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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE INGENIERÍA AGROPECUARIA
PROYECTO DE TITULACION
Previo a la obtención del título de:
INGENIERA AGROPECUARIA
TEMA:
Incidencia de mastitis subclínica por método California Mastitis Test (CMT)
en hatos ganaderos de la parroquia Guare del cantón Baba
Autora:
Ángela Rocío Mora Guerrero
Tutor:
Dr. Omar Reyes Echeverría. M.Sc.
Vinces - Los Ríos - Ecuador
2017
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL
FACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
CARRERA DE INGENIERÍA AGROPECUARIA
PROYECTO DE TITULACION
Previo a la obtención del Título de:
INGENIERA AGROPECUARIA
TEMA:
Incidencia de mastitis subclínica por método California Mastitis Test (CMT)
en hatos ganaderos de la parroquia Guare del cantón Baba
Tribunal de sustentación aprobada por:
_____________________________Ing. Lauro Díaz Ubilla M.Sc.
PRESIDENTE
________________________ ________________________ Dr. Rafael Aspiazu Pimentel Dr. Abel Mora Montes M.Sc.
PRIMER VOCAL SEGUNDO VOCAL
DEDICATORIA
Dedico principalmente a mi Dios grande y poderoso por mantenerme con salud todos
los días de mi vida.
A mis queridos padres el Sr. Agapito Mora Sánchez y a la Sra. Rocío Guerrero Acosta,
que con sus sacrificios y su abnegación, me apoyaron durante mi trayectoria estudiantil,
me brindaron su cariño y me guiaron por el camino correcto para poder culminar con
éxito mis estudios.
También se lo dedico a mis hermanos amados: Franklin, María, Jacinto, Verónica,
Jenny, Cristhian, Jonathan, Leonel Mora Guerrero por apoyarme de una u otra manera.
A mis cuñadas, sobrinos (a) que estuvieron apoyándome todos los días.
A mi esposo Anderson Aspiazu por su apoyo incondicional.
A mi Baby que viene en camino, que ha sido mi mayor fuerza para culminar esta nueva
etapa de mi vida.
Ángela Rocío Mora Guerrero.
AGRADECIMIENTO
A Dios, a mis padres por su apoyo moral y económico que me brindaron durante mis
etapas de estudios.
Le agradezco de manera muy especial al Dr. Omar Reyes Echeverría M.Sc. Por su guía,
apoyo incondicional y por darme el honor de ser mi tutor, ayudarme en todo el
transcurso de mi carrera y tutoría.
A todos quienes conforman la Facultad de Ciencias para el Desarrollo, a todos los
profesores por los conocimientos impartidos, en particular a los doctores: Abel Mora
Montes, Emilio Wong, Rafael Aspiazu Pimentel y también a la Dra. Consuelo Díaz.
A los productores de las distintas asociaciones por poner a disposición sus fincas y
ganado, con el fin de realizar mi trabajo de campo para esta investigación. Y por la gran
confianza depositada en mí capacidad profesional.
A mi gran amiga y hermana de corazón Soaneth Álvarez García que siempre estuvo en
los buenos y malos momentos de mi vida.
A mis amigos y compañeros de aula: Andrés Briones, Yilber Cordero, Egner Peralta,
Michel Sánchez, por su apoyo durante todos los días que compartimos en clases.
Ángela Rocío Mora Guerrero.
_________________________________
Ángela Rocío Mora Guerrero.
La responsabilidad del contenido del presente
proyecto de Investigación y Titulación, corresponde
exclusivamente a la Autora: Ángela Rocío Mora
Guerrero, y el patrimonio intelectual de la misma a la
Universidad de Guayaquil Facultad de Ciencias para
el Desarrollo, del cantón Vinces.
ÍNDICE GENERAL
INDICE DE CONTENIDO.……………………………………………..….….….. I-
III
INDICE DE TABLAS.….…………………………..………………..……..….……. IV
INDICE DE GRAFICOS……..…………………………………………………..……
V
RESUMEN…….………..…………………………………………….…..……..…….VI
SUMMARY………..…….……………………………………………….…….
……..VII
I. INTRODUCCIÓN.......................................................................................................11.1 Antecedentes................................................................................................................11.2 Justificación..................................................................................................................21.3 Situación problematizadora..........................................................................................3
1.3.1 Descripción del problema................................................................................31.3.1.1 El problema..................................................................................................31.3.2 Preguntas de la Investigación..........................................................................3
1.4 Delimitación del problema...........................................................................................31.4.1Temporal...........................................................................................................31.4.2 Espacial............................................................................................................4
1.5 Objetivos......................................................................................................................41.5.1 General.............................................................................................................41.5.2. Específicos......................................................................................................4
II. MARCO TEÓRICO...................................................................................................52.1 La mastitis....................................................................................................................5
2.1.1 Generalidades..................................................................................................52.2 Fisiología de la lactación..............................................................................................5
2.2.1 El desarrollo de la glándula mamaria..............................................................62.2.2 Mamogénesis...................................................................................................72.2.3 Lactogénesis y galactopoiesis..........................................................................72.2.4 Flujo sanguíneo mamario................................................................................7
2.3 La ubre bovina..............................................................................................................82.4 Tipos de mastitis..........................................................................................................9
2.4.1 Clasificación de la mastitis de acuerdo al origen.............................................92.4.1.1 Mastitis contagiosa.......................................................................................92.4.1.2 Mastitis originada en la piel de los pezones.................................................9
I
2.4.1.3 Mastitis ambiental........................................................................................92.4.1.4 Mastitis iatrogénica......................................................................................9
2.5 Clasificación de la mastitis por la intensidad de la infección....................................102.5.1 Mastitis Subclínica.........................................................................................102.5.2 Mastitis Clínica..............................................................................................102.5.2.1. Mastitis Moderadamente Aguda (MMA)...................................................102.5.2.2 Mastitis Severamente Aguda (MSA)...........................................................112.5.2.3 Mastitis Crónica (MC)................................................................................112.5.2.4 Mastitis con glándula improductiva o glándula ciega (MI).......................12
2.6 Etiología.....................................................................................................................122.7 Patógenos...................................................................................................................13
2.7.1 Staphylococcus aureus...................................................................................132.7.2 Streptococcus agalactiae...............................................................................142.7.3 Streptococcus dysgalactiae............................................................................142.7.4 Streptococcus uberis......................................................................................142.7.5 Coliformes......................................................................................................142.7.6 Escherichia coli.............................................................................................152.7.7 Pseudomonas.................................................................................................162.7.8 Corynebacterium...........................................................................................172.7.9 Bacillus cereus...............................................................................................17
2.8 Diagnóstico de mastitis bovina..................................................................................172.8.1 Pruebas de Laboratorio..................................................................................182.8.2 Pruebas en Tanque.........................................................................................182.8.3 Pruebas de Campo.........................................................................................182.8.3.1 California Mastitis Test..............................................................................18
2.9 Factores que predisponen a la mastitis por el mal manejo del ordeño.......................202.10 Patogenia de la mastitis bovina................................................................................212.11 Síntomas de la mastitis bovina.................................................................................212.12 Tratamiento de la mastitis bovina............................................................................212.13 Experiencias investigativas......................................................................................21III. MARCO METODOLÓGICO................................................................................233.1 Área de estudio...........................................................................................................23
3.1.1 Localización...................................................................................................233.1.2 Caracterización de la zona de trabajo............................................................233.1.3 Universo.........................................................................................................233.1.4 Tipo de muestreo...........................................................................................23
3.2 Manejo de la investigación.........................................................................................23
II
3.2.1 Socialización del proyecto.............................................................................233.2.2 Usos de datos.................................................................................................243.2.3 Toma de muestra y análisis............................................................................243.2.4 Variables evaluadas.......................................................................................24
3.3 Instrumentos...............................................................................................................253.3.1 Material Animal.............................................................................................253.3.2 Materiales de campo......................................................................................253.3.3 Materiales de laboratorio...............................................................................253.3.4 Materiales de oficina......................................................................................253.3.5 Equipos..........................................................................................................253.3.6 Insumos y reactivos de laboratorio................................................................25
3.4 Prueba estadística.......................................................................................................263.4.1 Análisis de datos............................................................................................263.4.2 Tamaño de muestra........................................................................................27
IV. RESULTADOS........................................................................................................284.1 Determinar por el método California Mastitis Test (CMT) la incidencia de mastitis subclínica..........................................................................................................................284.2. Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a la zona con mayor porcentaje.........294.3 Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a los cruces raciales............................30
4.3.1 Porcentaje de mastitis por cruce raciales en la asociación Guare..................314.3.2 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación la
Carmela.........................................................................................................324.3.3 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación 29 de
Septiembre.....................................................................................................334.3.4 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación
Concepción....................................................................................................344.3.5 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación San
Francisco de Chojampe.................................................................................35V. DISCUSIÓN..............................................................................................................36VI. CONCLUSIONES...................................................................................................37VII. RECOMENDACIONES........................................................................................38ANEXOS.........................................................................................................................43
III
INDICE DE CUADROS
Cuadro 1. Interpretación de los resultados de la prueba de CMT..................................19
Cuadro 2. Incidencia de mastitis subclínica por método California Mastitis Test
(CMT) en hatos ganaderos de la parroquia Guare del cantón Baba..............28
Cuadro 3. Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a la zona con mayor porcentaje.
..........................................................................................................................................29
Cuadro 4. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en hatos ganaderos de
la parroquia Guare.........................................................................................30
Cuadro 5. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación Guare.
..........................................................................................................................................31
Cuadro 6. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación La
Carmela.........................................................................................................32
Cuadro 7. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación 29 de
septiembre.....................................................................................................33
Cuadro 8. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación
Concepción....................................................................................................34
Cuadro 9. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación San
Francisco de Chojampe.................................................................................35
IV
INDICE DE GRAFICOS
Grafico 1. Incidencia de mastitis subclínica por método CMT.......................................43
Grafico 2. Incidencia de mastitis subclínica por método CMT.......................................43
Grafico 3. Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a la zona con mayor porcentaje.
..........................................................................................................................................44
Grafico 4. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales.....................................44
Grafico 5. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación Guare.
