0 0,00 11 14,47
Total 147 71 100,00 76 100,00
Tabla 3. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según sexo
en los sectores analizados.
Muestras
Vinces Antonio Sotomayor
Casos según sexo casos según sexo
Total Machos % Hembras % Total Machos % Hembras %
Positivas 79 40 93,02 39 82,98 57 28 100,00 29 100,00
Negativas 11 3 6,98 8 17,02 0 0 0,00 0 0,00
Total 90 43 100,00 47 100,00 57 28 100,00 29 100,00
Tabla 4. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor. Evaluación
del análisis estadístico según edad.
Tipos de Parásitos
Total
(<) 1 de un
año % (>) de 1 año %
Toxocara canis
47 17 25,37 30 37,50
Ancylostoma canis
49 35 52,24 14 17,50
Giardia lamblia
0 0 0,00 0 0,00
Dipylidium caninum
40 9 13,43 31 38,75
Ninguno
11 6 8,96 5 6,25
Total
147 67 100,00 80 100,00
Media
29,4 13,4 - 16 -
Mínimo
0 0 - 0 -
Máximo
49 35 - 31 -
Desv. Estándar
22,41 13,54 - 14,16 -
Varianza 502,3 183,3 - 200,5 -
Tabla 5. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según edad.
Muestras Total Casos según edad
(<) 1 de un año % (>) de 1 año %
Positivas 136 61 91,04 75 93,75
Negativas 11 6 8,96 5 6,25
Total 147 67 100,00 80 100,00
Tabla 6. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según edad en los sectores analizados
Muestras
Vinces Antonio Sotomayor
Casos según edad Casos según edad
Total (<) 1 de un año % (>) de 1 año % Total (<) 1 de un año % (>) de 1 año %
Positivas 79 34 85,00 45 90,00 57 27 100,00 30 100,00
Negativas 11 6 15,00 5 10,00 0 0 0,00 0 0,00
Total 90 40 100,00 50 100,00 57 27 100,00 30 0,00
Tabla 7. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor. Evaluación del análisis estadístico según
razas.
Tipos de Parásitos Total Razas pequeñas % Razas medianas % Razas grandes %
Toxocara canis 47 12 35,29 29 31,52 6 28,57
Ancylostoma caninum 49 11 32,35 32 34,78 6 28,57
Giardia lamblia 0 0 0,00 0 0,00 0 0,00
Dipylidium caninum 40 7 20,59 25 27,17 8 38,10
Ninguno 11 4 11,76 6 6,52 1 4,76
Total 147 34 100,00 92 100,00 21 100,00
Media 29,4 6,8 - 18,4 - 4,2 -
Mínimo 0 0 - 0 - 0 -
Máximo 49 12 - 32 - 8 -
Desv. Estándar 22,41 4,97 - 14,43 - 3,49 -
Varianza 502,3 24,7 - 208,3 - 12,2 -
Tabla 8. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según razas.
Muestras Total
Razas pequeñas % Razas medianas % Razas grandes %
Positivas 136 30 88,24 86 93,48 20 95,24
Negativas 11 4 11,76 6 6,52 1 4,76
Total 147 34 100 92 100,00 21 100
Tabla 9. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según razas en los sector de la ciudad de
Vinces.
Muestras
Vinces
Casos según raza
Total Razas pequeñas % Razas medianas % Razas grandes %
Positivas 79 20 83,33 45 88,24 14 93,33
Negativas 11 4 16,67 6 11,76 1 6,67
Total 90 24 100,00 51 100,00 15 100,00
Tabla 10. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos: Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia,
Dipylidium caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según razas según el sector de la parroquia
Antonio Sotomayor.
Muestras
Antonio Sotomayor
Casos según raza
Total Razas pequeñas % Razas medianas % Razas grandes %
Positivas 57 10 100,00 41 100,00 6 100,00
Negativas 0 0 0,00 0 0,00 0 0,00
Total 57 10 100,00 41 100,00 6 100,00
Tabla 11. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según sectores.