..........................................................................................................................................45
Grafico 6. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación La
Carmela.........................................................................................................45
Grafico 7. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación 29 de
septiembre.....................................................................................................46
Grafico 8. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación
Concepción....................................................................................................46
Grafico 9. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación San
Francisco de Chojampe.................................................................................47
V
RESUMEN
El presente trabajo de investigación cuyo tema fue: Incidencia de mastitis subclínica por
el método California Mastitis Test (CMT) en los hatos ganaderos bovinos de la
parroquia Guare del cantón Baba, cuyos objetivos específicos fueron: determinar la
incidencia de mastitis subclínica por el método California Mastitis Test, establecer la
zona de mayor incidencia, así como también identificar los cruces raciales de animales
bovinos más afectados. Se lo realizó en los meses de octubre a diciembre de 2015. El
diseño experimental utilizado fue, el transversal no experimental, con prueba estadística
estratificada, el universo fue 606 vacas en producción de las cuales se extrajeron 96
unidades experimentales. Como resultado se obtuvo una incidencia de mastitis
subclínica de 63,54 %; la zona de mayor incidencia correspondió a Concepción con
89,47 % y el cruce racial de mayor incidencia fue el B. Taurus (Brown Swiss/
Brahaman) con 42,71 %, se recomienda realizar trabajos en este sector sobre el conteo
de células somáticas, también a los productores que tomen en consideración que hay
que tener una buena asepsia antes, durante y después del ordeño ya sea este manual o
mecánico para evitar la proliferación de patógenos que causan la mastitis tanto
subclínica como clínica, y así no tener bajos rendimiento en la producción de leche.
Palabras claves: Leche, California Mastitis Test, vaca, mastitis subclínica, Guare.
SUMMARY
The present research was the following: Incidence of subclinical mastitis by the
California Mastitis Test (CMT) method in bovine herds of the Guare parish of Baba,
whose specific objectives were to determine the incidence of subclinical mastitis by the
California method Mastitis Test, establish the area of highest incidence, as well as
identify the racial crosses of bovine animals most affected. It was carried out in the
months of October to December of 2015. The experimental design used was, non-
experimental transversal, with statistical stratified test, the universe was 606 cows in
production of which 96 experimental units were extracted. As a result, an incidence of
subclinical mastitis of 63.54% was obtained; The area with the highest incidence was
Concepción with 89.47% and the racial crossroads with the highest incidence was B.
Taurus (Brown Swiss / Brahaman) with 42.71%, it is recommended to carry out work in
this sector on the somatic cell count , Also to producers who take into account that it is
necessary to have a good asepsis before, during and after milking either this manual or
mechanic to avoid the proliferation of pathogens that cause mastitis both subclinical and
clinical, and thus not have low yield In milk production.
Key words: Milk, California Mastitis Test, cow, subclinical mastitis, Guare.
I. INTRODUCCIÓN
La mastitis es una enfermedad causada por microorganismos que se introducen a través
de la piel de la ubre, y pueden ser provocada por la inadecuada asepsia antes, durante y
después del ordeño: lo que puede causar inflamaciones en la ubre. Es una enfermedad
común y costosa en la industria lechera, que afecta en cantidad y calidad la producción
de leche en un rango del 4 % al 30 %, según lo manifiesta Bedolla y Ponce (2008) lo
cual genera que los costos se eleven en los hatos bovinos.
La mayoría de las glándulas mamarias con mastitis subclínica no se identifica con
facilidad porque no presenta síntomas; por lo cual, las vacas en producción son
propensas a contraer esta afectación. La técnica más empleada para detectar la
afección, es mediante el método de diagnóstico California Mastitis Test (CMT); la cual
se la realiza antes del ordeño.
A pesar del progreso científico, aún subsiste la mastitis en hatos lecheros,
estimándose que casi la mitad de las vacas están infectadas por alguna forma de mastitis
en uno o más de los cuartos de su ubre. A menudo los ganaderos no están viendo todo
los cuartos, ven solo los casos clínicos evidentes y no ven la mastitis subclínica que es
mucho más prevalente, aumentando los costos de producción y disminuyendo la calidad
de la leche.
1.1 Antecedentes
Según en lo que manifiesta López et al., (2006) que en Estados Unidos de América, el
costo promedio del tratamiento de mastitis clínica fluctúa entre $ 27-50 (vaca/año), en
Chile se estableció que la disminución en la producción de leche por lactancia en vacas
con mastitis clínica puede llegar a un 14 % de incidencia, el Consejo Nacional de
Mastitis en México, donde revela una pérdida promedio de $ 225 anuales por vaca en el
hato, de los cuales $ 78 son atribuidos a casos de mastitis clínica.
La mastitis es un síndrome multifactorial, de más de 100 enfermedades y
clínicamente significa inflamación de la glándula mamaria; ésta inflamación se debe a la
presencia de patógenos que se convierte en una infección provocando daños al epitelio
mamario (Cano, 2006).
Según lo manifestado por Bedolla, (2008), el CMT es una de las pruebas más utilizada
para diagnóstico de mastitis subclínica debido a que es simple, económica y rápida;
además se utiliza a nivel de campo en los hatos ganaderos.
En el trabajo realizado por Salvador y Peñafiel, (2011) donde realizaron un
estudio cuyo tema fue, determinación de la incidencia de mastitis subclínica mediante
los métodos (CMT) y Somaticell, en cinco Ganadería del cantón Vinces provincia de
Los Ríos, en el cual determinaron una incidencia de 22 % resultando 253 casos
positivos de un total de 1 176 animales muestreados en producción.
Según Caraguay, (2012) en su trabajo que realizo sobre diagnóstico de mastitis
subclínica por el método california mastitis test, aislamiento, identificación, y
sensibilidad del germen, en las ganaderías de la parroquia Chantaco del cantón Loja,
donde estudio 91 fincas ganaderas con una población de 192 vacas en producción, en el
cual se analizaron 135 cuartos afectados, que los cuartos posteriores obtuvieron un 27,4
% de incidencia, mientras que en los cuartos anteriores 22,6 %.
1.2 Justificación
La disponibilidad de leche cruda en el país es de alrededor de 5’100 000 millones de
litros por día, destinándose el 75 % para consumo humano según lo manifestado por
(Grijalva, 2013). La importancia de la determinación de mastitis no se relaciona
únicamente con las pérdidas económicas sino también con la posible contaminación de
la leche y de los productos lácteos que pueden sufrir deterioros indeseables y además
representan un peligro para la salud de los consumidores.
La mastitis subclínica es una enfermedad que afecta a la producción de leche en el
Ecuador, donde su diagnóstico requiere de pruebas a base de reactivos como es el de
California Mastitis Test, lo cual nos permitirá saber si hay infección en los cuartos
mamarios para tratarlos a tiempo y prevenir el desarrollo de la infección.
El motivo principal que ha llevado a realizar esta investigación, es para dar a
conocer la incidencia de mastitis subclínica, lo cual es de mucha importancia realizar la
prueba del CMT en los hatos bovinos, lo que permite verificar y prevenir la mastitis
2
clínica, como subclínica, evitando la perdida de leche, posible descarte del animal,
menos gasto en veterinario y en medicamentos para el productor.
1.3 Situación problematizadora
1.3.1 Descripción del problema.
Esta enfermedad constituye un importante problema tanto para la salud pública como
para la economía del sector lechero en general. Los cálculos mundiales recientes han
revelado que la mastitis representa el 30 % del costo total de todas las enfermedades
(bacterianas, parasitarias, nutricionales, víricas) en el ganado lechero (Reyes, 2015).
Unos de los principales problemas de la mastitis son las malas prácticas en los
hatos bovinos, que permiten el ingreso de microorganismos patógenos a las glándulas
mamarias causando el daño físico del tejido, provocando así su inflamación.
1.3.1.1 El problema.
Las malas prácticas para la extracción láctea (medio ambiente, traumatismo, ordeño,
anti asepsia, etc.) son la causa principal para que se presente una alta incidencia de
mastitis subclínica. Lo cual acarrea pérdidas económicas de los productores de las
asociaciones ganaderas de la parroquia Guare: la cual, puede originar una disminución o
total supresión de la secreción láctea y ocasionando cuartos mamarios no funcionales y
posibles descartes del animal.
1.3.2 Preguntas de la Investigación.
¿Habrá una alta incidencia de mastitis subclínica en los hatos ganaderos de la parroquia
Guare?
¿Cuál será la zona de mayor incidencia de mastitis subclínica en la parroquia Guare?
¿Cuál será el cruce racial con mayor incidencia de mastitis?
1.4 Delimitación del problema
1.4.1Temporal.
En el siglo XVIII se argumentó sobre la mastitis bovina, siendo Willburg y Abildgar
1776 y 1778, los primeros en hacer referencia de esta enfermedad, a partir del periodo
3
señalado se dieron múltiples informes con los cuales se fue adquiriendo una concepción
más contemporánea de la enfermedad.
1.4.2 Espacial.
El trabajo se realizó en cinco asociaciones ganaderas perteneciente a la parroquia Guare
del cantón Baba provincia de Los Ríos.
1.5 Objetivos
1.5.1 General.
Determinar la incidencia de mastitis subclínica por el método California Mastitis
Test (CMT) en los hatos ganaderos bovinos de la parroquia Guare del cantón
Baba.
1.5.2. Específicos.
Determinar la incidencia de mastitis subclínica por el método California Mastitis
Test, en la parroquia Guare.
Establecer la zona de mayor incidencia de mastitis subclínica, en la parroquia
Guare.
Identificar los cruces raciales bovinos que presentan mayor incidencia de
mastitis subclínica en la parroquia Guare.
4
II. MARCO TEÓRICO
2.1 La mastitis
2.1.1 Generalidades.
Mastitis (del griego mastos = glándula mamaria y del sufijo itis = inflamación). Se
define como la inflamación de la glándula mamaria que generalmente se presenta como
una respuesta a la invasión por microorganismos y se caracteriza por daños en el
epitelio glandular, seguido por una inflamación clínica o subclínica, pudiendo
presentarse con cambios patológicos localizados o generalizados, dependiendo de la
magnitud del daño. (Ávila & Gutiérrez, 2004).
Según Acebo (2006) la mastitis es la enfermedad más común y costosa en el
ganado lechero, debido a los efectos que ocasiona sobre la producción y la calidad de
leche, algunas investigaciones aseguran que la mastitis causa una disminución en la
producción del 70 % de las pérdidas totales, y otros porcentajes contribuyen a la
disminución en el precio por deficiencias de calidad, gastos en medicamentos, servicio
veterinario, desecho de animales, descarte en la leche, problemas de residuos de
antibióticos.
2.2 Fisiología de la lactación
La fisiología de la lactación abarca el desarrollo de la glándula mamaria desde la etapa
fetal hasta la edad adulta, el desarrollo futuro durante la preñez y el inicio de la lactancia
con los consecuentes sucesos adaptativos metabólicos y de comportamiento, al inicio de
la preñez el sistema endocrino sufre dramáticos cambios, el crecimiento de la glándula
mamaria es estimulado por la hormona de crecimiento (HC) y la prolactina (PRL),
esteroides adrenocorticales, estrógeno y progesterona, gastrina y secretina del sistema
gastrointestinal.
El inicio de la lactancia es acompañado por aumento del volumen sanguíneo,
producción cardiaca, flujo sanguíneo mamario y flujo sanguíneo a través del flujo
sanguíneo hepático y gastrointestinal, que proveen a la glándula mamaria con nutrientes
y hormonas para la síntesis de leche, el reflejo de eyección se activa con la presencia de
leche en la glándula y la oxitocina que actúa en la contracción de las células
mioepiteliales. Además de los mecanismos centrales, mecanismos locales dentro de la
5
glándula mamaria regulan el inicio de la lactancia, mantenimiento, regulación del flujo
sanguíneo y adoptosis (muerte programada) de las células de la glándula mamaria.
Una mayor eficiencia en la respuesta de oxitocina se obtiene si la vaca es
alimentada durante el ordeño, además del ordeño, la oxitocina tiene influencia en el
comportamiento maternal y el metabolismo, la fisiología de la lactancia es uno de los
más interesantes y cambiantes áreas de investigación en biología debido a los sistemas
de selección y reproductivos, las vacas lecheras producen mucho más leche que la
necesaria para criar su cría. A pesar del aumento de la producción lechera, la
composición de la leche se mantiene y no reproduce los cambios productivos, los
cambios en las demandas metabólicas en las vacas en lactancia tienden a aumentar, los
trastornos en la lactancia se manifiestan y relacionan con stress metabólico, mastitis,
patologías pódales.
(Glauber, 2016).
2.2.1 El desarrollo de la glándula mamaria.
El desarrollo de la glándula mamaria se inicia en el feto en todas las especies
mamíferas, en el feto bovino desde el ectodermo las líneas mamarias son visibles desde
el día 35, alrededor del tercer mes los canales mamarios y se forman los conductos
excretorios y luego se forman los alvéolos, el sistema excretorio es completado al final
del segundo trimestre de la vida fetal, durante el primer estadio post-natal el proceso de
crecimiento es a una tasa igual que el resto del cuerpo (crecimiento isométrico). Al
comienzo del tercer mes la glándula mamaria comienza a crecer de dos a cuatro veces
más rápido que el resto del cuerpo hasta la pubertad (crecimiento alométrico), previo a
la pubertad el tejido mamario es influenciado por factores de crecimiento y hormonas.
A edad adulta el ciclo de la lactación puede dividirse en periodos consecutivos:
mamogénesis, lactogénesis, galactopoiesis e involución. Cada fase caracterizada por un
estricto control hormonal donde tres categorías de hormonas están involucradas:
hormonas reproductivas (estrógenos, progesterona, lactógeno - placentaria, prolactina y
oxitocina) actúan directamente sobre la glándula mamaria, las hormonas del
metabolismo (hormona crecimiento, corticoesteroides, tiroides, insulina) que funcionan
en distintas partes del cuerpo y a menudo tienen efecto sobre la glándula y finalmente
hormonas de producción local que incluyen la hormona de crecimiento, prolactina,
6
paratiroidea-peptídica (PTHrp) y leptina (recientemente descripta, hormona con síntesis
en el tejido adiposo pero también en la glándula mamaria). La PTHrp se expresa en
células del epitelio mamario durante la lactación y recientes experimentos en cobayos
informan que su secreción puedes relacionarse con las concentraciones de calcio
extracelular y su importancia en el transporte de calcio desde la sangre a la leche.
(Glauber, 2016).
2.2.2 Mamogénesis.
Hormonas del metabolismo, factores de crecimiento y prolactina son necesarias para el
normal desarrollo de la glándula mamaria con especial referencia a las hormonas
sexuales esteroideas, a través de la gestación, la proliferación del epitelio mamario es
dependiente de estrógenos y progesterona. Los receptores específicos para esas
hormonas se expresan en niveles muy bajos durante la mamogénesis o lactogénesis, las
dos hormonas interactúan y se refuerzan sinérgicamente entre ambas. Asimismo, los
estrógenos también estimulan la secreción de IGF-I (Factor crecimiento-insulina) a
partir de las células del estroma de la glándula mamaria y causa el crecimiento de
células epiteliales, la mamogénesis no ocurre en ausencia de prolactina y hormona de
crecimiento. (Glauber, 2016).
2.2.3 Lactogénesis y galactopoiesis.
La producción de leche es controlada por las hormonas lactogénicas prolactina y
Hormona de Crecimiento (HC) durante la lactogénesis y lactopoiesis. Prolactina y HC
son esenciales para la transición de proliferativo a glándula mamaria lactando a través
del dominio de HC sobre la prolactina durante la galactopoiesis en rumiantes a
diferencia de humanos y cobayos. En el mantenimiento de la producción lechera o
galactopoiesis la prolactina (PRL) en la vaca lechera reviste importancia, la acción de la
prolactina es a través del epitelio mamario en forma directa o factores de transcripción,
semejante a la HC que actúa en forma directa en la glándula o indirectamente con
producción de IGF-I local o producida en el hígado, las célula mamarias bovinas
presentan receptores IGF-I y II, receptores de insulina y proteínas de unión IGF
(Glauber, 2016).
2.2.4 Flujo sanguíneo mamario.
El parénquima mamario y su red de capilares se desarrollan en paralelo y
7
comparativamente en una tasa más lenta desde la preñez. El desarrollo de conductos y
bifurcaciones del parénquima mamario madura a lo largo con el crecimiento mamario.
El volumen sanguíneo se expande en el animal preñado y alrededor del 15 % de la
producción cardiaca está directamente relacionada con la unión placenta-fetal hasta el
fin de la preñez, en el parto la mayoría del flujo es removido del útero a la glándula
mamaria en el cual un óptimo flujo sanguíneo de la glándula es esencial para la
producción de leche para proveer los precursores en la síntesis necesaria de los
elementos de la leche.
(Glauber, 2016).
Asimismo, otros órganos como el tracto gastrointestinal y el hígado también usan
parte de ese elevado volumen sanguíneo donde la producción de CO2 ha sido
directamente correlacionada con el flujo sanguíneo mamario, aunque el flujo sanguíneo
mamario aumenta tremendamente al parto, el completo desarrollo de la red capilar y
actividad metabólica a juzgar por la actividad de la anhidrasa carbónica en el endotelio
capilar no se alcanza hasta varios días después del parto en la cabra, y por último el
flujo sanguíneo de la glándula mamaria es luego correlacionado con la producción de
leche y disminuye luego del pico de lactancia cuando comienza a declinar la
producción.
(Glauber, 2016).
2.3 La ubre bovina
Según Bone (como cito Bermeo, 2014). La estructura glandular de la ubre es
relativamente simple formada por un armazón de tejido fibroso (estroma) que sostiene
la substancia alveolo-glandular (parénquima), el drenaje alveolar se realiza a través de
los conductos alveolares los cuales se agregan para formar los conductos colectores,
estos desembocan en un gran espacio, que el seno lácteo o cisterna, que a su vez termina
en la cavidad del pezón de donde pasa al conducto o canal galactóforo, la misma que
está conformada de cuatro partes o cuartos, (dos posteriores y dos anteriores; derecho e
izquierdo respectivamente) cada uno completamente separado de los otros y provistos
de un sistema individual de conductos y un pezón.
Generalmente, los cuartos posteriores son ligeramente más desarrollados y
producen más leche (60 %) que los cuartos anteriores (40 %). (FMVZ, 2010)
8
Morfológicamente la glándula mamaria se deriva de la piel, sin embargo esta
estructura está tan íntimamente asociada con la función reproductiva y es vital para el
desarrollo normal de las crías mamíferas que desde el punto de vista fisiológico se les
debería clasificar como un órgano reproductivo accesorio. Por lo general las glándulas
mamarias se desarrollan ostensiblemente en la hembra en la pubertad, en ese momento
la glándula crece, pero la mayor parte de su crecimiento comprende tejido conectivo y
adiposo, más que tejido glandular, con cada celo hay un ligero agrandamiento y
desarrollo del tejido glandular y conductos, después involucionan incompletamente para
ser nuevamente estimulados en el siguiente estro, sin embargo este crecimiento es
mínimo y la glándula no se acerca a su estado funcional sino hasta que el animal queda
preñado.
El mismo autor manifiesta que el crecimiento del tejido lácteo depende de por lo
menos de dos hormonas: estrógenos del folículo de graaf y progesterona del cuerpo
lúteo, durante la preñez la constante secreción de progesterona causa el desarrollo del
tejido glandular de las mamas y par cuando llega el parto son capaces de producir leche,
la leche es producida por un proceso secretorio verdadero pues difiere en estructura y
composición de la sangre, de la cual deriva.
2.4 Tipos de mastitis
2.4.1 Clasificación de la mastitis de acuerdo al origen.
Según Varela (2002), la mastitis se clasifica de la siguiente manera:
2.4.1.1 Mastitis contagiosa.
Streptococcus agalactiae, Staphylococcus aureus, Corynebacterium bovis, Mycoplasma
spp.
2.4.1.2 Mastitis originada en la piel de los pezones.
Staphylococcus no aureus, S. hyicus, S. chromogenes y otros, Streptococcus no
agalactiae, S. dysgalactiae, S. bovis, S. uberis, entre otros.
2.4.1.3 Mastitis ambiental.
9
Escherichia coli, Enterobacter spp, Pseudomonas aeruginosa, Klebsiella spp, Serratia
spp, Citrobacter freundii.
2.4.1.4 Mastitis iatrogénica.
Asociada al uso inadecuado de cánulas intramamarias con la etiología de Mohos o
Levaduras de los géneros: Candida, Cryptococcus y Trichosporum.
El aspecto cremoso de la secreción láctea, el largo periodo de evolución de la
enfermedad, la no respuesta clínica a antibióticos y el uso repetido de los mismos por
vía intramamarias son factores que se deben tener en cuenta para sospechar de estos
microorganismos.
2.5 Clasificación de la mastitis por la intensidad de la infección
2.5.1 Mastitis Subclínica.
Según Pinzón (1989) la mastitis subclínica no es fácilmente visible ni se puede detectar
sin ayuda de pruebas especiales, casi todos los cuartos afectados se ven normales y la
leche tiene apariencia normal; pero según Ávila y Gutiérrez (2004) existe una
disminución en la producción de leche e incremento en el número de células somáticas.
La mastitis subclínica es considerada la más importante por diversas razones,
como menciona Pinzón (1989), es de 15-40 veces más común que la mastitis clínica,
generalmente precede a la forma clínica, por lo tanto, si queremos controlar la forma
clínica, debemos empezar por controlar la subclínica, es de larga duración, es difícil de
detectar, disminuye la producción de leche, influye negativamente en la calidad de la
leche, provoca infección en otros animales del rebaño.
2.5.2 Mastitis Clínica.
Es aquella que se puede ver a simple vista y se caracteriza por anormalidades en la leche
tales como escamas o grumos. A nivel de la vaca enferma, el cuarto afectado puede
estar caliente, inflamado y sensible (Pinzon, 1989). La clasificación de la mastitis
clínica es:
2.5.2.1. Mastitis Moderadamente Aguda (MMA).
La infección tiene más de 24 horas, la vaca presenta sus constantes fisiológicas y ubre
10
totalmente normales, pero en la leche se observa natillas o tolondrones que pueden ser
detectados al realizar la prueba del tazón oscuro obligatoria antes de ordeñar a cada vaca
se reduce en un 30 % la producción.