Muestras Total % Vinces % Antonio Sotomayor
Positivos 136 92,52 79 58,09 57 41,91
Negativos 11 7,48 11 100,00 0 0
Total 147 100,00 90 61,22 57 38,78
ANEXO 6. GRÁFICOS
Gráfico 1. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio
Sotomayor.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
136
11
147
92,52
7,48
100,00
0
20
40
60
80
100
120
140
160
Positivas Negativas Total
Incidencia de Parasitos Gastointestinales
Casos %
Grafico 2. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según sexo.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
13
6
71
52,2
1 65
47,7
9
11
0
0,0
0 11
100,0
0
14
7
71
48,3
0
76
51,7
0
T ota l Machos % Hembras %
Incidencia segun sexo
Positivas Negativas TOTAL
Grafico 3. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según los dos sectores analizados de acuerdo al sexo.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
79
40
50
,63
39
49
,37
57
28
49
,12
29
50
,88
11
3
27
,27
8
72
,73
0
0
0,0
0
0
0,0
0
90
43
47
,78
47
52
,22
57
28
49
,12
29
50
,88
T ota l machos % hembras % T ota l machos % hembras %
Vinces Antonio Sotomayor
Incidencia segun sexo en los sectores analizados
Positivas Negativas Total
Grafico 4. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según edad.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
Grafico 4. Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según la raza
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
Grafico 5. Incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos según sectores de
Antonio Sotomayor
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
13
6
61
44
,85
75
55,1
5
11
6
54,5
5
5
45,4
5
14
7
67
10
0,0
0
80
10
0,0
0
T ota l (<) 1 de un año
% (>) de 1 año %
Incidencia segun edad
Positivas Negativas Total
79
34
43,0
4
45
56
,96
57
27
47
,37
30
52,6
3
11
6
54,5
5
5
45,4
5
0
0
0,0
0
0
0,0
0
90
40 4
4,4
4
50
55
,56
57
27
47,3
7
30
52,6
3
Tota l (< )1 de
un año
% (>) de
1 año
% Tota l (< )1 de
un año
% (>) de
1 año
%
Incidencia segun edad en los sectores analizados
Positivas Negativas Total
Grafico 5. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según los dos sectores analizados de acuerdo a los rangos de edades.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
136
30
22,0
6
86
63,2
4
20
14,7
1
11
4
36,3
6
6
54,5
5
1 9
,09
147
34
23,1
3
92
62,5
9
21
14,2
9
razas
pequeñas
% razas
medianas
% razas
grandes
%
TOTAL
Incidencia segun razas
Positivas Negativas TOTAL
Grafico 6. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según raza.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
79
20
25,3
2
45
56,9
6
14
17,7
2
11
4
36
,36
6
54
,55
1
9,0
9
90
24
26
,67
51
56
,67
15
16,6
7
T O T AL R AZ AS
P E Q UE Ñ AS
% R AZ AS
M E D I AN AS
% R AZ AS
G R AN D E S
%
Incidencia segun raza en el sector de
Vinces
Positivas Negativas Total
Grafico 7. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según raza en el sector de Vinces.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
57
10
17,5
4
41
71,9
3
6
10,5
3
0
0
0,0
0
0
0,0
0
0
0,0
0
57
10
17,5
4
41
71,9
3
6
10,5
3
T O T AL R AZ AS
P E Q UE Ñ AS
% R AZ AS
M E D I AN AS
% R AZ AS
G R AN D E S
%
Incidencia segun razas en el sector de
Antonio Sotomayor
Positivas Negativas Total
Grafico 8. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium
caninum en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor
según raza en el sector de Antonio Sotomayor.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
Grafico 9. Determinación de la incidencia de parásitos gastrointestinales zoonósicos:
Toxocara canis, Ancylostoma caninum, Giardia lamblia, Dipylidium caninum
en caninos de la ciudad de Vinces y parroquia Antonio Sotomayor según
sectores.
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
Elaborado por Fernanda Aspiazu Tigrero
13
6
92,5
2
79
87
,78
57
100
11
7,4
8
11
12,2
2
0
0
147
100
90 1
00
57
100
T O T AL % VI N C E S % AN T O N I O
S O T O M AY O R
Incidencia segun sectores
Positivos Negativos Total
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