La MMA se trata localmente por vía intramamarias o intrapezón, se desinfecta la
abertura natural del pezón y se aplican productos comerciales para mastitis, es decir
cada 12 horas, utilizando el mismo producto comercial con el mismo principio activo
por tres ordeños consecutivos o de acuerdo lo requiera el caso, si este tratamiento no es
efectivo se debe cambiar a otro antibiótico aplicándolo por tres ordeños por lo menos; al
seguir el procedimiento mencionado se evitará resistencia a los antibióticos aplicados.
(Cano, 2006).
2.5.2.2 Mastitis Severamente Aguda (MSA).
La infección tiene más de 72 horas, las constantes fisiológicas están normales; la leche
sale con más cantidad de tolondrones, se puede apreciar cierta inflamación en la
glándula mamaria, la misma que está dura y caliente. Se pierde el 40 % de producción
(Cano, 2006). Según Ávila y Gutiérrez (2004), en esta forma de mastitis podrán
presentarse signos sistémicos como septicemia, toxemia, fiebre, anorexia, depresión,
movimientos ruminales disminuidos, entre otros signos.
La MSA se tratará local y parenteral, con el mismo principio activo, cada 12 horas
por un lapso no menor a tres días, ya que esto provocaría resistencia; si se desea utilizar
otro antibiótico deberá ser uno que sea sinérgico, cuidando de no usar principios activos
antagónicos que se inactiven o provoquen daño; para lo cual es necesario tener un
conocimiento en farmacología (Cano, 2006).
2.5.2.3 Mastitis Crónica (MC).
La infección tiene más de cinco días, toda la leche sale con tolondrones, la ubre está
severamente inflamada, endurecida y caliente, la vaca tiene fiebre, taquicardia, atonía
ruminal, anorexia, se pierde el 50 % de producción (Cano, 2006).
La MC también se tratará local y parenteral, igual que la anterior con la diferencia
de que al estar más tiempo infectada el tratamiento será más prolongado, más agresivo,
la glándula tardará más en recuperarse y las pérdidas económicas serán mayores; ya que
11
se considera la leche que se deja de producir, la leche que se tira por la infección y por
el tiempo del tratamiento. Al utilizar el antibiótico vía parenteral la dosis inicial es
generalmente el doble en comparación a las dosis subsecuentes, el tratamiento dura
aproximadamente cinco días. Antes de realizar el tratamiento local es necesario
efectuar lavados intramamarias con Soluciones Salinas Fisiológicas (SSF) y antibiótico,
acompañadas de un masaje, el lavado debe realizarse las veces que sea necesario hasta
que la solución salga sin tolondrones o exudados y posteriormente se iniciará con el
tratamiento local (Cano, 2006).
Se realizará un tratamiento sintomático, si el animal presenta fiebre, dolor e inflamación
mediante la aplicación de un antipirético, analgésico y anti inflamatorio; si presenta
anorexia se aplica por vía oral una transfusión de líquido ruminal con sonda, microflora
comercial liofilizada o estimular el apetito con vitaminas; si esta deshidratado se
aplicará agua por vía oral con sonda o se aplicarán sueros intravenosos, subcutáneos o
intraperitoneales según el porcentaje de deshidratación y así aplicar el tratamiento según
sean los síntomas (Cano, 2006).
2.5.2.4 Mastitis con glándula improductiva o glándula ciega (MI).
La infección tiene en ocasiones semanas, la glándula se ve pequeña, está flácida y fría,
no se obtiene leche sino exudados, las constantes fisiológicas están normales debido a
que la fibrina aisló esta glándula provocando una hipoxia y necrosis del parénquima con
abscesos y exudados; inclusive el parénquima se pude desprender. (Cano, 2006).
La Mastitis con glándula improductiva se trata igual que la crónica, el primer
lavado se dará con SSF y antisépticos para retirar los exudados, tejidos infectados o
necrosados, después se lavará con la Solución Salina Fisiológica y antibiótico para
retirar el desinfectante. Para el tratamiento local se usarán jeringas antimastiticos para
secado de tal manera que el antibiótico permanezca más tiempo y así eliminar el foco de
infección y salvar la mayor cantidad de tejido glandular posible (Cano, 2006).
2.6 Etiología
La principal causa de esta enfermedad es infecciosa, aunque existen otras. Son diversos
los agentes infecciosos productores de mastitis, en los bovinos los agentes comúnmente
encontrados son: Bacterias, como Streptococcus agalactiae, Streptococcus dysgalactiae,
12
Streptococcus uberis, Escherichia coli, Pasteurella sp, Staphylococcus aureus,
Clostridium perfringens, Nocardia asteroides, Mycoplasma bovis, Corynebacterium
pyogenes, Pseudomonas sp., Leptospira sp., Serratia sp., Klebsiella sp., Fusobacterium
sp.; algas, como Prototheca sp.; hongos, como Aspergillus fumigatus, Trichosporon sp,
y Candida sp.; además de levaduras, como Cryptococcus neoformans, etcétera. Si bien,
no son todas las que se pueden aislar, sí son las más comunes. Es importante mencionar
que generalmente son gérmenes asociados y se aíslan de acuerdo al agente que
predomine en la infección (Gómez, 2015).
2.7 Patógenos
Según (Pinzón 1989), la mastitis es ocasionada por organismos microscópicos que
penetran la ubre a través del canal de los pezones, la penetración puede ocurrir por
multiplicación, movimiento mecánico, propulsión durante el ordeño o por una
combinación de factores. Aproximadamente del 90 % al 95 % de los casos son
provocados por cuatro microorganismos, los cuales son: Staphylococcus aureus,
Streptococcus uberis, Streptococcus agalactiae, Streptococcus dysgalactiae.
Según Kirk (1984), los gérmenes más importantes de la inflamación de la ubre
son los estreptococos, los estafilococos, los coliformes, corynebacterium pyogenes, las
pseudomonas y levaduras. Los gérmenes menos frecuentes son los micoplasmas,
clostridios, klebsiella, aerobacter, bacilo céreo, nocardias, hongos.
2.7.1 Staphylococcus aureus.
Está permanentemente en el medio ambiente de la vaca y su depósito principal en las
vacas adultas lo constituyen las ubres y pezones afectados, este organismo no progresa
en la piel de los pezones sanos, pero rápidamente forma colonias en los canales de los
pezones, especialmente si existe lesión cerca de las puntas de las mismas, lo cual facilita
su penetración al interior de la ubre y la invasión de los tejidos de la misma,
ocasionando la formación de un tejido cicatrizal. Este tejido impide que los
medicamentos penetren en los lugares infectados, haciendo que el tratamiento en la
lactancia sea a menudo ineficaz. (Pinzon, 1989).
Staphylococcus aureus son patógenos contagiosos y son transmitidos por los
tejidos infectados durante el proceso de ordeño, este patógeno puede producir gangrena
13
y afectar otros tejidos; sin embargo no pueden sobrevivir grandes periodos en el medio
ambiente (Hogan, 1999).
Es un microorganismo esférico aproximadamente de 0.8 micrómetros de
diámetro, que en frotis teñido con la técnica de Gram aparece de color púrpura (Gram
positivo) y en racimos, haciendo honor a su nombre en griego "staphylo" que quiere
decir en racimo de uvas; no son móviles, ni forman esporas, generalmente no
capsulados aunque en ocasiones pueden aparecer aislamientos con cápsula (Ávila &
Gutiérrez, 2004).
2.7.2 Streptococcus agalactiae.
Es común en muchos rebaños lecheros y se encuentra principalmente en ubres
infectadas. En rebaños infectados, el organismo puede aislarse del aire, en el lugar
donde duermen los animales, en el equipo de ordeño, las manos del ordeñador u otros
objetos, pero su presencia en esos lugares es el resultado de la contaminación con leche
infectada; al no haber infección en la ubre, el organismo desaparecerá de todos estos
lugares secundarios, normalmente dentro de tres semanas.
Este microorganismo es considerado un parásito obligatorio, y el único organismo
susceptible de ser erradicado de todo un rebaño lechero, es muy sensible al tratamiento
de penicilina, incluso, durante la lactancia. Con una excelente higiene, el buen manejo
del ordeño, el tratamiento de las infecciones conocidas durante la lactancia y el
tratamiento de rutina en las vacas secas erradican el organismo o lo mantiene a un nivel
muy bajo (Pinzon, 1989).
2.7.3 Streptococcus dysgalactiae.
Según en lo manifestado por Pinzón (1989). La fuente principal son las ubres
infectadas, amígdalas y lesiones en la piel. El Streptococcus dysgalactiae puede ser
contagiado de una vaca a otra durante el ordeño y las vacas pueden también llegar a ser
infectadas por el medio ambiente (Hogan, 1999).
2.7.4 Streptococcus uberis.
Se encuentran con mayor frecuencia en la piel de la ubre y de los pezones, dentro de
éstas, es la causa más importante de infecciones antes de la primera parición y durante
14
el período de secado de la vaca (Pinzon, 1989).
El Streptococcus uberis y Streptococcus dysgalactiae son responsables también
por la mayoría de las mastitis que se presentan ya sea al comienzo o al final del período
de seca. Además de estas dos especies de bacterias, existen muchos otros estreptococos
ambientales (Streptococcus bovis, Streptococcus fecales) que pueden causar mastitis
(Adams & Moss, 2005).
2.7.5 Coliformes.
La incidencia de la infección es, generalmente poca, aunque pueden ocurrir brotes
cuando existen condiciones que aumentan la exposición a las mismas. Los coliformes
provienen del estiércol, las vacas más viejas, produciendo leche libre de leucocitos, son
susceptibles a ser atacadas por este patógeno (Pinzon, 1989).
Las bacterias coliformes son habitantes normales del suelo e intestino de las
vacas, lo cual se acumulan y multiplican en la materia fecal y en la cama. Los
coliformes pueden causar mastitis solamente si las partículas contaminadas del medio
ambiente entran en contacto con la ubre, estos microorganismos no se adhieren a los
conductos y al alvéolo de la ubre, en lugar se multiplican rápidamente en la leche y
producen toxinas que son absorbidas dentro del torrente circulatorio; produciendo
infecciones que conducen a mastitis clínicas agudas. La temperatura corporal de la vaca
puede elevarse a 40 °C y el cuarto infectado se inflamará y se volverá sensible al tacto y
los mecanismos de defensa de la vaca pueden eliminar las bacterias de la ubre, pero las
toxinas permanecen y la vaca puede llegar a morir. Las vacas libres de otras bacterias
causantes de mastitis (Streptococcus agalactiae y Staphylococcus aureus) parecen ser
más susceptibles a las bacterias coliformes.
Son microorganismos facultativos a excepción del género Klebsiella, móviles; los
géneros Escherichia y Klebsiella usualmente capsulados, no esporulados, Gram
negativos que fermentan la lactosa (Pérez & Vásquez, 1987). Se reporta que de un 80
% al 90 % de infecciones intramamarias por coliformes se presentan como una mastitis
clínica ligeramente aguda, donde es auto limitante y algunas veces como severamente
aguda (Ávila & Gutiérrez, 2004).
15
2.7.6 Escherichia coli.
Escherichia coli se encuentra en cantidades abundantes en el estiércol de los animales,
la frecuencia de presentación aumenta al inicio de la lactación y disminuye conforme
ésta avanza. (Rothbaver & Buchner, 1988). Los signos clínicos antes discutidos
generalmente dan la información suficiente para hacer un diagnóstico preliminar, pero
en ciertos casos clínicos será necesario diferenciar con infecciones causadas por
microorganismos Gram positivos, mediante el cultivo bacteriológico de una muestra de
leche (Ávila & Gutiérrez, 2004).
En la mastitis sobreaguda causada por Escherichia coli, la toxemia pude matar a una
vaca en 3 días, si no se da un tratamiento a tiempo, han dado resultado los tratamientos
a base de sulfatrimetoprin y las quinolonas con el tratamiento sintomático según los
signos (Pinzon, 1989).
2.7.7 Pseudomonas.
Generalmente aparece una infección persistente que puede estar caracterizada por
exacerbaciones agudas o sub-agudas intermitentes (Pinzon, 1989). Según Ávila y
Gutiérrez (2004), se puede manifestar clínicamente en formas variadas como:
severamente aguda, suave o crónica. La exposición extensa o tratamientos
intramamarias se ha registrado como una causa de la infección. Las Pseudomonas a
menudo emanan de fuentes de aguas contaminadas, de la tierra o de las máquinas
ordeñadoras que no han sido limpiadas debidamente (Pinzon, 1989).
Es un bacilo delgado Gram negativo que se tiñe con dificultad, de 0,3
micrómetros de ancho por 1-3 de largo, con extremos redondeados y provistos de tres
flagelos polares, microorganismo que también es fitopatógeno (Kirk, 1984).
Las Pseudomonas aeruginosa no crece en medios aeróbicos, coagula la leche por
las enzimas que produce, hidrolizando lentamente la caseína y coagula el suero
hepático. Elabora enzimas proteolíticas, piosinosas de origen lipoide que hemolizan
glóbulos rojos. Este microorganismo tiene propiedad bacteriolítica por sus enzimas
(piosinasa, alfahidroxifenazina y una sustancia oleosa) y una proteína termoestable.
(Ávila & Gutiérrez, 2004).
16
Las Pseudomonas aeruginosa ha sido aislada tanto de los animales infectados
como del agua utilizada para lavar el equipo de ordeño, considerándose ésta la fuente de
contaminación. La mastitis producida por P. aeruginosa, puede en ocasiones ser
confundida con mastitis gangrenosa por Staphylococcus aureus por los síntomas; de ahí
la importancia del diagnóstico de laboratorio como confirmación del diagnóstico clínico
antes de instaurar medidas terapéuticas y/o profilácticas ante un brote de mastitis.
(Heras., 2001).
2.7.8 Corynebacterium.
Corynebacterium es un bacilo pequeño de forma cocobacilar, ocasionalmente
pleomórfico de 0,2-0,3 y 0,5-2 micrómetros de largo, aeróbico, que en el frotis se puede
apreciar individualmente o formando empalizadas, es Gram positivo. Es resistente
cuando se encuentra en exudados y en material o equipo de trabajo contaminado.
Susceptible generalmente al iodo y penicilinas (Ávila & Gutiérrez, 2004).
Este patógeno produce una mastitis característica en vacas secas, se observa
también en vacas en lactancia donde produce una inflamación que se caracteriza por la
formación de un exudado purulento de olor fétido (Pinzon, 1989).
La colonización de la glándula mamaria por Corynebacterium bovis o especies de
Staphylococcus no proveen un efecto biológico de protección contra las infecciones
intramamarias por microorganismos ambientales y menos contra coliformes.
(Ávila & Gutiérrez, 2004).
El microorganismo puede ser transmitido por material o equipo contaminado de
una glándula mamaria enferma a otra durante la práctica de ordeño, por moscas
portadoras del microorganismo que coloniza a la glándula mamaria a nivel del conducto
del pezón o por traumatismos en la misma glándula (Ávila & Gutiérrez, 2004).
2.7.9 Bacillus cereus.
Es responsable en las glándulas mamarias de las vacas infectadas de presentación de
cuadros clínicos de mastitis hemorrágicas y ocasionalmente gangrenosas, es un
17
microorganismo aeróbico, formador de esporas, alargado con terminales redondeadas o
cuadradas, que se aprecia formando cadenas. En cultivo sobre gelosa sangre, las
colonia se aprecian vidriosas-glaseadas de color grisáceo-verdoso que producen
hemólisis.
(Ávila & Gutiérrez, 2004).
2.8 Diagnóstico de mastitis bovina
El diagnóstico de Mastitis Bovina debe estar orientado al conocimiento de la
prevalencia de la enfermedad en el hato, tipo epidemiológico de la enfermedad y la
resistencia bacteriana de los agentes involucrados.
Las pérdidas económicas en un hato se llegan a determinar por la disminución de la
producción, para lo cual es necesario identificar y corregir a tiempo los puntos críticos
que favorecen a la difusión de la enfermedad.
Es importante establecer un esquema de monitoreo que permita controlar la
enfermedad, es decir llevar a cabo un manejo adecuado de los animales, especialmente
durante el ordeño, condiciones ambientales apropiadas, funcionamiento adecuado del
equipo de ordeño, nivel de preparación de las personas encargadas del ordeño.
(Marshall & Edmondson, 2005).
El plan de diagnóstico integral de mastitis en un hato comprende un monitoreo
permanente con pruebas de campo, laboratorio y en tanque, entre las más utilizadas y
comunes se puede mencionar:
2.8.1 Pruebas de Laboratorio.
Recuento de células somáticas (RCS), cultivos microbiológicos, caracterización del
microorganismo, pruebas de sensibilidad antimicrobiana.
2.8.2 Pruebas en Tanque.
Recuento de Células Somáticas del tanque (RCS-T).
2.8.3 Pruebas de Campo.
Prueba de Mastitis California (CMT), prueba de palpación, prueba de Wisconsin,
18
prueba con papel indicador, prueba de fondo negro.
2.8.3.1 California Mastitis Test.
Uno de los mejores caminos para detectar el índice de mastitis es el CMT - California
Mastitis Test
La prueba de CMT es una prueba de campo de fácil manejo y buena sensibilidad
que se fundamenta en la capacidad que tiene el reactivo Lauril Sulfato de Sodio para
reaccionar con el DNA celular produciendo viscosidad directamente proporcional al
número de células somáticas presentes en la muestra de leche.
(Marshall & Edmondson, 2005).
Una vez que la vaca está lista para ser ordeñada con pezones limpios y secos, se
escurren los dos primeros chorros de leche de cada pezón en los compartimentos de la
paleta. Se inclina la paleta en un ángulo de 60 º para igualar la cantidad de leche en
cada uno (deben quedar entre dos y cuatro mL de leche). Se agrega una cantidad igual
de reactivo y se inicia un proceso suave de agitación por rotación durante 15-20
segundos. Se lee e interpreta la prueba de inmediato (ver Cuadro 1).
Cuadro 1. Interpretación de los resultados de la prueba de CMT
Grado de CMTRango de Células Somáticas
(cs /mL)Interpretación
N (Negativo) 0-200,000 Cuartos sano
T(Trazas) 200,000-400,000 Mastitis subclínica
1 400,000-1,200,000 Mastitis subclínica
2 1,200,000-5,000,000 Infección seria
3 Más de 5,000,000 Infección seria
Fuente: Mellenberger 2000.
La interpretación de la prueba de CMT es analizada de la siguiente forma de
acuerdo al grado de mastitis que presenta: Negativo: No hay precipitado por lo tanto no
hay infección. Trazas: Ligera precipitación que desaparece al agitar, en este caso es
necesario comparar una mama con la otra; si presentan algo de precipitación no se
considera infección. Si solamente una mama presenta infección se considera infectada.
19
Tipo 1: Existe una ligera agitación con algunos filamentos grumosos, al mover la paleta
por unos 20 segundos los grumos tienden a desaparecer. No existe la formación de gel.
Tipo 2: Formación de gel apariencia de una clara de huevo. Tipo 3: Formación de gel
rápido, no pierde la forma a pesar de la agitación.
El CMT mide en forma indirecta el número de células somáticas/ml.
Normalmente la leche de una glándula mamaria sana tiene menos de 100 000 cel/mL.
Donde el 80 % de las células son macrófagos y el 20 % o menos corresponden a
Neutrófilos.
En la literatura no hay coincidencia sobre el número de células a partir del cual se
considera que una glándula mamaria está afectada de mastitis, pero en términos
generales recuentos superiores a 500 000 cel/mL. Con más del 50 % de Neutrófilos se
deben considerar como cuadros de mastitis. Número que se verá incrementado hasta
varios millones según la intensidad y extensión de la lesión.
El CMT es una prueba que tiene una alta sensibilidad pero presenta algunas
deficiencias en especificidad, dando falsos positivos durante la primera semana después
del parto; y en vacas que tienen más de siete meses de producción y varios partos. En
estos casos el grado de viscosidad es similar en los cuatros pezones
La prueba de california mastitis test es un método de diagnóstico que posee una
sensibilidad del 97 % y una especificad del 93 %. Sus ventajas son:
Es una técnica muy sensible y se puede utilizar tanto en una muestra de cuartos,
como una muestra del tanque enfriador. En una muestra de tanque, los resultados
de grado dos y tres, indican un alto porcentaje de vacas infectadas.
El material extraño no interfiere con la prueba (pelo u otro material).
La prueba es muy simple y no requiere de equipo costoso (Mellenberger, 2000).
2.9 Factores que predisponen a la mastitis por el mal manejo del ordeño
Son numerosos, pero en la mayoría de los casos están relacionados con el mal manejo
que se les da a las vacas en las diferentes etapas del ordeño. Entre aquellos están:
Descuido de la higiene en el momento del ordeño.
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Falta de aseo de las manos del ordeñador, así como en los implementos usados.
No lavar los pezones antes de iniciar el ordeño.
Halar o tirar mucho los pezones en el caso del ordeño manual.
Golpes en la ubre.
Máquina de ordeño defectuosa.
Mal mantenimiento de las pezoneras.
No utilizar el sellante para pezones al finalizar el ordeño.
Reutilizar cánulas o sondas intramamarias.
Ordeñar parcialmente (cuartos, la leche al quedar retenida favorece la multiplicación de
bacterias), entre otros (Torres, 2002).
2.10 Patogenia de la mastitis bovina
La infección de la glándula mamaria siempre ocurre a través del conducto glandular,
luego de la invasión del agente infeccioso, la invasión es la etapa en que los
microorganismos pasan del exterior de la ubre al conducto glandular, en la etapa de
infección, los gérmenes proliferan e invaden el tejido mamario, lo cual crea una
inflamación y se produce la mastitis clínica.
Según lo manifestado por Gasque, (2008) dependiendo de la severidad y la
duración de la inflamación, en uno o varios de los cuartos mamarios se puede
desarrollar; el edema inflamatorio, la fibrosis y la atrofia del tejido mamario.
2.11 Síntomas de la mastitis bovina
Leche anormal (color amarillo sanguinolento).
La ubre caliente, inflamada.
Fiebre.
Dolor
Las vacas no tienen hambre.
Reducción de producción de leche.
Deshidratación.
2.12 Tratamiento de la mastitis bovina
21
De acuerdo a la presentación de la enfermedad (agua, subaguda, crónica) por lo general
es un tratamiento local con antimastiticos que se introducen en el cuarto afectado; si el
animal presenta fiebre conjuntamente se aplica un tratamiento parenteral con
antibióticos por vía intramuscular y además se usan pomadas desinflamantes y si el caso
lo amerita el uso de corticosteroides (Reyes, 2015).
2.13 Experiencias investigativas
Saltos, (2004) en su investigación de prevalencia de mastitis subclínica por el método
CMT en hatos doble propósito del cantón Pueblo viejo, donde estableció que de 400
vacas muestreadas, resultaron positivas a mastitis 130 que lo representa un 32,5 % de
prevalencia en el cantón, y en cuanto al cruces racial B. Taurus tuvo una mayor
incidencia de 28,47 % de incidencia de mastitis subclínica.
Rosales y Pombo, (2006) en su trabajo de investigación, cuyo tema fue determinación
de la presencia de mastitis subclínica en vacas ordeñadas manual y mecánicamente. En
el cual reportaron una incidencia en vacas ordeñadas mecánicamente de 4,47 % y en
vacas ordeñadas manualmente cuyo porcentaje fue de 15,66 %.
Salvador y Peñafiel, (2011) en su estudio realizado cuyo título fue, determinación
de la Incidencia de mastitis subclínica mediante los métodos (CMT) y Somaticell en
cinco Ganadería del cantón Vinces, donde determinaron una incidencia de 22 % con
253 casos positivos en 1 176 animales muestreados en producción.
Caraguay, (2012) en su trabajo realizado, que se llevó a cabo en la parroquia
Chantaco del cantón Loja con la finalidad de diagnosticar la presencia de mastitis
subclínica por el método california mastitis test, aislamiento, identificación, y
sensibilidad del germen, donde se realizó el estudio en 91 fincas ganaderas con una
población de 192 vacas en producción, donde la incidencia de mastitis fue de 44,3 %, el
cual se analizaron 135 cuartos afectados, donde los cuartos posteriores obtuvieron un
27,4 % , mientras que los anteriores con 22,6 %.
22
III. MARCO METODOLÓGICO
3.1 Área de estudio
3.1.1 Localización.
La investigación se realizó en los hatos de cinco asociaciones ganaderas en la
producción de leche perteneciente a la parroquia Guare del cantón Baba, en los meses
de octubre a
diciembre de 2015.
3.1.2 Caracterización de la zona de trabajo.
La parroquia Guare se encuentra ubicada dentro de la provincia de Los Ríos con una
superficie de 46,15 % de la superficie total del territorio del cantón Baba, cuyas
coordenadas geográficas son: latitud 14° 47' 00" S, longitud 79° 40' 00" W, temperatura
25 ºC, precipitación 1 200 mm, humedad relativa 58 % y altitud de 20 msnm (IGM,
2016).
Sus límites son:
Norte: cantón Vinces y la parroquia Puerto Pechiche del cantón Puebloviejo.
Sur: Antonio Sotomayor del cantón Vinces y la parroquia Baba.
Este: Isla de Bejucal y San Juan del cantón Puebloviejo
23
Oeste: Antonio Sotomayor del cantón Vinces y la parroquia Vinces del mismo cantón,
y su relieve son terreno plano con pocas elevaciones o lomas sin mucha altura. (IGM,
2016).
3.1.3 Universo.
Datos proporcionados por el Ministerio de Agricultura, Ganadería, Acuacultura y Pesca
(MAGAP), indica la existencia de 606 animales en producción en las cinco asociación
de la parroquia Guare.
3.1.4 Tipo de muestreo.
Se utilizó el estratificado.
3.2 Manejo de la investigación
3.2.1 Socialización del proyecto.
Se procedió a socializar el tema de la mastitis subclínica en los bovinos, sobre la
importancia económica y sanitaria, a todos los socios de las cinco asociaciones
ganaderas.
3.2.2 Usos de datos.
Se procedió a la recolección de datos, los cuales fueron anotados en la hoja de registro;
en base a la información sanitaria y productiva proporcionada por los propietarios de los
animales.
3.2.3 Toma de muestra y análisis.
Se realizó muestreos aplicando el método de CMT en el momento del ordeño, lo que
incluyó los siguientes pasos:
Previo a la toma de la muestra se sujetó a la vaca, luego se lavó la ubre con agua
limpia, retirando todo el material ajeno a la glándula mamaria, se secó la ubre con una
toalla de mano, descartando el primer chorro, se colocó los dos chorros siguientes de
leche de cada pezón, en su respectivo pocillo de la paleta recolectora. Una vez tomada
la muestra se añadió igual cantidad del reactivo CMT, seguidamente se procedió a
24
homogenizar con movimientos circulares de la paleta por un tiempo aproximada de 25
segundos.
Concluido este procedimiento se realizó la lectura, de acuerdo al grado de
gelificación, para lo cual se realizó la interpretación de la siguiente manera: Desde
negativo, trazas, grado 1, 2, 3 dependiendo la infección respectivamente, anotando los
resultados en la hoja de registros, Después de la lectura se eliminó la muestra y
procedimos a lavar la paleta con agua y detergente, para ser usada en el siguiente
análisis y así sucesivamente. Se aplicó tratamiento dependiendo el tipo de mastitis
encontrado, en este caso solo se encontró mastitis subclínica por lo que se aplicaron
cánulas por tres días a los cuartos que dieron resultados positivos, por lo tanto se repitió
un segundo muestreo a los 15 días con el propósito de verificar si la desapareció la
infección con el tratamiento aplicado.
3.2.4 Variables evaluadas.
Las variables que se registraron y analizaron en la investigación fueron las siguientes:
Vacas: se evaluaron 96 unidades experimentales
Cruces raciales: se identificó las vacas por cruces; Brown Swiss/Brahaman,
Holstein mestizo, Jersey mestizo
Zonas con mayor porcentaje de mastitis:
Zonas Asociaciones # de vacas Muestra
Guare
Carmela
Guayabo
Concepción
La Balsa
Guare
La Carmela
29 de septiembre
Concepción
San francisco de Chojampe
19
20
19
19
19
76
80
76
76
76
3.3 Instrumentos
3.3.1 Material Animal.
Ganado mestizo (cruce raciales Holstein mestizo, Jersey mestizo, Brown
Swiss/Brahaman).
3.3.2 Materiales de campo.
Soga
25
Toalla de mano
Paleta de CMT
Balde recolector
Ficha de recolección de muestras
3.3.3 Materiales de laboratorio.
Guantes
Mandil
3.3.4 Materiales de oficina.
Bolígrafo
Pendrive
Calculadora
3.3.5 Equipos.
Cámara fotográfica
Computadora
3.3.6 Insumos y reactivos de laboratorio.
Detergente
Agua
Reactivo CMT
Leche
3.4 Prueba estadística
3.4.1 Análisis de datos.
La investigación fue de tipo descriptivo ya que no es experimental.
Con los datos analizados se aplicó un análisis descriptivo designando estadígrafos
centrales y de variabilidad, se denominó las medidas de tendencia central como la media
moda, y dispersión como la desviación estándar (s2), y el coeficiente de variación (CV
%). También se estableció los valores máximos y mínimos.
Media Varianza
26
Mediana Desviación estándar
Moda Coeficiente de variación
3.4.2 Tamaño de muestra.
El tamaño de la muestra estuvo sujeta a la población bovina fue de 606
Para lo cual se utilizó la siguiente fórmula (Cartagena, 2010).
n= N( E )2 ( N−1 )+1
Dónde:
n = tamaño de la muestra.
N = tamaño de la población.
E= error máximo admisible al cuadrado.
27
n= 606( 0 ,094 )2 (606−1 )+1
n= 606(0 , 008836)(605 )+1
n= 6065 ,34578+1
n= 6066 ,34578n=96
La muestra que se investigo fue de 96 animales.
IV. RESULTADOS
4.1 Determinar por el método California Mastitis Test (CMT) la incidencia de
mastitis subclínica.
Para determinar la incidencia de mastitis subclínica por el método C.M.T se tomaron
muestras de leche de 96 vacas.
Los resultados se observan en el cuadro 2. De las 96 muestras analizadas resultaron
positivas 61 que corresponde a 63,54 %, mientras que las negativas resultaron 35 lo que
representa un 36,46 %.
28
Cuadro 2. Incidencia de mastitis subclínica por método California Mastitis Test
(CMT) en hatos ganaderos de la parroquia Guare del cantón Baba.
Total de vacasCasos
Positivos(%)
Casos
negativos(%)
96 61 63,54 35 36,46
4.2. Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a la zona con mayor porcentaje.
En la zona Guare se muestreo 19 vacas en producción, resultando 10 casos positivos
con un 52,63 % y 9 casos negativo con un 47,37 %; en la zona de La Carmela se
muestrearon 20 vacas, obteniendo 15 casos positivos con un 75 % y 5 casos negativos
con un 25 %; en la zona del Guayabo se analizaron 19 vacas, dando resultados 9
positivos con un 47,37 % y negativo 10 con un 52,63 %; en la zona de Concepción se
analizaron 19 vacas, dando como resultado 17 positivos con un 89,47 % y negativo 2
con un 10,53 %; en la zona de la Balsa se analizaron 19 vacas dando como resultado 13
vacas positivas con un 68,42 % y negativo 6 vacas con un 31,58 %, con un análisis
estadísticos de varianza muestral de 14,92 % ; desviación estándar 3,86 %; coeficiente
de variación 30,18 %; máximo 17 %; y un mínimo de 9 % (cuadro. 3).
29
Cuadro 3. Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a la zona con mayor porcentaje.
AsociacionesTotal de
vacas
Casos
positivas(%)
Casos
negativas (%)
Guare 19 10 52,63 9 47,37
Carmela 20 15 75 5 25
Guayabo 19 9 47,37 10 52,63
Concepción 19 17 89,47 2 10,53
La Balsa 19 13 68,42 6 31,58
Total 96 64 - 32 -
X 19,2 12,8 - 6,4 -
varianza muestral 0,25 14,92 - 13,68 -
desviación estándar 0,50 3,86 - 3,69 -
coeficiente de variación 2,62 30,18 - 57,79 -
Máximo 20 17 - 10 -
Mínimo 19 9 - 2 -
4.3 Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a los cruces raciales.
Se muestrearon 96 vacas en producción, dando como resultado que el cruce racial con
mayor incidencia de mastitis subclínica fue el B. Taurus Brown Swiss/ Brahaman con
42,71 %, (41 vacas positivas), seguido el cruce con Jersey mestizo 11,46 % (11 vacas
positivas), y el cruce de menor incidencia fue el Holstein mestizo con 9,38 %, (9 vacas
positivas); con una varianza muestral de 37,58 %; desviación estándar 6,13 %;
coeficiente de variación 40,2 %; máximo 21 %; y un mínimo de 9 % (cuadro. 4).
Cuadro 4. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en hatos ganaderos de
la parroquia Guare.
Cruces racialesTotal de
vacas
Casos
positivas(%)
Casos
negativas(%)
30
Brown Swiss/ Brahaman 63 41 42,71 22 22,9
Holstein mestizo 14 9 9,38 5 5,20
Jersey mestizo 19 11 11,46 8 8,33
Total 96 61 - 35 -
X 24 15,25 - 8,75 -
Varianza muestral 79,33 37,58 - 8,25 -
Desviación estándar 8,90 6,13 - 2,87 -
Coeficiente de variación 37,11 40,2 - 32,83 -
Máximo 32 21 - 11 -
Mínimo 14 9 - 12 -
4.3.1 Porcentaje de mastitis por cruce raciales en la asociación Guare.
De los 19 vacas que se analizaron en la asociación de Guare, 9 fueron cruces raciales
Brown Swiss/Brahaman resultando 7 positivas, lo cual equivale a 36,89 %; de 4 cruces
raciales de Jersey mestizo, todas resultaron negativas; mientras que el cruce Holstein
mestizo se analizaron 3 resultando 2 positivas lo cual equivale a un 10,53 %; con
varianza muestral 4,25 %; desviación estándar 2,06 %; coeficiente de variación 91,62
%; máximo 5%; mínimo 0 %; moda 2 % (cuadro. 5).
Cuadro 5. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación Guare.
Cruces raciales Casos positivas (%)
Brown Swiss/Brahaman 7 36,89
Jersey mestizo 0 0,00
31
Holstein mestizo 2 10,53
Total 9 -
X 2,5 -
Varianza muestral 4,25 -
Desviación estándar 2,06 -
Coeficiente de variación 91,62 -
Máximo 5 -
Mínimo 0 -
Moda 2 -
4.3.2 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación la
Carmela.
Se analizaron 20 vacas en la asociación la Carmela, del cruce racial Brown
Swiss/Brahaman se analizaron 12, de las cuales resultaron positivas 9 que corresponden
a un 45 %, el cruce Jersey mestizo se analizaron 4, resultando positivas 3 que equivale
un 15 %; Holstein mestizo se analizaron 4, resultando 3 positivas, que corresponde un
15 %; con varianza muestral 0,92 %; desviación estándar 0,95 %; coeficiente de
variación 25,53 %; máximo 5 %; mínimo 3 %; moda 2 % (cuadro. 6).
Cuadro 6. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación La
Carmela.
Cruces raciales Casos positivas (%)
32
Brown Swiss/Brahaman 9 45
Jersey mestizo 3 15
Holstein mestizo 3 15
Total 15 -
X 3,75 -
Varianza muestral 0,92 -
Desviación estándar 0,95 -
Coeficiente de variación 25,53 -
Máximo 5 -
Mínimo 3 -
Moda 2 -
4.3.3 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación 29
de Septiembre.
En la asociación 29 de Septiembre se analizaron 19 vacas, del cruce Brown
Swiss/Brahaman 15, con 8 casos positivos que corresponde un 42,11 %, mientras que
el cruce racial Jersey mestizo 3, resultando 1 positiva que corresponde un 5,26 %; con
una media 2,25 %; varianza muestral 4,92 %; desviación estándar 2,21 %; coeficiente
de variación 98,55 %; máximo 5 % (cuadro. 7).
Cuadro 7. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación 29 de
septiembre.
33
Cruces racial Casos positivas (%)
Brown Swiss/Brahaman 8 42,11
Jersey mestizo 1 5,26
Holstein mestizo 0 0
Total 9 -
X 2,25 -
varianza muestral 4,92 -
desviación estándar 2,21 -
coeficiente de variación 98,55 -
Máximo 5 -
4.3.4 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación
Concepción.
En cuanto a la asociación Concepción, se analizaron 19 vacas en total, del cruce racial
Brown Swiss/Brahaman se analizaron 12 vacas, resultando positivas 11, que representa
un 57,89 %; del cruce racial Jersey mestizo se analizaron 5, todas positivas
representando un 26,32 %, el cruce racial Holstein mestizo se analizaron 3, resultando 1
caso positivo que representa un 5,26 %. Con varianza muestral 6,25 %; desviación
estándar 2,5 %; coeficiente de variación 58,82 %; máximo 7 %; mínimo 1 %.
(Ver cuadro. 8).
34
Cuadro 8. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación
Concepción.
Cruces raciales Casos positivas (%)
Brown Swiss/Brahaman 11 57,89
Jersey mestizo 5 26,32
Holstein mestizo 1 5,26
Total 17 -
X 4,25 -
varianza muestral 6,25 -
desviación estándar 2,5 -
coeficiente de variación 58,82 -
Máximo 7 -
Mínimo 1 -
4.3.5 Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación
San Francisco de Chojampe.
En la asociación San Francisco de Chojampe, se analizaron 19 vacas, de los 13 cruces
raciales Brown Swiss/Brahaman resultaron 8 casos positivas, con un 42,11 %, además
de los tres cruces raciales Jersey mestizo analizados, resultaron 2 casos positivas con un
10,53 %, mientras que de los 3 cruce racial Holstein mestizo, todas resultaron positivas
con un 15,79 %. Con varianza muestral 3,58 %; desviación estándar 1,89 %;
coeficiente de variación 58,25 %; máximo 6 %; mínimo 2 %. (cuadro. 9).
Cuadro 9. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación San
Francisco de Chojampe.
35
Cruces raciales Casos positivas (%)
Brown Swiss/Brahaman 8 42,11
Jersey mestizo 2 10,53
Holstein mestizo 3 15,79
Total 13 -
X 3,25 -
varianza muestral 3,58 -
desviación estándar 1,89 -
coeficiente de variación 58,25 -
Máximo 6 -
Mínimo 2 -
36
V. DISCUSIÓN
De acuerdo a los resultados obtenidos y relacionándolos con otras investigaciones se
llegó a lo siguiente:
La incidencia de mastitis subclínica en los sectores de la parroquia Guare fue 61 casos
positivos; es decir el 63,54 % de una muestra de 96 vacas, estos valores fueron muy
superiores a los datos obtenidos por Salvador y Peñafiel, (2011) quienes obtuvieron en
el cantón Vinces un promedio de 22 % (294 vacas), de casos positivos a mastitis
subclínica, de igual forma a los reportados por Saltos (2004), quien encontró una
incidencia del 32,5 % al muestrear 400 animales en la zona de Pueblo Viejo,
asimismo Rosales y Pombo (2006) en el trabajo realizado en el cantón Naranjal, reporto
una incidencia del 15,66 % en vacas ordeñas manualmente. Lo que se presume la falta
de conocimiento sobre la enfermedad y también porque no realizan una buena higiene
en el momento del ordeño, las cuales sean probablemente la causa de la alta incidencia
de la mastitis en los hatos en el sector.
La zona que presento mayor incidencia de mastitis subclínica fue Concepción con
89,47 %; a diferencia de la zona del Guayabo quien obtuvo un 47,37 %, el cual se
presume que estos resultados se deben por la falta de buenas prácticas bovinas en cuanto
al manejo sanitario.
Durante el estudio realizado en las cinco asociaciones de la parroquia Guare,
resulto que el cruce racial con genética B. Taurus obtuvo un mayor porcentaje de
incidencia a mastitis subclínicas con 42,71 %, de la misma forma que Saltos (2004) en
su trabajo de investigación donde revelo que el cruce racial B. Taurus obtuvo el mayor
porcentaje de incidencia a esta enfermedad con 28,47 %. Lo que permite determinar
que la raza B. Taurus es muy susceptible a esta enfermedad.
37
VI. CONCLUSIONES
Según el trabajo realizado y en base a los resultados obtenidos se concluye que:
El grado de infección de la mastitis en los hatos bovinos de las asociaciones ganaderas
de la parroquia Guare del cantón Baba dependen de las malas prácticas de manejo del
ordeño.
Existe una alta incidencia de mastitis subclínica en los hatos ganaderos de las
asociaciones de la parroquia Guare del cantón Baba, con 63,54 % (61).
La zona con mayor incidencia de mastitis subclínica fue Concepción con el 89,47 %.
Los cruces B. Taurus fueron los que obtuvieron mayor incidencia de mastitis subclínica
en la parroquia Guare con un 21,88 %.
De acuerdo a los resultados obtenidos se acepta la hipótesis: La presencia de mastitis
subclínica en la parroquia Guare del cantón Baba tiene una alta incidencia en los hatos
ganaderos.
38
VII. RECOMENDACIONES
Capacitar a los productores de las asociaciones ganaderas de la parroquia Guare del
cantón Baba sobre la importancia de mantener buenas normas de higiene durante el
proceso del ordeño.
No es aconsejables realizar la prueba california mastitis test en vacas recién paridas o en
vacas próximas al parto, porque es un proceso fisiológico que ocurre en vacas donde la
glándula mamaria se inflama por la adaptación de un nuevo ciclo de lactación, por el
cual casi siempre los resultados del CMT arrojaran falsos positivos.
Realizar investigaciones relacionadas en el conteo de las células somáticas en leche.
39
VIII. BIBLIOGRAFIA
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Anexos
43
ANEXOS
Anexos 1.
Grafico 1. Incidencia de mastitis subclínica por método CMT.
Nº vacas Positivos % Negativos %0
20
40
60
80
100
120
9661 63.54
35 36.46
Incidencia de mastitis subclinica por metodo CMT
Total Positivos % Negativos %2
Grafico 2. Incidencia de mastitis subclínica por método CMT.
Nº vacas Positivos % Negativos %0
20
40
60
80
100
120
96
13 13.54
83 86.46
Incidencia de mastitis subclinica después del tratamiento
Vacas Positivos %
Grafico 3. Incidencia de mastitis subclínica de acuerdo a la zona con mayor porcentaje.
Guare La Carmela Guayabo Concepcion La Balsa 0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
19 20 19 19 1910
159
17 13
52.63
75
47.37
89.47
68.42
95
102 6
47.37
25
52.63
10.53
31.58
Zona de mayor porcentajes a mastitis
Nº animales Positivos % Positivos Negativos % Negativos
Grafico 4. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales
B. Swiss/Brahaman Holstein mestizo Jersey mestizo0
10
20
30
40
50
60
70 63
1419
41
9 11
42.71
9.3811.46
22
5 8
22.9
5.2 8.33
total vacas positivas % negativas %2
Grafico 5. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación Guare.
Brown Swiss/Brahaman Jersey mestizo Holstein mestizo0
5
10
15
20
25
30
35
40
7
02
36.89
0
10.53
Asociación Guare
Cruces raciales positivos % Positivas
Grafico 6. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación La
Carmela.
Brown Swiss/Brahaman Jersey mestizo Holstein mestizo0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
50
9
3 3
45
15 15
Asociacion La Carmela
Cruces raciales positivos %
Grafico 7. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación 29 de
septiembre.
Brown Swiss/Brahaman
Jersey mestizo Holstein mestizo0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
8
1 0
42.11
5.260
Asociacion 29 de septiembre
Cruces raciales positivos %
Grafico 8. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la Asociación
Concepción.
Brown Swiss/Brahaman Jersey mestizo Holstein mestizo 0
10
20
30
40
50
60
70
115
1
57.89
26.32
5.26
Asociación Concepción
Cruces raciales positivas %
Grafico 9. Incidencia de mastitis subclínica por cruces raciales en la asociación San
Francisco de Chojampe.
Brown Swiss/Brahaman Jersey mestizo Holstein mestizo0
5
10
15
20
25
30
35
40
45
8
2 3
42.11
10.53
15.79
Asociación San Francisco de Chojampe
Cruces raciales positivos %
Anexo 2
En cuanto al segundo muestreo después del tratamiento, las positivas fueron 13 que
equivale a un porcentaje de 13,54 %, mientras que las negativas fueron 83 que equivale
a un porcentaje de 86,46 % (Cuadro 13).
Cuadro 13. Incidencia de mastitis subclínica por método CMT en el segundo
muestreo.
Toma de
muestra
Total de
vacas
Casos
Positivos(%)
Casos
negativos(%)
2° muestreo 96 13 13,54 83 86,46
Cuadro 14. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos afectados por Asociaciones en
la parroquia Guare del cantón Baba
Porcentajes de cuartos afectados por Asociaciones
Asociacionesn° de cuatros
afectadosPositivas (%)
Guare 14 14,74
Carmela 22 23,16
Guayabo 14 14,74
Concepción 24 25,26
San francisco de Chojampe 21 22,11
Total 95 -
X 19 -
varianza muestral 28 -
desviación estándar 5,29 -
coeficiente de variación 27,85 -
Máximo 24 -
Mínimo 14 -
Cuadro 15. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos afectados anterior y posterior
en la parroquia Guare del cantón Baba.
Porcentaje por cuarto anterior y posterior
AsociacionesN° de cuartos
posterior
(%)
posterio
r
N° de cuartos
anteriores
(%)
anterior
Guare 3 21,43 11 78,57
Carmela 11 50 11 50
Guayabo 7 50 7 50
Concepción 16 66,67 8 33,33
San francisco de
Chojampe12 57,14 9 42,86
Total 49 - 46 -
X 9,8 - 9,2 -
varianza muestral 31,32 - 4,25 -
desviación
estándar 5,59-
2,06-
coeficiente de
variación 57,11-
22,42-
Máximo 16 - 11 -
Mínimo 3 - 7 -
Cuadro 16. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos posteriores y anteriores:
derecho e izquierdo.
Asociaciones P.D P.I A.I A.D P % A %
Guare 2 1 5 6
51,58 48,42
Carmela 7 4 8 3
27 de Septiembre 6 1 3 4
Concepción 7 9 6 2
San Francisco de Chojampe 6 6 5 4
Total 28 21 27 19 - -
X 5,60 4,20 5,4 3,8 - -
varianza muestral 5,68 14,52 4,35 2,92 - -
desviación estándar 2,38 3,81 2,08 1,70 - -
coeficiente de variación 42,56 90,73 38,61 44,97 - -
Máximo 7 9 8 6 - -
Mínimo 2 1 3 2 - -
Cuadro 17. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos en la Asociación Guare.
Cuartos Positivos
P.D 2
P.I 1
A.I 5
A.D 6
Total 14
X 3,5
varianza muestral 5,67
desviación estándar 2,38
coeficiente de variación 68,01
Máximo 6
Mínimo 1
Cuadro 18. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos en la Asociación Guare.
Cuartos Positivos
P.D 2
P.I 1
A.I 5
A.D 6
Total 14
X 3,5
varianza muestral 5,67
desviación estándar 2,38
coeficiente de variación 68,01
Máximo 6
Mínimo 1
Cuadro 19. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos en la Asociación La Carmela.
Cuartos Positivos
P.D 7
P.I 4
A.I 8
A.D 3
Total 22
X 5,5
varianza muestral 5,67
desviación estándar 2,38
coeficiente de variación 43,28
Máximo 8
Mínimo 3
Cuadro 20. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos en la Asociación 29 de
septiembre
Cuartos Positivos
P.D 6
P.I 1
A.I 3
A.D 4
Total 14
X 3,5
varianza muestral 4,33
desviación estándar 2,082
coeficiente de variación 59,48
Máximo 6
Mínimo 1
Cuadro 21. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos en la Asociación Concepción.
Cuartos Positivos
P.D 7
P.I 9
A.I 6
A.D 2
Total 24
X 6
varianza muestral 8,67
desviación estándar 2,944
coeficiente de variación 49,07
Máximo 9
Mínimo 2
Cuadro 22. Incidencia de mastitis subclínica por cuartos en la Asociación San
Francisco de Chojampe.
Cuartos Positivos
P.D 6
P.I 6
A.I 5
A.D 4
Total 21
X 5,25
varianza muestral 0,92
desviación estándar 0,957
coeficiente de variación 18,24
Máximo 6
Mínimo 4
Cuadro 23. Incidencia total de mastitis subclínica por cruces raciales en la parroquia Guare del cantón Baba.
De acuerdo a la incidencia de mastitis subclínica dependiendo de los cruces raciales que se encontraron en las cinco asociaciones ganaderas de la
parroquia guare, la que más incidencia tuvo fue el cruce racial Brown Swiss/Brahaman con una incidencia de 42,71 %, seguido el cruce Jersey
mestizo con 11,46 %, y por último el cruce Holstein mestizo con 9,38 %.
Incidencia total de mastitis subclínica Asociación Guare Asociación la Carmela Asociación 29 de Septiembre Asociación Concepción Asociación San Francisco de
Chojampe
Cruces raciales positivos
N° de animales positivos
(%)Cruces raciales positivos
N° de animales positivos
(%)Cruces raciales positivos
N° de animales positivos
(%)Cruces raciales positivos
N° de animales positivos
(%)Cruces raciales positivos
N° de animales positivos
(%)Cruces raciales positivos
N° de animales positivos
(%)
Brown Swiss/
Brahaman 41 42,71
Brown Swiss/
Brahaman7 36,84
Brown Swiss/
Brahaman8 42,11
Brown Swiss/
Brahaman8 42,11
Brown Swiss/
Brahaman10 52,63
Brown Swiss/
Brahaman8 42,11
Jersey mestizo 11 11,46 Jersey
mestizo 0 0,00 Jersey mestizo 3 15,79 Jersey
mestizo 1 5,26 Jersey mestizo 5 26,32 Jersey
mestizo 2 10,53
Holstein mestizo 9 9,38 Holstein
mestizo 2 10,53 Holstein mestizo 3 15,79 Holstein
mestizo 0 0,00 Holstein mestizo 1 5,26 Holstein
mestizo 3 15,79
Total 61 63,54 Total 9 52,63 Total 15 78,95 Total 9 47,37 Total 17 89,47 Total 13 68,42
X 15,25 - X 2,5 - X 3,75 - X 2,25 - X 4,25 - X 3,25 -
S2 37,58 - S2 4,25 - S2 0,92 - S2 4,92 - S26,25 - S2 3,58 -
S 6,131 - S 2,06 - S 0,957 - S 2,217 - S 2,5 - S 1,89 -
C.V 40,2 - C.V 91,62 - C.V 25,53 - C.V 98,55 - C.V 58,82 - C.V 58,25 -
máximo 21 - máximo 5 - Máximo 5 - máximo 5 - máximo 7 - máximo 6 -
mínimo 9 - mínimo 0 - Mínimo 3 - mínimo 0 - mínimo 1 - mínimo 2 -
moda 2 - Moda 2 -
Anexos 3.Registro de recolección de muestras en las asociaciones ganaderas de la parroquia Guare
UNIVERSIDAD DE GUAYAQUILFACULTAD DE CIENCIAS PARA EL DESARROLLO
La presente investigación va dirigidas a los productores de las Asociaciones Ganaderas de la parroquia Guare, con el fin de llevar a cabo el proyecto de investigación: Incidencia de Mastitis subclínica por método CMT en hatos bovinos de la parroquia Guare del cantón Baba.
Sector o zona: GuareNombre del propietario: Sr. Hugo Aspiazu
Fecha N° de
muestra
colectada
Cruces Numero o
nombre del
animal
PRIMER MUESTREO
ResultadosPor cuartos mamarios
Fecha
SEGUNDO MUESTREO
ResultadosPor cuartos mamarios
Observaciones
AdA
AiB
PdC
PiD
AdA
AiB
PdC
PiD
08-10-15 1 Brown Swiss/Brahaman
Tilinga – – ++ – 23-10-15 – – – – Se aplicó inyectores por tres días a los cuartos afectados.
Se sugirió higiene antes del ordeño
Sellado del pezón al destete
08-10-15 2 Brown Swiss/Brahaman
Comadreja – – – ++ 23-10-15 – – – –
08-10-15 3 Jersey mestiza Avispa – – – – 23-10-15 – – – ++
08-10-15 4 Brown Swiss/Brahaman
Lucero – – – – 23-10-15 – – – –
08-10-15 5 Brown Swiss/Brahaman
Mariposa – – – – 23-10-15 – – – –
Anexos 4.
Figura 1. Materiales utilizados para
recolección de muestras.
Figura 2. Lavado de la ubre de la
vaca.
Figura 3. Secado de la ubre.
Figura 4. Eliminación del primer
chorro de leche para coger la
muestra.
Figura 5. Muestreo de leche. Figura 6. Adición del reactivo
(CMT) a la muestra de leche.
Figura 7. Reacción de la leche con el
reactivo (CMT).
Figura 8. Aplicación del tratamiento
con inyector intramamarias (poly
mast rojo).